综合基因组和转录组分析揭示胰腺导管腺癌肝转移的独特特征及补体C1q的促转移作用

Integrated genomic and transcriptomic analysis reveals unique characteristics of hepatic metastases and pro-metastatic role of complement C1q in pancreatic ductal adenocarcinoma

作者信息Jianyu Yang, Ping Lin, Minwei Yang, Wei Liu, Xueliang Fu, Dejun Liu, Lingye Tao, Yanmiao Huo, Junfeng Zhang, Rong Hua, Zhigang Zhang, Yixue Li, Liwei Wang, Jing Xue, Hong Li, Yongwei Sun
PMID33397441
发布时间2021-01-04
DOI10.1186/s13059-020-02222-w

实验完整度

高

包括WES、RNA-seq、免疫组化、免疫荧光、Transwell和伤口愈合实验等多层次验证,涵盖基因组、转录组、蛋白表达和功能实验。

主要模型

17例肝寡转移性PDAC配对原发肿瘤与肝转移灶 35例肝寡转移性PDAC配对样本 CFPAC-1和SW1990人PDAC细胞系 105例非转移性PDAC配对样本

重点核对

WES和RNA-seq样本量:11例(9例N-PT-HM三组和2例PT-HM对)用于WES,13例(6例N-PT-HM三组和7例PT-HM对)和1例单独HM用于RNA-seq C1q促迁移和侵袭实验:使用人PDAC细胞系CFPAC-1和SW1990 C1q蛋白表达验证:免疫组化检测C1q在PT、HM及非转移性PDAC中的表达 C1q来源验证:免疫荧光共定位C1q与CD68和CD163 统计阈值:DEG定义为FDR<0.05且|log2FC|>1;GSEA显著性阈值FDR<0.25

摘要

背景:胰腺导管腺癌(PDAC)因其高肝转移率而成为最致命的癌症之一。然而,由于新鲜组织获取困难和肿瘤细胞含量低,对肝转移的分子特征知之甚少。结果:我们对17例肝寡转移性胰腺导管腺癌的同步手术切除的原发肿瘤和配对肝转移灶进行了外显子组测序和RNA测序,并在35例此类病例的标本中验证了我们的发现。对体细胞突变、拷贝数改变和基因表达的综合分析显示,原发肿瘤和肝转移灶之间具有高度相似性。然而,肝转移灶也表现出独特的特征,如更高程度的3p21.1缺失、更强的增殖能力、上皮间质转化活性下调以及代谢重编程。更有趣的是,在肝转移灶中观察到改变的肿瘤微环境,尤其是肿瘤浸润M2巨噬细胞比例更高和补体级联反应上调。进一步的实验表明,C1q在原发肿瘤和肝转移灶中表达增加,C1q主要由M2巨噬细胞产生,并且C1q促进PDAC细胞的迁移和侵袭。结论:综上所述,我们发现了可能促进PDAC转移不同阶段的潜在因素。我们的研究拓宽了对驱动PDAC转移的分子机制的理解。关键词:胰腺导管腺癌,肝转移,基因组学,转录组学,肿瘤微环境,C1q

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
胰腺导管腺癌肝转移灶与原发肿瘤在基因组和转录组水平上的差异及其促进转移的分子机制是什么?
核心机制
C1q主要由M2巨噬细胞产生,在肿瘤微环境中作为促转移因子促进PDAC细胞的迁移和侵袭;肝转移灶中EMT活性下调、代谢重编程(OXPHOS和PPP上调)以及3p21.1缺失可能是驱动转移和转移灶生长的机制。
主要证据
基于17例配对样本的WES和RNA-seq,结合35例配对样本的IHC/IF验证,发现C1q在PT和HM中高表达,且在体外促进细胞迁移和侵袭。
研究意义
该研究首次系统揭示同步切除的肝寡转移性PDAC原发灶和转移灶的分子特征,为转移性PDAC的预后和精准治疗提供潜在依据,并提示同步切除肝转移灶和原发灶的可行性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

