验证TP53突变对CAR-T耐药的影响
确定TP53突变是否赋予B-ALL细胞对CD19 CAR-T的耐药性。
构建同源697和NALM-6细胞系(TP53+/+、TP53+/−、TP53G245D/+),与CAR-T共培养,检测竞争比例和细胞活力。
FATP2-mediated lipid metabolism enhances chimeric antigen receptor T-cell therapy resistance in B-cell acute lymphoblastic leukemia
包含体外细胞系竞争实验、CRISPR筛选、PDX模型、体内饮食干预、脂质组学、代谢通量及功能验证等多层次证据。
697 B-ALL细胞系(TP53野生型与突变型同源系) NALM-6 B-ALL细胞系(TP53野生型与突变型同源系) 患者来源异种移植瘤(PDX1,PDX2) NSG小鼠移植模型
TP53突变状态(TP53+/−或G245D)及FATP2表达水平 外源性脂质条件(脂质充足/缺乏培养基) CAR-T细胞效应与靶细胞比例(E:T)及处理时间 FAO抑制剂Etomoxir浓度(5 µM)及Lalistat-1处理 SLC27A2基因编辑效率及SLC27A2野生型等位基因频率
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定TP53突变是否赋予B-ALL细胞对CD19 CAR-T的耐药性。
构建同源697和NALM-6细胞系(TP53+/+、TP53+/−、TP53G245D/+),与CAR-T共培养,检测竞争比例和细胞活力。
鉴定TP53突变B-ALL中CAR-T耐药的关键基因。
在697、NALM-6、SEM细胞系中转导Brunello文库,进行CAR-T处理,分析sgRNA丰度变化。
确认FATP2在CAR-T耐药中的功能作用。
通过SLC27A2敲除或敲减,结合脂质充足/缺乏条件,检测CAR-T杀伤敏感性、脂质摄取和脂质组学。
在体内模型中评估FATP2对CAR-T耐药的影响。
使用两个TP53突变PDX模型,通过基因编辑混合细胞,在低脂或高脂饮食下进行CAR-T治疗,分析SLC27A2野生型等位基因频率。
阐明FATP2介导的FAO在CAR-T耐药中的具体机制。
通过脂质组学、代谢通量分析、电子显微镜、单细胞RNA测序、抑制剂处理(Etomoxir、Lalistat-1)等,评估FAO和凋亡通路的变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 去脂胎牛血清 | Captivate Bio | FBS162LD | |
| 药物处理 | Nutlin-3a | MedChemExpress | HY-10029 |
| 基因编辑 | Lenti-Cas9-2A-blast质粒 | Addgene | 73310 |
| dCas9-VPR质粒 | Horizon Discovery | CAS11916 | |
| pLRG载体 | Addgene | 108098 | |
| CAR-T制备 | CD3/CD28磁珠 | -- | -- |
| 白细胞介素-2 | -- | -- | |
| 硫酸鱼精蛋白 | -- | -- | |
| PE偶联Whitlow/218连接抗体 | Cell Signaling Technology | E3U7Q | |
| 细胞活性检测 | CellTiter-Glo试剂盒 | Promega | -- |
| 凋亡检测 | Caspase-Glo 3/7检测试剂盒 | Promega | G8090 |
| Annexin V(APC偶联) | BioLegend | 640920 | |
| Annexin V结合缓冲液 | BioLegend | 422201 | |
| 流式细胞术 | Human TruStain FcX(Fc受体阻断剂) | BioLegend | 422301 |
| CountBright绝对计数微球 | Invitrogen | C36950 | |
| 脂质摄取检测 | BODIPY 493/503荧光染料 | Invitrogen | -- |
| 免疫印迹 | RIPA裂解液 | Thermo Fisher | 89900 |
| p53抗体 | R&D | AF1355 | |
| p21抗体 | Cell Signaling Technologies | 2947 | |
| FATP2抗体 | Proteintech | 14048-1-AP | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technologies | 4970 | |
| 代谢物提取 | 甲醇 | -- | -- |
| 水 | -- | -- | |
| 脂质摄取抑制实验 | 依托莫司 | -- | -- |
| Lalistat-1 | -- | -- | |
| 凋亡抑制实验 | Q-VD-Oph(泛caspase抑制剂) | -- | -- |
| 免疫组织化学 | 油红O溶液 | Abcam | ab150678 |
| 丙二醇 | Abcam | ab150678 | |
| 电子显微镜 | 醋酸铀 | -- | -- |
| 柠檬酸铅 | -- | -- | |
| 琼脂糖 | -- | -- | |
| Embed812树脂 | -- | -- | |
| Tecnai T12透射电子显微镜 | Thermo Fisher | -- | |
| 流式细胞术 | BD Fortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| Sony MA900分选仪 | Sony | -- | |
| Astrios EQ 70分选仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 细胞分选 | Retronectin(重组人纤维连接蛋白片段) | Takara Bio | T100A |
