通过HuR相互作用增强DNMT3表达的lncRNA RMST(已撤稿)

RETRACTED: lncRNA RMST Enhances DNMT3 Expression through Interaction with HuR

作者信息Wan-Xin Peng, Pratirodh Koirala, Wei Zhang, Chao Ni, Zheng Wang, Liu Yang, Yin-Yuan Mo
PMID31636039
期刊Mol Ther
发布时间2020-01-08
DOI10.1016/j.ymthe.2019.09.024

实验完整度

包含CRISPR文库筛选、多细胞系敲除与回补、RNA稳定性实验、RNA pull-down和RIP等分子机制验证,及DNA甲基化功能实验。证据层级完整,功能与机制验证明确。

主要模型

MCF-7乳腺癌细胞系 MIA PaCa-2胰腺癌细胞系 HCT-116结肠癌细胞系

重点核对

RMST KO细胞系中DNMT3A和DNMT3B mRNA和蛋白水平的下降 RMST KO导致整体DNA甲基化降低约40% RMST与HuR和AUF1的相互作用,促进HuR与DNMT3B 3'UTR的结合 RMST增加DNMT3A和DNMT3B mRNA的稳定性(半衰期延长) DNMT3B 3'UTR报告系统筛选条件(嘌呤霉素浓度1.5 μg/mL,处理4天)

摘要

大量研究表明,基于CRISPR/Cas9的文库筛选是鉴定基因功能的非常强大的工具。然而,这些研究大多集中于蛋白质编码基因,而且很少有研究使用基因报告基因进行筛选。在本研究中,我们生成了DNA甲基转移酶3B(DNMT3B)报告基因,并针对一组聚焦的lncRNA筛选了CRISPR/Cas9协同激活介质(SAM)文库。通过这种筛选方法,我们鉴定了横纹肌肉瘤2相关转录本(RMST)作为DNMT3B的正调控因子。通过SAM激活内源性RMST或异位表达RMST证实了这一点。此外,RMST敲除(KO)抑制DNMT3,而在KO细胞中用RMST拯救可恢复DNMT3水平。最后,RMST KO抑制整体DNA甲基化,导致甲基化调控基因上调。机制上,RMST促进RNA结合蛋白HuR与DNMT3B 3'UTR之间的相互作用,增加DNMT3B的稳定性。总之,这些结果不仅为CRISPR文库筛选提供了报告系统的可行性,而且证明了先前未表征的因子RMST在调节DNA甲基化中的重要作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
lncRNA是否通过DNMT3的3'UTR调控其表达,从而影响整体DNA甲基化?
核心机制
lncRNA RMST与RNA结合蛋白HuR相互作用,增强HuR与DNMT3B 3'UTR的结合,从而稳定DNMT3B mRNA,提高其表达。
主要证据
通过DNMT3B 3'UTR报告系统筛选SAM文库鉴定出RMST;通过细胞系中RMST KO和回补实验验证其对DNMT3表达的正调控;通过RNA pull-down、RIP和RNA稳定性实验证明RMST促进HuR结合并稳定mRNA。
研究意义
研究首次将3'UTR报告系统用于CRISPR文库筛选以鉴定lncRNA功能,揭示了RMST作为DNA甲基化调控因子的新角色,为癌症治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

DNMT3B 3'UTR报告系统筛选SAM文库

鉴定能够调节DNMT3B mRNA稳定性的lncRNA

构建DNMT3B 3'UTR与嘌呤霉素抗性基因的报告载体,导入MCF-7细胞中,利用SAM系统激活内源lncRNA表达,通过嘌呤霉素筛选富集候选gRNA。

2

RMST对DNMT3表达的正向调控验证

验证RMST是否正向调控DNMT3A和DNMT3B的表达

在MCF-7、MIA PaCa-2和HCT-116细胞中利用CRISPR/Cas9敲除RMST,检测DNMT3A和DNMT3B的mRNA和蛋白水平,并在KO细胞中回补RMST观察恢复效果。