基因组变异分析

鉴定原发肿瘤和肝转移灶中的体细胞突变和拷贝数改变,并比较两者异同。

对11例患者的配对PT和HM进行全外显子组测序,使用MuTect、VarScan2、Strelka等工具鉴定体细胞突变,使用CNVkit和GISTIC2分析拷贝数改变。

2

转录组分析

比较原发肿瘤、肝转移灶和正常胰腺组织的基因表达差异,揭示转移相关的转录组特征。

对14例患者的33个样本进行bulk RNA-seq,进行PCA、DEG分析、GSEA和GSVA,并利用CIBERSORTx和xCell评估免疫细胞浸润比例。

3

免疫组化和免疫荧光验证

在独立样本中验证转录组发现的蛋白表达变化,并确定C1q的细胞来源。

对35例配对样本的TMA进行IHC染色检测E-cadherin、N-cadherin、Ki67、CCNA2、TGFβ1、WNT5a和C1q;对组织切片进行IF染色检测C1q与CD68、CD163的共定位。

4

体外功能实验

验证C1q对PDAC细胞迁移和侵袭能力的影响。

使用人PDAC细胞系CFPAC-1和SW1990,通过Transwell实验(迁移和侵袭)和伤口愈合实验评估外源纯化人C1q处理后细胞的迁移和侵袭能力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
QIAamp DNA Mini KitQiagen--
Qubit 2.0荧光计Life Technologies--
Nanodrop 2000分光光度计ThermoScientific--
组织芯片仪Beecher Instruments--
Covaris超声破碎仪Covaris--
AMpure XP磁珠Beckman--
SeqCap EZ Human Exome Library v3.0Roche--
Dynabeads M-270链霉亲和素磁珠Life Technologies--
KAPA HiFi PCR预混液KAPA Biosystem--
QIAzol裂解试剂Qiagen--
RNeasy MinElute纯化试剂盒Qiagen--
Bioanalyzer 2100生物分析仪Agilent--
NEBNext Oligo d(T) 25磁珠NEB--
NEBNext RNA第一和第二链合成模块NEB--
E-cadherin抗体ServicebioGB13083
Cyclin A2抗体Abcamab181591
N-cadherin抗体ServicebioGB13136
Ki67抗体ServicebioGB13030-2
Wnt5a抗体Proteintech55184-1-AP
TGFβ1抗体ServicebioGB11179
C1q抗体DakoCode
CD68抗体Abcamab955
CD163抗体Abcamab87099
CD8A抗体Abcamab93278
DAPILife Technologies62247
Zeiss Axioplan 2荧光显微镜Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
全外显子组测序
样本量:11例配对PT和HM(9例N-PT-HM三组,2例PT-HM对);测序深度:肿瘤129x,正常63x;突变调用工具及过滤条件(至少两种方法支持,去除1000G中AF>0.1%的变异);CNA阈值:|log2ratio|>0.3
阅读提示:Methods: Whole-exome sequencing; Whole-exome sequencing data processing; Germline and somatic mutations calling; Copy number alteration calling and tumor purity
RNA测序
样本量:13例配对(6例N-PT-HM三组,7例PT-HM对)加1例单独HM;RNA-seq建库方法(NEBNext试剂,3μg总RNA);测序平台:Illumina Hiseq X-Ten;比对工具:STAR(hg19);DEG阈值:FDR<0.05且|log2FC|>1;GSEA阈值:FDR<0.25
阅读提示:Methods: RNA sequencing; RNAseq data processing; PCA, differential expressed genes, and gene set enrichment analysis
免疫组化和免疫荧光
样本:35例配对PT和HM的TMA(其中12例为测序患者);抗体及稀释度(文中未明确说明);染色评分方法:H-score
阅读提示:Methods: Tissue microarray (TMA) construction; Immunohistochemistry; Figure legends
体外细胞功能实验
细胞系:CFPAC-1和SW1990;C1q处理浓度和处理时间(文中未明确说明);Transwell实验参数(孔径、涂胶、细胞数、时间)及伤口愈合实验参数(划痕宽度、成像时间)
阅读提示:Results: C1q acts in tumor microenvironment as a pro-metastasis factor; Figure 5f