| 细胞培养 | X-VIVO 10无血清培养基 | -- | -- |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| FLT3配体 | -- | -- | |
| 粒细胞集落刺激因子 | -- | -- | |
| 白细胞介素-6 | -- | -- | |
| 干细胞因子 | -- | -- | |
| 促血小板生成素 | -- | -- | |
| 白细胞介素-7 | -- | -- | |
| 基因分型 | GlobalFiler STR分型 | Applied Biosystems | -- |
| ABI 3500XL遗传分析仪 | Applied Biosystems | -- | |
| GeneMapper v6.0软件 | Thermo Fisher | -- | |
| 支原体检测 | MycoAlert支原体检测试剂盒 | Lonza | -- |
| PCR | Q5热启动高保真PCR预混液 | New England Biolabs | M0494 |
| AMPureXP纯化试剂 | Beckman Coulter | A63880 | |
| 基因编辑 | Cas9蛋白 | IDT | -- |
| crRNA | IDT | -- | |
| tracrRNA | IDT | -- | |
| 电穿孔增强子 | IDT | -- | |
| 4D核转染仪 | Lonza | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| β-巯基乙醇 | Gibco | 21985-023 | |
| 流式细胞术 | DAPI染料 | Invitrogen | D1306 |
| 成像流式细胞术 | AlexaFluor 647偶联鬼笔环肽 | ThermoFisher Scientific | A22287 |
| PE偶联抗Whitlow/218连接抗体 | Cell Signaling Technology | 62405 | |
| PE偶联抗CD3抗体 | BioLegend | 300308 | |
| FoxP3固定/破膜缓冲液套装 | BioLegend | 421403 | |
| AlexaFluor 488偶联抗GFP抗体 | Invitrogen | A-21311 | |
| Amnis ImageStreamX Mk II成像流式细胞仪 | Luminex | -- | |
| 原子力显微镜 | JPK原子力显微镜 | Bruker | -- |
| Bruker MSNL-10探针 | Bruker | -- | |
| TPP AFM培养皿 | TPP | 93040 | |
| RNA提取 | RNeasy试剂盒 | Qiagen | 74004 |
| cDNA合成 | 高容量cDNA逆转录试剂盒 | ThermoFisher Scientific | 4368814 |
| qPCR | SYBR Green荧光染料 | ThermoFisher Scientific | A25742 |
| QuantStudio 3实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 测序 | HiSeq 4000测序仪 | Illumina | -- |
| 质谱分析 | Thermo Vanquish超高效液相色谱 | Thermo Fisher | -- |
| Q Exactive质谱仪 | Thermo Fisher | -- | |
| Orbitrap Exploris 120质谱仪 | Thermo Fisher | -- | |
| LipidSearch软件 | Thermo Fisher | -- | |
| 同位素追踪 | 13C标记棕榈酸 | Cambridge Isotope Laboratories | CLM-7896 |
| U-13C18标记油酸 | Cambridge Isotope Laboratories | CLM-460 | |
| U-13C18标记亚油酸 | Cambridge Isotope Laboratories | CLM-3960 | |
| 单细胞测序分析 | Cell Ranger Multi v7.1.0软件 | 10x Genomics | -- |
| Seurat软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系构建 | TP53突变类型(单等位基因或纯合)及验证方法;SLC27A2敲除效率及验证方法 阅读提示:Methods:Gene editing of human B-ALL cell lines and PDXs;Results Fig.3E |
| CAR-T制备与试验 | CAR-T构建(CD19 CAR基于Tisagenlecleucel序列);T细胞供体数量;E:T比例;处理时间(72小时);培养基条件(脂质充足或缺乏) 阅读提示:Methods:Generation of CAR T-cells and CAR-T killing assays;Results Fig.1C |
| 代谢物与脂质分析 | 细胞数量(2×10^6 cells/mL);提取溶剂比例(5:3:2);色谱梯度(5分钟);质谱设置;同位素标记脂肪酸浓度(5 µM) 阅读提示:Methods:Metabolomic and lipidomic profiling |
| 动物模型 | 小鼠品系(NSG);性别比例(雌雄各半);细胞移植数量(1×10^5);CAR-T注射剂量(5×10^5);饮食类型及干预时间(1周);分析时间点(1周后) 阅读提示:Methods:B-ALL in vivo CAR-T therapy;Results Fig.3G-H |
| 数据分析 | CRISPR筛选阈值(log2 fold-change >0.5或<-0.5);GSEA方法及基因集;统计方法(ANOVA、Welch's t test) 阅读提示:Methods:Brunello CRISPR screen and metabolism-focused screen;Results Fig.2-6 |