临床样本和多队列分析确定HMGA2和IGF2BP1的临床意义
评估HMGA2和IGF2BP1在iCCA中的表达水平、预后价值及临床病理相关性。
整合TCGA-CHOL、ZS cohort-1/2及192例机构队列,分析HMGA2和IGF2BP1的表达与生存、临床病理特征(如TNM分期、神经周围浸润、转移)的关系;通过组织芯片IHC和Western blot验证蛋白表达。
IGF2BP1-Mediated m⁶A Modification Stabilizes HMGA2 mRNA to Promote Intrahepatic Cholangiocarcinoma Progression
整合4个临床队列转录组/蛋白质组及192例组织芯片验证,结合体外细胞功能、多种小鼠体内模型(异种移植、同系、自发及转移模型)及机制研究(MeRIP、RIP、RNA pull-down、RNA稳定性)。
肝内胆管癌细胞系CCLP1和HuCCT1 小鼠iCCA细胞系mICCN-4 BALB/c裸鼠和C57BL/6小鼠皮下移植瘤模型 FVB/NJ小鼠HDTVI自发性iCCA模型 192例iCCA患者组织样本及组织芯片
HMGA2和IGF2BP1在iCCA细胞系中的蛋白/ mRNA表达水平 shRNA和siRNA介导的HMGA2和IGF2BP1敲低效率 IGF2BP1与m⁶A修饰的HMGA2 mRNA的直接结合(MeRIP/RIP/pull-down) IGF2BP1 KH3-4结构域对HMGA2 mRNA稳定性的作用 IGF2BP1–HMGA2轴对体内肿瘤生长和转移的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估HMGA2和IGF2BP1在iCCA中的表达水平、预后价值及临床病理相关性。
整合TCGA-CHOL、ZS cohort-1/2及192例机构队列,分析HMGA2和IGF2BP1的表达与生存、临床病理特征(如TNM分期、神经周围浸润、转移)的关系;通过组织芯片IHC和Western blot验证蛋白表达。
确定HMGA2对iCCA细胞恶性表型的影响。
在CCLP1和HuCCT1细胞中通过shRNA和siRNA敲低HMGA2,检测增殖(CCK-8)、克隆形成、迁移(Transwell、伤口愈合)。
确定HMGA2在体内对iCCA进展和转移的影响。
使用异种移植(BALB/c裸鼠)、同系(C57BL/6小鼠)、HDTVI自发性模型和转移模型(脾注射肝转移、尾静脉注射肺转移),评估HMGA2敲低或过表达对肿瘤生长、肝/肺转移、增殖和凋亡的影响。
鉴定调控HMGA2表达的上游m⁶A相关因子并验证其直接结合。
利用RM2Target数据库筛选候选基因,经表达相关性和预后分析确定IGF2BP1。在CCLP1和HuCCT1细胞中敲低IGF2BP1检测HMGA2水平;通过MeRIP、RIP、RNA pull-down验证IGF2BP1与m⁶A修饰的HMGA2 mRNA直接结合;通过RNA稳定性实验和KH结构域突变体明确关键功能域。
验证IGF2BP1是否为HMGA2驱动的iCCA进展所必需,并确定其下游信号通路。
在体内外进行拯救实验,在IGF2BP1敲低细胞或小鼠模型中回补HMGA2,观察肿瘤表型恢复情况。通过TCGA数据KEGG富集分析和RNA-seq,以及Western blot和IHC验证PI3K-AKT通路激活。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫组织化学 | 二抗 | Dako Denmark A/S | -- |
| MeRIP | EpiQuick CUT&RUN m6A RNA富集试剂盒 | Epigentek | P-9018 |
| RIP | Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Merck Millipore | 17-700 |
| RNA pull-down | Pierce磁力RNA-蛋白Pull-Down试剂盒 | Thermo | -- |
| 细胞培养 | 达尔伯克改良伊格尔培养基 | -- | -- |
| 细胞增殖 | 细胞计数试剂盒-8 | Dojindo | -- |
| 迁移实验 | 24孔Transwell小室 | Corning | -- |
| Western blot | ImageQuant LAS 4000成像系统 | GE Healthcare Life Sciences | -- |
| qRT-PCR | HiScript IV一步法超逆转录预混液 | Vazyme | R433-01 |
| Taq Pro通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q712-03 | |
| ABI PRISM 7900序列检测系统 | Applied Biosystems | -- | |
| TUNEL | 细胞原位凋亡检测试剂盒(TMR红色) | Roche | 12156792910 |
| RNA-seq | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Illumina NovaSeq X Plus测序仪 | Illumina | -- | |
| 抗体 | HMGA2抗体 | Cell Signaling Technology | 8179 |
| IGF2BP1抗体 | Abcam | ab290736/ab313422 | |
| CK19抗体 | Proteintech | 10712-1-AP | |
| Ki67抗体 | Cell Signaling Technology | 34330 | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4691 | |
| p-AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060 | |
| PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4249 | |
| p-PI3K抗体 | Invitrogen | PA5-104853 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 66009-1-Ig |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(CCLP1、HuCCT1、RBE、HIBEpic、mICCN-4),培养条件(DMEM、10% FBS、1%青霉素/链霉素、37°C、5% CO2),细胞传代范围(3-8代) 阅读提示:Materials and Methods, Cell Culture |
| 体外功能实验 | 细胞数量(CCK-8和克隆形成1×10^3,Transwell 5×10^4),shRNA/siRNA序列,处理时间(克隆形成14天,迁移、伤口愈合24小时),重复数(n=3) 阅读提示:Materials and Methods, Cell Proliferation and Colony Formation Assays; Migration Assays; Wound Healing Assay; Table 4 |
| 体内肿瘤模型 | 小鼠品系、周龄、性别,细胞数量(CCLP1 2×10^6,mICCN-4 5×10^6,HuCCT1转移模型2×10^6或5×10^6),注射部位(皮下、脾、尾静脉),每组动物数(n=5),终点时间(皮下异种4周?、HDTVI 4周、肺转移5周、肝转移4周) 阅读提示:Materials and Methods, Animal Experiments; Figure 6-8, 13 |
| 机制研究 | MeRIP实验条件(抗体量、片段大小),RIP实验条件(抗体量、孵育时间),RNA pull-down探针序列(WT/Mut),RNA稳定性实验药物浓度和检测时间点(放线菌素D 10 μg/mL,0、3、6、9小时),IGF2BP1 KH突变体构建 阅读提示:Materials and Methods, N6-Methyladenosine–RNA Immunoprecipitation Assay; RNA Immunoprecipitation Assay; Biotinylated RNA Pull-Down Assay; RNA Stability Assay; Table 5 |
| 信号通路验证 | Western blot检测蛋白(HMGA2、p/t-PI3K、p/t-AKT),IHC检测p-AKT、p-PI3K(HDTVI模型),定量方法(阳性面积) 阅读提示:Results, The IGF2BP1–HMGA2 Axis Promotes Activation of the PI3K–AKT Signaling Pathway in iCCA; Figure 14 |