3

RMST对整体DNA甲基化的影响

探究RMST是否通过DNMT3调控影响整体DNA甲基化水平

提取RMST KO细胞的基因组DNA,使用甲基化定量试剂盒检测5-mC水平,并检测甲基化调控的肿瘤抑制基因表达。

4

机制研究:RMST与HuR相互作用稳定DNMT3 mRNA

阐明RMST增强DNMT3表达的分子机制

通过RNA沉淀和RIP实验检测RMST与HuR及AUF1的相互作用,以及RMST对HuR结合DNMT3B 3'UTR的影响;通过放线菌素D处理分析mRNA稳定性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
pGL3-control载体Promega--
DNMT3A抗体Cell Signaling Technology2160
DNMT3B抗体Cell Signaling Technology67259
DNMT1抗体Cell Signaling Technology5032
AUF1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-166577
HuR抗体Santa Cruz Biotechnologysc-5261
GAPDH抗体Protein Tech--
RPMI 1640培养基Sigma--
DMEM培养基Sigma--
胎牛血清----
马血清Gibco--
L-谷氨酰胺Lonza--
NEBuilder HiFi DNA组装试剂盒New England Biolabs--
Phusion聚合酶Thermo Fisher Scientific--
DNAfectin转染试剂Applied Biological Materials--
Direct-zol RNA小提试剂盒Zymo Research--
RevertAid逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
SYBR Green染料----
PCR引物Integrated DNA Technologies--
MethylFlash DNA甲基化定量试剂盒Epigentek--
Quick-DNA微量提取试剂盒Zymo Research--
生物素-16-UTPPerkinElmer--
链霉亲和素磁珠Pierce--
Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒Millipore--
PVDF膜----
Odyssey成像系统LI-COR Biosciences--
Stratalinker紫外交联仪Stratagene--
MCF-7细胞系ATCC--
MIA PaCa-2细胞系ATCC--
HCT-116细胞系ATCC--
pCDH-MSCV-copGFP-T2A-Pu载体System Biosciences--
pCR8载体Invitrogen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
文库筛选
MCF-7细胞中SAM组件的稳定表达;SAM文库gRNA设计(每个lncRNA 5个gRNA,总共421个lncRNA);嘌呤霉素筛选浓度1.5 μg/mL,处理4天,再培养10天
阅读提示:Materials and Methods 中 'SAM Library' 和 'Library Screening' 部分,以及 Figure 1 的图注
RMST敲除和回补
CRISPR/Cas9 KO克隆的鉴定(通过基因组PCR和qRT-PCR确认);回补实验中RMST表达载体的使用(感染后2天收获细胞)
阅读提示:Materials and Methods 中 'KO of RMST by the CRISPR/Cas9 Approach' 以及 Figure 2 和 Figure 3 的图注
RNA稳定性检测
放线菌素D处理浓度2 μg/mL,时间点0、2、4、6、8小时;CHX处理浓度20 μg/mL(用于蛋白稳定性)
阅读提示:Materials and Methods 中 'RNA Stability Assay' 和 Figure 5 的图注
RNA-蛋白质相互作用
RNA pull-down使用生物素标记的RNA探针(RMST、DNMT3B 3'UTR和5'UTR),细胞裂解液孵育2小时,链霉亲和素磁珠沉淀;RIP使用HuR或AUF1抗体,UV交联条件为254 nm,150 mJ/cm2
阅读提示:Materials and Methods 中 'RNA Precipitation' 和 'UV Crosslinking RNA Immunoprecipitation',以及 Figure 6 的图注
DNA甲基化检测
采用MethylFlash DNA甲基化定量试剂盒检测整体DNA甲基化;每个实验至少重复三次,统计分析使用t检验或双因素方差分析
阅读提示:Materials and Methods 中 'Global DNA Methylation Analysis' 以及 Figure 4 的图注