化学物质选择与工作液制备
确定测试化学物质并准备合适浓度的孵育工作液。
从现有毒理学数据库中选取207种化学物质,制备100倍工作液,用于标准孵育,并在必要时制备DMSO储备液。
Towards Internal Threshold for Toxicological Concern (iTTC): In Vitro Hepatocyte Metabolism Testing of 207 Chemicals using Cryopreserved Suspended Hepatocytes for PBPK Modeling
实验包含标准化体外肝细胞清除率测定、质量控制及对参考化合物的验证,但缺乏体内功能验证或机制研究。
大鼠肝细胞 小鼠肝细胞 兔肝细胞 犬肝细胞
肝细胞来自Sprague-Dawley大鼠、CD-1小鼠、新西兰白兔和Beagle犬,且每个池至少来自3只供体,并采用雌雄1:1混合。 肝细胞浓度0.5×10^6 cells/ml,测试浓度0.1和1 µM,标准孵育时间点0、10、20、40、60和120分钟。 标准测定中DMSO终浓度为0.5%;挥发性化学物质使用单个密封玻璃瓶且DMSO终浓度为1%。 对照组包括热灭活肝细胞和仅培养基孵育,用于校正非特异性损失。 使用非那西丁和维拉帕米作为参考化合物,评估批间重现性和物种差异。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定测试化学物质并准备合适浓度的孵育工作液。
从现有毒理学数据库中选取207种化学物质,制备100倍工作液,用于标准孵育,并在必要时制备DMSO储备液。
建立每种测试化学物质的定量检测方法。
使用LC-MS/MS或GC-MS/MS开发分析方法,确保灵敏度和特异性。
确保肝细胞批次具有足够的代谢活性,适用于清除率测定。
从商业供应商获取冷冻保存的肝细胞,检测其第I相(ECOD)和第II相(UGT、SULT)酶活性,并与供应商报告值比较。
评估参考化合物清除率的批间重现性,并确定标准实验条件。
在多个物种中,使用参考化合物(非那西丁和维拉帕米)在1 µM浓度下进行初步清除率实验,连续3天进行。
在标准条件下测定测试化学物质在肝细胞中的清除率。
将测试化学物质以0.1和1 µM浓度与肝细胞孵育,在预设时间点取样,测定剩余母体化合物,计算清除率。
评估数据质量,计算固有清除率(CLint)并处理不合格数据。
使用F检验确定斜率显著性,计算CLint,并区分低清除率、活性细胞清除不可测定等数据。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 分析化学 | 液相色谱-串联质谱 | -- | -- |
| 气相色谱-串联质谱 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 24孔聚苯乙烯细胞培养板 | -- | -- |
| 48孔聚苯乙烯细胞培养板 | -- | -- | |
| 硅烷化玻璃孵育容器 | -- | -- | |
| 冷冻保存的肝细胞 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 肝细胞准备 | 肝细胞物种来源、供体数量(至少3只)和性别比例(1:1雌雄) 阅读提示:Materials and methods, 肝细胞获取段落 |
| 孵育体系 | 肝细胞浓度(0.5×10^6 cells/ml)、测试浓度(0.1和1 µM)、孵育温度(37°C)、CO2浓度(5%)、振荡速度(100 rpm)、孵育体积(500 µl或1 ml) 阅读提示:Materials and methods, 标准孵育条件段落 |
| 时间点取样 | 取样时间点(默认0, 10, 20, 40, 60, 120 min;部分快速清除化合物缩短时间点) 阅读提示:Materials and methods, 标准孵育条件段落及Results中快速清除物质重测段落 |
| 溶剂控制 | DMSO终浓度(标准0.5%,挥发性物质1%) 阅读提示:Materials and methods, 标准孵育和替代方案段落 |
| 质量控制 | 参考化合物(非那西丁和维拉帕米)的清除率,以及热灭活肝细胞和仅培养基对照的非特异性损失 阅读提示:Materials and methods, 质量控制段落及Results中参考化合物结果 |