Tim-3通过抑制CD4 T细胞中的NF-κB信号通路调控脓毒症诱导的免疫抑制

Tim-3 regulates sepsis-induced immunosuppression by inhibiting the NF-κB signaling pathway in CD4 T cells

作者信息Siyuan Huang, Di Liu, Jianhui Sun, Huacai Zhang, Jing Zhang, Qiang Wang, Lebin Gan, Guoxin Qu, Jinchao Qiu, Jin Deng, Jianxin Jiang, Ling Zeng
PMID34933101
期刊Mol Ther
发布时间2022-03
DOI10.1016/j.ymthe.2021.12.013

实验完整度

高

包含患者样本RNA-seq和流式验证、小鼠CLP模型(first hit和second hit)基因敲除生存实验、体外LPS刺激功能实验、HMGB1结合实验及NF-κB通路蛋白磷酸化分析。

主要模型

脓毒症免疫抑制患者外周血CD4 T细胞 小鼠CLP first hit和second hit模型 小鼠原代CD4 T细胞(Tim-3+和Tim-3-)

重点核对

CD4 T细胞中Tim-3条件性敲除(Cd4CreTim-3fL/fL)和系统性敲除(Tim-3-/-) 脓毒症模型:CLP first hit和CLP second hit(CLP后第4天鼻内给予5×10^8 CFU的肺炎链球菌) LPS刺激浓度:100 ng/mL,处理时间0、2、4、6小时 临床队列:36例脓毒症患者,分存活组(30例)和死亡组(6例),检测Tim-3+ CD4 T细胞比例

摘要

严重脓毒症引起的免疫抑制仍然是一个严重的人类健康问题。脓毒症诱导的免疫抑制的证据包括T淋巴细胞功能受损、T淋巴细胞耗竭或耗竭、对机会性医院感染的易感性增加以及细胞因子分泌失衡。CD4 T细胞在脓毒症期间的细胞和体液免疫反应中发挥关键作用。在此,通过RNA测序分析,我们发现脓毒症诱导的免疫抑制患者CD4 T细胞上含T细胞免疫球蛋白和黏蛋白结构域3(Tim-3)的表达显著升高。此外,脓毒症患者Tim-3+ CD4 T细胞的百分比与脓毒症诱导的免疫抑制的死亡率相关。在CD4 T细胞中条件性敲除Tim-3和系统性敲除Tim-3均通过保留器官功能降低了小鼠脓毒症的死亡率。与Tim-3−CD4 T细胞相比,Tim-3+ CD4 T细胞表现出增殖能力降低和抑制性标志物表达升高。共定位分析表明,HMGB1是与CD4 T细胞上Tim-3结合的配体,其结合抑制了脓毒症诱导的免疫抑制期间Tim-3+ CD4 T细胞中的NF-κB信号通路。总之,我们的发现揭示了Tim-3调控脓毒症诱导免疫抑制的机制,并为此病症提供了一个新的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Tim-3在脓毒症诱导的免疫抑制中如何调控CD4 T细胞功能及其机制?
核心机制
HMGB1作为配体与CD4 T细胞上的Tim-3结合,抑制NF-κB信号通路,导致CD4 T细胞增殖能力降低、抑制性标志物表达升高和炎性细胞因子分泌减少,从而促进免疫抑制。
主要证据
RNA-seq显示脓毒症患者CD4 T细胞Tim-3表达显著升高;流式细胞术验证Tim-3+ CD4 T细胞比例升高并与患者死亡率相关;CD4 T细胞条件性敲除或系统性敲除Tim-3降低CLP second hit模型小鼠死亡率并保护器官功能;Tim-3+ CD4 T细胞增殖能力降低、LAG3和2B4表达升高、IL-10分泌增加而TNF-α等减少;通过结合实验和免疫共沉淀证明HMGB1与Tim-3结合,且Western blot显示Tim-3+ CD4 T细胞中NF-κB通路磷酸化受抑。
研究意义
该研究揭示了Tim-3在脓毒症诱导免疫抑制中的机制,为脓毒症免疫抑制提供了新的治疗靶点,并提示Tim-3+ CD4 T细胞比例可作为预测脓毒症免疫抑制相关死亡的生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者样本转录组分析

发现脓毒症免疫抑制患者CD4 T细胞中差异表达基因

收集20例脓毒症患者(诊断后14天)和20例健康志愿者外周血,分选CD4 T细胞进行RNA-seq,并通过RT-PCR和流式细胞术验证关键基因表达。

2

小鼠脓毒症模型生存实验

验证Tim-3敲除对脓毒症死亡率的影响

使用Cd4CreTim-3fL/fL、Tim-3-/-和野生型小鼠,建立CLP first hit和CLP second hit模型,观察生存率,并检测血清生化指标和组织病理。

