生成ERβ Y55F敲入小鼠
研究ERβ磷酸酪氨酸开关在宿主中的功能
通过同源重组在小鼠ES细胞中引入Y55F突变,获得纯合突变小鼠(Esr2Y55F/Y55F),并通过PCR和测序验证基因型,免疫印迹确认ERβ蛋白表达水平。
Estrogen receptor beta signaling in CD8+ T cells boosts T cell receptor activation and antitumor immunity through a phosphotyrosine switch
包含基因编辑小鼠模型、多种移植瘤模型、骨髓嵌合体、CD8+ T细胞过继转移、体外TCR激活和信号传导分析、ERβ激动剂联合ICB治疗实验,以及TCGA数据相关性分析,覆盖从细胞到动物模型的多层级验证。
Esr2Y55F/Y55F敲入(KI)小鼠模型 B16F10黑色素瘤模型 MC38结直肠癌模型 M-Wnt、E0771、AT-3、EMT-6乳腺癌模型
ERβ Y55F突变小鼠(Esr2Y55F/Y55F)的基因型验证(PCR和测序) ERβ蛋白在WT、KO和KI小鼠中的表达水平(免疫印迹) 不同肿瘤模型中肿瘤生长曲线的比较(WT vs KI) CD8+ T细胞过继转移至Rag1-/-小鼠后肿瘤生长(B16F10) 体外抗CD3/CD28刺激后CD8+ T细胞中细胞因子(IL-2、IFNγ、TNFα)的ELISA检测
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
研究ERβ磷酸酪氨酸开关在宿主中的功能
通过同源重组在小鼠ES细胞中引入Y55F突变,获得纯合突变小鼠(Esr2Y55F/Y55F),并通过PCR和测序验证基因型,免疫印迹确认ERβ蛋白表达水平。
验证宿主ERβ磷酸酪氨酸开关对肿瘤生长的抑制作用
将多种同基因肿瘤细胞(M-Wnt、MC38、B16F10等)移植到WT和KI小鼠中,测量肿瘤体积和肺转移。
确定宿主ERβ抗肿瘤功能是否来源于骨髓来源细胞
将WT或KI骨髓细胞移植到辐照的WT(CD45.1)受体中,8周后进行肿瘤挑战,比较肿瘤生长和转移。
验证CD8+ T细胞中ERβ信号的细胞自主抗肿瘤功能
纯化WT或KI小鼠的CD8+ T细胞,过继转移至Rag1-/-受体,次日接种B16F10黑色素瘤,监测肿瘤生长。
探究ERβ信号增强CD8+ T细胞活化的机制
纯化的WT和KI CD8+ T细胞经抗CD3/CD28激活,在不同时间点检测ERβ磷酸化水平、细胞因子分泌(ELISA)和TCR信号分子磷酸化(免疫印迹)。
评估ERβ激动剂S-equol增强免疫检查点阻断疗效的可能性
在AT-3、EMT-6、E0771和B16F10肿瘤模型中,使用IgG、抗PD-1、S-equol及两者联合治疗,监测肿瘤生长和肿瘤浸润CD8+ T细胞。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | Rag1-/-小鼠 | The Jackson Laboratory | -- |
| 细胞培养 | HEK293T细胞 | ATCC | -- |
| MC38结肠腺癌细胞 | ATCC | -- | |
| B16F10黑色素瘤细胞 | ATCC | -- | |
| EMT-6乳腺肿瘤细胞 | ATCC | -- | |
| EL4 T淋巴瘤细胞 | ATCC | -- | |
| E0771乳腺肿瘤细胞 | CH3 Biosystems | 940001 | |
| M-Wnt乳腺肿瘤细胞 | Dr. Steven Hursting | -- | |
| AT-3乳腺肿瘤细胞 | Dr. Scott Abrams's lab | -- | |
| ID8agg-Luc卵巢肿瘤细胞 | Dr. Tyler Curiel's lab | -- | |
| DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11965 | |
| 青霉素-链霉素 | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
| 动物实验 | 抗IgG2a抗体 | BioXcell | BE0146 |
| 抗PD-1抗体 | BioXcell | BE0089 | |
| 药物处理 | S-雌马酚 | Ausio Pharmaceuticals | -- |
| 骨髓嵌合体 | 甲氧苄啶-磺胺甲噁唑 | Hi-Tech Pharmacal | -- |
| CD8+ T细胞分离 | EasySep小鼠CD8a正向分选试剂盒II | Stemcell Technologies | 18953 |
| 流式细胞术 | Ghost Dye UV 450 | Tonbo Biosciences | 13-0868 |
| 抗CD16/32抗体 | Tonbo Biosciences | 70-0161 | |
| 抗CD3抗体 | Tonbo Biosciences | 70-0032 | |
