靶向SARM1-cADPR-Ca2+通路减轻线粒体碎片化和骨关节炎进展

Targeting the SARM1-cADPR-Ca2+ pathway attenuates mitochondrial fragmentation and osteoarthritis progression

作者信息Yu Gu, Xin-Hao Zhao, Bai-Zhou Xing, Biao Wu, Rong Peng, Chang-Qing Li, Hai Lv, Hua-Ding Lu
PMID42231475
发布时间2026-06
DOI10.1186/s13075-026-03837-3

实验完整度

包含细胞衰老模型、功能获得/丧失实验、机制验证(cADPR/钙信号)、离体组织培养和体内DMM小鼠模型等多层级证据,且明确验证了功能与机制。

主要模型

原代小鼠软骨细胞 ATDC5细胞系 小鼠股骨头软骨外植体 DMM诱导的OA小鼠模型

重点核对

DOX诱导软骨细胞衰老的浓度和时间(100 nM,24小时) SARM1敲低和过表达方式(siRNA转染,慢病毒MOI=50) cADPR和8-Br-cADPR处理浓度 DMM手术小鼠模型及关节内注射AAV-shRNA或8-Br-cADPR的方案

摘要

骨关节炎(OA)是一种常见的退行性关节疾病,伴有衰老软骨细胞数量增加。线粒体功能障碍是OA发病机制中软骨细胞衰老的公认标志。含有无菌α和Toll/白介素-1受体基序的蛋白1(SARM1),已知在多种细胞类型中驱动线粒体损伤,但尚未在软骨细胞衰老或OA背景下进行深入研究。方法:我们在原代小鼠软骨细胞中建立了多柔比星(DOX)诱导的衰老模型。使用siRNA介导的敲低和慢病毒过表达SARM1,采用功能获得和丧失的方法,随后评估衰老标志物、线粒体功能和形态。为了研究机制途径,应用外源性环腺苷二磷酸核糖(cADPR)及其特异性抑制剂8-Br-cADPR,并随后评估细胞内钙动力学和Drp1向线粒体的转位。接下来,我们在离体人股骨头组织和实验性OA小鼠模型中测试了阻断该SARM1/cADPR轴的疗效。结果:从人OA软骨和老年鼠软骨中分离的软骨细胞显示SARM1表达增加。敲低SARM1减少了DOX诱导的软骨细胞衰老和线粒体功能障碍,而过表达野生型而非催化失活的SARM1-TIR结构域突变体(TIR-E642A)诱导内在凋亡和线粒体碎片化。外源性cADPR重现了衰老和线粒体碎片化,而8-Br-cADPR处理消除了SARM1依赖性效应。机制上,SARM1生成的cADPR增加了细胞内钙水平,触发Drp1在Ser616位点的磷酸化和Ser637位点的去磷酸化,从而导致Drp1-FIS1相互作用和线粒体裂变。有趣的是,药理学或遗传学抑制SARM1/cADPR通路改善了实验性OA模型中的软骨退化。结论:我们表明SARM1通过激活cADPR依赖性钙信号传导介导线粒体碎片化,进而促进Drp1与FIS1结合。这表明SARM1–cADPR通路在OA病因学中具有未被认识的作用,并将该通路作为有吸引力的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SARM1是否在软骨细胞衰老和骨关节炎中发挥作用,并通过何种机制导致线粒体功能障碍。
核心机制
SARM1通过其NADase活性产生cADPR,cADPR升高细胞内钙离子水平,激活CnA/ERK通路,促进Drp1在Ser616磷酸化和Ser637去磷酸化,增强Drp1与FIS1的相互作用,导致线粒体碎片化,进而驱动软骨细胞衰老和OA进展。
主要证据
人OA软骨和老年鼠软骨中SARM1表达升高;DOX诱导的衰老软骨细胞中SARM1敲低减少衰老和线粒体功能障碍,过表达野生型而非催化失活突变体诱导凋亡和碎片化;外源性cADPR重现表型,8-Br-cADPR阻断效应;在DMM模型中抑制SARM1或cADPR信号减轻软骨退化。
研究意义
首次揭示SARM1-cADPR通路在OA病因中的作用,并提出SARM1作为高安全性疾病修饰治疗靶点,抑制该通路可缓解软骨退化和滑膜炎。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

衰老相关基因筛选

鉴定与软骨细胞衰老和线粒体功能障碍相关的关键基因。

对12、48、96周龄小鼠软骨细胞和P6代复制性衰老软骨细胞进行RNA-seq,与MitoCarta 3.0数据库交集,筛选差异表达基因,发现SARM1变化最显著。

2

SARM1表达验证

验证SARM1在人OA软骨和老年鼠软骨中的表达变化。

通过IHC、qRT-PCR和Western blot检测人OA软骨、小鼠DMM模型及DOX诱导衰老软骨细胞中SARM1的表达,并观察其线粒体转位。

3

SARM1功能获得与丧失

确定SARM1对软骨细胞衰老和线粒体功能的影响。

使用siRNA敲低SARM1或慢病毒过表达野生型及催化失活突变体E642A,检测衰老标志物、凋亡、线粒体膜电位、呼吸功能和形态。

4

机制通路解析

阐明SARM1如何通过cADPR和钙信号调控Drp1磷酸化及线粒体裂变。

检测SARM1敲低或过表达后NAD+和cADPR水平、细胞内钙变化、Drp1磷酸化及线粒体转位;应用外源性cADPR、8-Br-cADPR和BAPTA-AM验证通路依赖性。

5

Drp1受体互作验证

确定SARM1激活后Drp1特异性结合的线粒体外膜受体。

在ATDC5细胞中稳定表达Flag-Mid51、MFF或FIS1,通过共免疫沉淀检测Drp1与各受体的相互作用;在DOX或cADPR处理及siRNA敲低条件下观察变化。