3

Tim-3+ CD4 T细胞功能表型分析

比较Tim-3+和Tim-3- CD4 T细胞在脓毒症免疫抑制中的增殖、抑制性标志物和细胞因子分泌差异

从CLP小鼠PBMCs中分选Tim-3+和Tim-3- CD4 T细胞,通过流式检测Ki67、LAG3、2B4表达,并体外LPS刺激检测细胞因子分泌。

4

HMGB1与Tim-3相互作用验证

证明HMGB1是CD4 T细胞上Tim-3的配体

通过ELISA结合实验、免疫共沉淀和免疫荧光检测HMGB1与Tim-3的结合,并排除Gal-9的作用。

5

NF-κB信号通路检测

验证Tim-3表达对NF-κB信号通路的影响

分选CLP second hit小鼠Tim-3+和Tim-3- CD4 T细胞,RNA-seq分析差异表达基因,并通过Western blot检测LPS刺激后相关蛋白磷酸化水平。

6

临床相关性分析

评估Tim-3+ CD4 T细胞比例与脓毒症患者死亡率的关系

分析36例脓毒症患者(30例存活,6例死亡)外周血中Tim-3+ CD4 T细胞比例。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RNeasy Plus 试剂盒Qiagen74134
VAHTS Total RNA-seq文库制备试剂盒Vazyme--
Illumina NovaSeq 6000 测序仪Illumina--
FACS Coulter Beckman EPICS XL 流式细胞仪Beckman--
ChemiDoc Touch 成像系统Bio-Rad--
iScript cDNA 合成试剂盒Bio-Rad1708890
SsoFast EvaGreen 超混液Bio-Rad172-5204
Proteome Profiler Array 小鼠 XL 细胞因子芯片试剂盒R&D SystemsARY028
小鼠 IL-1β ELISA 试剂盒R&D SystemsMLB00C
小鼠 TNF-α ELISA 试剂盒R&D SystemsMTA00B
小鼠 IL-6 ELISA 试剂盒R&D SystemsD6050
小鼠 IL-10 ELISA 试剂盒R&D SystemsM1000B
小鼠 Gal-9 ELISA 试剂盒FineTestEM1059
小鼠 HMGB1 ELISA 试剂盒FineTestEM0382
抗Flag M2抗体----
抗HMGB1抗体R&D SystemsMAB16901
抗Tim-3抗体GeneTexGTX54055
对照免疫球蛋白Beckman-Coulter731705
重组Tim-3蛋白R&D Systems1529-TM
重组RAGE蛋白R&D Systems1179-RG
重组Gal-9蛋白R&D Systems3535-GA
His标签蛋白纯化试剂盒R&D SystemsIP999
肺炎链球菌 (#bio00005)Biobwbio00005
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
脂多糖----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者样本采集与处理
脓毒症确诊后14天采集外周血;排除标准(年龄<18岁,有基础疾病);知情同意;伦理委员会批准
阅读提示:Materials and methods: Patient samples
小鼠模型建立
小鼠品系(C57BL/6,8-12周龄,性别匹配);CLP手术具体步骤(结扎远端1/3,18Ga针刺穿);CLP后4天鼻内给予肺炎链球菌浓度5×10^8 CFU;麻醉和镇痛药物剂量
阅读提示:Materials and methods: Animals, Sepsis first hit model, Sepsis second hit model
CD4 T细胞分选
流式分选策略和所用抗体(CD4、CD3等);分选后细胞纯度验证
阅读提示:Materials and methods: Flow cytometry analysis
体外LPS刺激
LPS浓度100 ng/mL,处理时间点(0,2,4,6h)
阅读提示:Results: Tim-3 blocking in CD4 T cells induced the activation of NF-κB/TNF-α signaling pathway; Figure 5C
HMGB1结合实验
重组蛋白来源和浓度;His标签纯化;生物素标记HMGB1;涂板蛋白(Tim-3, RAGE, Gal-9)
阅读提示:Materials and methods: Measurement of the Tim-3-HMGB1 interaction
免疫共沉淀
细胞系(U937, THP1);转染Flag-Tim-3或control载体;LPS刺激条件;抗Tim-3抗体浓度;裂解液成分
阅读提示:Materials and methods: Immunoblotting and coimmunoprecipitation
临床队列分析
患者纳入标准(Sepsis-3诊断,病程>14天);分组(存活/非存活);Tim-3+ CD4 T细胞比例检测方法
阅读提示:Results: Sepsis non-surviving patients have higher proportion of Tim-3-positive CD4 T cells than surviving patients; Table S3