| 抗CD4抗体 | Invitrogen | 78-0041-82 | |
| 抗CD8抗体 | BD Biosciences | 557654 | |
| 抗CD11c抗体 | BioLegend | 117309 | |
| 抗F4/80抗体 | BioLegend | 123109 | |
| 抗CXCR3抗体 | Biolegend | 126505 | |
| 抗IFNγ抗体 | Tonbo | 35-7311 | |
| CD8+ T细胞富集 | MagniSort小鼠CD8 T细胞富集试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 体外激活 | 抗CD3抗体(克隆145-2C11) | Bio X Cell | -- |
| 抗CD28抗体(克隆37.51) | Bio X Cell | -- | |
| RT-qPCR | RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| ImPromII逆转录系统 | Promega | -- | |
| SYBR Green | Thermo Scientific | -- | |
| 免疫印迹 | RIPA裂解和提取缓冲液 | -- | -- |
| 细胞分级分离试剂盒 | CST | 9083 | |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Pierce | 23225 | |
| 抗ERβ小鼠单克隆抗体 | Thermo Fisher | MA5-24807 | |
| 抗Zap70抗体 | CST | 3165 | |
| 抗磷酸化Zap70(Tyr319)/Syk(Tyr352)抗体 | CST | 2717 | |
| 抗LAT抗体 | CST | 45533 | |
| 抗磷酸化LAT(Tyr220)抗体 | CST | 20172 | |
| 抗Lck抗体 | CST | 2752 | |
| 抗磷酸化Lck(Tyr505)抗体 | CST | 2751 | |
| 抗波形蛋白抗体 | CST | 5741 | |
| 抗MEK1/2抗体 | CST | 8727 | |
| 抗AIF抗体 | CST | 5318 | |
| 抗α-微管蛋白抗体 | CST | 3873 | |
| ECL SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物 | Thermo Fisher | 34580 | |
| ELISA | 抗CD3/CD28磁珠 | Thermo Fisher | 11452D |
| IL-2 ELISA试剂盒 | R&D | SM2000 | |
| IFNγ ELISA试剂盒 | R&D | MIF00 | |
| TNFα ELISA试剂盒 | R&D | MTA00B | |
| 实验设备 | IVIS Lumina成像系统 | Perkin Elmer | -- |
| LSR II流式细胞仪 | BD Bioscience | -- | |
| FACSAria流式细胞分选仪 | BD Bioscience | -- | |
| 7900HT实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| PrismPad 7软件 | GraphPad Prism Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型 | 小鼠品系、年龄、基因型确认(WT vs Esr2Y55F/Y55F)、饲养条件 阅读提示:详见Methods中'Animals'部分 |
| 肿瘤移植 | 肿瘤细胞系、接种细胞数、接种部位(第四乳腺脂肪垫、皮下、腹腔)、肿瘤测量方法 阅读提示:详见Methods中'In vivo tumor challenges, treatment and assessment'部分 |
| 骨髓嵌合体 | 受体辐照剂量(10 Gy)、骨髓细胞来源(WT或KI)、细胞数(1×10^7)、重建时间(至少8周) 阅读提示:详见Methods中'Bone marrow chimeras'部分 |
| CD8+ T细胞过继转移 | 供体小鼠基因型、CD8+ T细胞分离方法(EasySep Positive Selection Kit II)、细胞数(2×10^6)、受体(Rag1-/-)、肿瘤接种时间 阅读提示:详见Methods中'Adoptive transfer of CD8+ T cells'部分 |
| 体外T细胞激活 | 抗CD3/CD28浓度(10 μg/mL / 1 μg/mL)、包被条件、激活时间点、细胞培养基 阅读提示:详见Methods中'CD8 T cell isolation and in vitro activation'部分 |