Uli-epic:从超低投入样本中分析RNA修饰

Uli-epic: profiling RNA modifications from ultra-low input samples

作者信息Weizhi He, Chu Xu, Wen Chen, Xiao Jiang, Yuhang Wang, Yong Peng, Shujuan Chang, Wei Zhu, Jiuhong Kang, Lulu Hu
PMID41219823
发布时间2025-11-11
DOI10.1186/s13059-025-03857-3

实验完整度

包含方法开发、体外细胞验证、动物模型(FGR小鼠)以及组织样本(NSC和精子)的多层级实验,并进行了功能验证和机制探索。

主要模型

HEK 293T细胞系 胎儿生长受限(FGR)小鼠模型 小鼠神经干细胞(NSC) 小鼠精子

重点核对

RNA投入量:Uli-epic BID-seq为100 pg-1 ng,Uli-epic GLORI为10 ng 化学处理条件:BID-seq使用亚硫酸氢盐处理,GLORI使用乙二醛和亚硝酸盐处理 线性扩增步骤:T7 RNA聚合酶介导的体外转录 测序平台和读长:MGI T7平台,双端100 bp 差异修饰位点的统计阈值:Ψ为绝对变化≥20%,p<0.05;m6A为绝对变化≥15%,p<0.05

摘要

High-throughput sequencing with chemical labeling enables robust, transcriptome-wide detection of RNA modifications at single-nucleotide resolution. However, these methods typically require substantial RNA amounts due to harsh treatments. We introduce Uli-epic, an innovative library construction strategy that enables profiling epitranscriptomic modifications using 100 pg to 1 ng of RNA. Utilizing Uli-epic BID-seq, we investigate pseudouridine (Ψ) sites in neural stem cells and sperm RNA from wild-type and fetal growth restriction mice, using only 500 pg of rRNA-depleted RNA. Uli-epic GLORI quantifies m6A in sperm and neural stem cells from wild-type and fetal growth restriction mice, using 10 ng of rRNA-depleted RNA.

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
开发一种能对超低投入RNA进行表观转录组修饰分析的文库构建策略,并用于揭示FGR小鼠NSC和精子中Ψ和m6A的修饰图谱。
核心机制
Uli-epic策略通过poly(A)加尾、逆转录模板转换和T7 RNA聚合酶介导的线性扩增,实现对超低投入RNA的化学处理兼容和信号放大。
主要证据
在HEK 293T细胞中,Uli-epic BID-seq使用100 pgRNA即可检测到Ψ位点,且与常规BID-seq(20 ng)一致性高;Uli-epic GLORI使用10 ngRNA检测m6A,与常规GLORI(200 ng)位点重叠率高。
研究意义
该方法将RNA修饰检测的投入量降低至皮克级,为临床样本和稀有样本的表观转录组研究提供了工具,并为FGR相关认知障碍和跨代遗传的分子机制提供了潜在的生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

Uli-epic策略建立与验证

建立并验证Uli-epic文库构建策略的可行性和准确性。

将Uli-epic应用于常规RNA-seq,用1 ng和100 pg mRNA建库,与常规RNA-seq(20 ng)比较基因表达相关性,并评估检测基因数、覆盖率等。

2

Uli-epic BID-seq验证

验证Uli-epic与BID-seq结合后,在超低投入RNA中检测Ψ的准确性和敏感性。

对HEK 293T mRNA分别用BID-seq(20 ng)和Uli-epic BID-seq(1 ng和100 pg)处理,加入Ψ对照RNA,比较检测到的Ψ位点数目、stoichiometry、分布特征等。

3

Uli-epic GLORI验证

验证Uli-epic与GLORI结合后,在超低投入RNA中检测m6A的准确性和敏感性。

对HEK 293T mRNA分别用GLORI(200 ng)和Uli-epic GLORI(10 ng)处理,加入m6A对照RNA,比较m6A位点数量、stoichiometry、motif等。

4

FGR小鼠模型建立

建立FGR小鼠模型,用于研究FGR条件下NSC和精子RNA修饰的变化。

通过给怀孕小鼠喂食低蛋白饮食(8%蛋白)建立FGR模型,正常饮食(20%蛋白)作为对照。

5

NSC和精子RNA修饰图谱分析

比较WT和FGR小鼠NSC和精子中Ψ和m6A的修饰图谱,并鉴定差异修饰位点。

从FGR和WT小鼠的NSC(胚胎17.5天)和精子中提取rRNA去除的总RNA,进行Uli-epic BID-seq和Uli-epic GLORI,分析Ψ和m6A位点及其差异,并进行GO富集分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MycAway™ Plus-Color一步法支原体检测试剂盒Yeasen--
高糖DMEM培养基GIBCO--
胎牛血清----
青霉素----
链霉素----
C57BL/6J小鼠SLAC Laboratory Animal Company--
Nestin-GFP小鼠----
TRIzol试剂Invitrogen--
体细胞裂解缓冲液----
神经组织解离试剂盒Miltenyi Biotec130-092-628
Hibernate™-A培养基InvitrogenA1247501
红细胞裂解缓冲液Biogems64010-00-100
DAPISolarbioC0060
BD FACS Aria II流式细胞分选仪BD--
VAHTS mRNA捕获磁珠VazymeN401
Ribo-off rRNA去除试剂盒VazymeN406
T4多核苷酸激酶NEBM0201S
T4 RNA连接酶2(截短KQ)NEBM0373S
5'脱腺苷酶NEBM0331S
RecJf核酸外切酶NEBM0247S
SuperScript™ III逆转录酶Thermo Fisher Scientific18080051
T4 RNA连接酶1(高浓度)NEBM0437M
大肠杆菌Poly(A)聚合酶NEBM0276
Oligo Clean & Concentrator试剂盒Zymo ResearchD4061
SuperScript™ IV模板转换RT预混液Thermo FisherA65423
大肠杆菌RNase HNEBM0297L
Q5热启动高保真预混液NEBM0494
核酸外切酶INEBM0293S
T7高产RNA转录试剂盒Vazyme--
SPRIselect磁珠BeckmanB23318
乙二醛溶液Sigma-Aldrich50649
硼酸Sigma-AldrichB0394
T4多核苷酸激酶NEBM0201S
RNA Clean & Concentrator-5Zymo Research--
RNA脱磺酸缓冲液Zymo ResearchR5001-3-40

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
Uli-epic BID-seq
RNA投入量:100 pg-1 ng;BID处理条件:70°C 3小时;逆转录酶和条件:模板转换酶Mix,42°C 90分钟;线性扩增:T7 High Yield RNA Transcription Kit;测序深度:30-100 G
阅读提示:Methods: Uli-epic BID-seq
Uli-epic GLORI
RNA投入量:10 ng;GLORI处理条件:50°C 30分钟,16°C 8小时;逆转录酶和条件:模板转换酶Mix,42°C 90分钟;线性扩增:T7 High Yield RNA Transcription Kit;测序深度:约160 G
阅读提示:Methods: Uli-epic GLORI
FGR模型
饮食:正常(20%蛋白)或蛋白限制(8%蛋白);喂养时间:0.5 dpc至分娩
阅读提示:Methods: Experimental animals
NSC样本制备
小鼠品系:Nestin-GFP;胚胎龄:17.5天;流式分选:Nestin阳性细胞;RNA提取:TRIzol
阅读提示:Methods: Purification of dentate neural progenitors
精子样本制备
小鼠年龄:10-12周;精子来源:附睾尾;体细胞裂解:0.1% SDS, 0.5% Triton X-100,冰上40分钟;RNA提取:TRIzol
阅读提示:Methods: Sperm sample collection