6

离体验证

在保留天然细胞外基质的软骨外植体中验证SARM1/cADPR通路的作用。

使用小鼠股骨头软骨外植体,DOX处理后检测Drp1磷酸化、细胞内钙水平和线粒体膜电位;应用DeNSDP或8-Br-cADPR观察抑制作用。

7

体内药效验证

评估抑制SARM1或cADPR信号对实验性OA小鼠模型的作用。

对DMM诱导的OA小鼠关节内注射AAV5-shSarm1或8-Br-cADPR,通过组织学、OARSI评分、滑膜炎评分和免疫组化评估软骨保护和炎症抑制。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基Gibco--
胎牛血清GibcoA5670701
胶原酶D----
Lipofectamine 3000转染试剂Sigma-Aldrich--
多柔比星----
SA-β-Gal染色试剂盒SolarbioG1580
巴弗洛霉素A1MCEHY-100558
C12FDGMCEHY-126839
TRIzol裂解液Invitrogen--
总RNA提取试剂盒Omega Bio-tekR6834
SuperScript IV UniPrime试剂盒Invitrogen--
Taq Pro通用SYBR预混液VazymeQ712-02
RIPA裂解液Beyotime--
蛋白酶和磷酸酶抑制剂Roche--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
PVDF膜Millipore--
增强化学发光试剂Thermo Fisher Scientific--
SARM1抗体Abcamab309195
COL2A1抗体Proteintech28459-1-AP
MMP13抗体Proteintech18165-1-AP
p21抗体Abcamab109199
p16抗体Abcamab211542
γ-H2A.X抗体Abcamab26350
COXIV抗体Proteintech11242-1-AP
Caspase 3抗体Proteintech19677-1-AP
Cleaved Caspase 3抗体Proteintech25128-1-AP
Caspase 9抗体CST9504
Cleaved Caspase 9抗体CST9509
OPA1抗体Proteintech27733-1-AP
MFN1抗体Proteintech13798-1-AP
MFN2抗体Proteintech12186-1-AP
p-Drp1 s616抗体CST4494
p-Drp1 s637抗体CST20990
Drp1抗体CST8570
MFF抗体Proteintech17090-1-AP
FIS1抗体Proteintech10956-1-AP
p-Erk1/2抗体Proteintech28733-1-AP
Erk1/2抗体Proteintech11257-1-AP
CnA(PPP3CA)抗体Proteintech13422-1-AP
Flag抗体Proteintech66008-4-Ig
GAPDH抗体Abcamab8245
β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
Co-IP裂解液ProteintechPR20037
抗Flag纳米抗体磁珠AlpalifeBioKTSM1361
XF细胞线粒体压力测试试剂盒Agilent103015-100
Fluo-8 AMAbcam--
Rhod-2 AMAAT Bioquest--
Fura-2 AMMCE--
增强型NAD+/NADH检测试剂盒BeyotimeS0176S
Amplite荧光cADP-核糖检测试剂盒AAT Bioquest20305
8-溴-cADPR----
脱氢硝基索尔地平(DeNSDP)----
BAPTA-AM----
CZ-48----
Zeiss LSM 880共聚焦显微镜Zeiss--
透射电子显微镜----
Seahorse XFe24分析仪Agilent--
Illumina NovaSeq平台Illumina--
timsTOF平台----
EnVision 2105酶标仪PerkinElmer--
NanoDrop分光光度计----
Agilent 2100生物分析仪Agilent--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞衰老模型
DOX浓度和暴露时间(100 nM,24小时);细胞汇合度(70-80%);原代软骨细胞来源(新生C57BL/6J小鼠)
阅读提示:Materials and methods: Isolation and culture of primary chondrocytes
SARM1敲低和过表达
siRNA序列和转染浓度(50 nM);慢病毒MOI=50;过表达野生型或E642A突变体
阅读提示:Materials and methods: Transfection of siRNA, Transduction of lentiviral
线粒体功能检测
Seahorse实验的细胞数量、培养基成分(葡萄糖、谷氨酰胺、丙酮酸)及药物注射顺序(oligomycin, FCCP, rotenone/antimycin A);JC-1染色和MitoTracker使用浓度和时间
阅读提示:Materials and methods: Seahorse assay, Assessment of mitochondrial network fragmentation
钙信号检测
荧光染料(Fluo-8 AM, Rhod-2 AM, Fura-2 AM)浓度和孵育时间;cADPR和8-Br-cADPR的浓度
阅读提示:Materials and methods: Measurement of Intracellular Ca²⁺
代谢物检测
NAD+和cADPR检测试剂盒及样品制备方法
阅读提示:Materials and methods: Measurement of NAD⁺ and cADPR Concentrations
蛋白质互作实验
ATDC5细胞稳转Flag标签受体;DOX和cADPR处理浓度;免疫共沉淀流程(裂解缓冲液、抗体偶联磁珠、孵育时间)
阅读提示:Materials and methods: Co-immunoprecipitation assay
离体软骨外植体
小鼠股骨头软骨外植体培养条件;DOX、DeNSDP、8-Br-cADPR浓度;z-stack成像参数
阅读提示:Results: Targeting SARM1 and cADPR attenuates chondrocyte senescence and OA progression
体内OA模型
DMM手术方式;小鼠品系、年龄、性别(C57BL/6J,6-8周,雄性);AAV5-shSarm1或8-Br-cADPR注射方案(剂量、注射次数、时间点);取材时间(8周)
阅读提示:Materials and methods: Animals and establishment of OA model; Results: Targeting SARM1 and cADPR attenuates chondrocyte senescence and OA progression