唐氏综合征先证者及其父母样本的收集与测序
获得高质量的基因组序列,用于组装chr21着丝粒。
从Coriell细胞库和Emory生物样本库获取样本,提取高分子量DNA,使用PacBio HiFi和超长ONT测序。
Complete chromosome 21 centromere sequencing of families with Down syndrome
研究包含多个独立证据层级:长读长基因组组装与验证、着丝粒表观遗传分析(甲基化与CENP-A)、功能验证(IF-FISH与DiMeLo-seq)以及群体遗传学与系统发育分析,并进行功能与机制验证。
唐氏综合征先证者AG16777及其父母(三人组) 唐氏综合征先证者及母亲的母子二人组 来自HPRC、HGSVC和阿拉伯泛基因组计划的对照个体
唐氏综合征先证者及父母样本来源:AG16777来自Coriell细胞库,其他来自Emory大学生物样本库 长读长测序平台及覆盖率:PacBio HiFi(父母30×,先证者60×)和超长ONT(>100 kbp) 基因组组装方法:Verkko和hifiasm,选择最完整着丝粒组装的版本 着丝粒大小及α-卫星HOR组成:11-mer占比、最小着丝粒大小(143 kbp和181 kbp) 着丝粒大小不对称判断标准:>10倍差异 对照组样本量:287个chr21着丝粒
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得高质量的基因组序列,用于组装chr21着丝粒。
从Coriell细胞库和Emory生物样本库获取样本,提取高分子量DNA,使用PacBio HiFi和超长ONT测序。
获得完整的chr21着丝粒单倍型序列。
使用Verkko和hifiasm进行基因组组装,通过比对到参考基因组并进行验证,提取chr21着丝粒序列。
描述各单倍型着丝粒的α-卫星高阶重复(HOR)组成和大小。
使用HumAS-HMMER分析α-卫星HOR组成,并通过RepeatMasker注释。
表征着丝粒的表观遗传特征,特别是着丝粒低甲基化区域(CDR)。
利用ONT和HiFi测序数据,通过CDR-Finder鉴定CDR,并比较不同样本的甲基化模式。
检测着丝粒蛋白CENP-A和CENP-C的定位和水平,评估着丝粒功能。
对AG16777和7210079家系成员进行IF-FISH和CENP-A DiMeLo-seq,检测蛋白积累。
比较唐氏综合征个体与对照群体chr21着丝粒大小分布,检验小着丝粒富集假说。
将24个T21着丝粒与287个对照着丝粒比较,统计分析大小差异。
重建chr21着丝粒单倍型的进化历史,推断不对称着丝粒的起源。
利用着丝粒侧翼序列构建最大似然系统发育树,估算分化时间。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| DNA提取 | Monarch高分子量DNA提取试剂盒(细胞和血液) | New England Biolabs (NEB) | T3050L |
| DNA定量 | Qubit双链DNA高灵敏度定量试剂 | Thermo Fisher | Q32854 |
| DNA片段分析 | FEMTO脉冲电场电泳系统 | Agilent | M5330AA |
| DNA剪切 | Megaruptor 3剪切仪 | Diagenode | B06010003 |
| PacBio HiFi文库构建 | SMRTbell文库制备试剂盒3.0 | PacBio | 102-182-700 |
| 序列长度筛选 | Pippin HT核酸片段回收系统 | Sage Science | HTP0001 |
| PacBio HiFi测序 | SMRT Cell 8M芯片 | PacBio | 101-389-001 |
| Sequel II测序化学试剂3.2 | PacBio | 102-333-300 | |
| SMRT Cell 25M芯片 | PacBio | 102-817-900 | |
| ONT测序 | 超长DNA测序试剂盒 | Oxford Nanopore Technologies (ONT) | SQK-ULK001或SQK-ULK114 |
| FLO-PRO002 R9.4.1测序芯片 | Oxford Nanopore Technologies (ONT) | FLO-PRO002 | |
| FLO-PRO114M R10.4.1测序芯片 | Oxford Nanopore Technologies (ONT) | FLO-PRO114M | |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞周期同步 | 秋水仙胺 | -- | -- |
| 免疫荧光 | 小鼠CENP-A单克隆抗体 | Enzo | ADI-KAM-CC006-E |
| 小鼠CENP-C单克隆抗体 | Abcam | ab50974 | |
| 山羊抗小鼠IgG二抗(FITC偶联) | Abcam | ab6785 | |
| FISH | pZ21A质粒 | -- | -- |
| Cy3-dUTP荧光标记 | Enzo | 42501 | |
| 显微镜 | 徕卡DMRXA2荧光显微镜 | Leica | -- |
| 制冷CCD相机 | Princeton Instruments | -- | |
| CENP-A DiMeLo-seq | 小鼠抗CENP-A抗体 | Enzo | ADI-KAM-CC006 |
| 兔抗IgG抗体 | Abcam | ab171870 | |
| S-腺苷甲硫氨酸 | New England Biolabs (NEB) | B9003S | |
| Monarch高分子量DNA提取试剂盒(细胞和血液) | New England Biolabs (NEB) | T3050S | |
| ONT文库制备 | 超长DNA测序试剂盒V14 | Oxford Nanopore Technologies (ONT) | SQK-ULK114 |
| ONT测序 | PromethION 24 R10.4.1测序芯片 | Oxford Nanopore Technologies (ONT) | FLOPRO114M |
| Strand-seq | Hoechst 33258染料 | -- | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| AluI限制酶 | New England Biolabs (NEB) | -- | |
| HpyCH4V限制酶 | New England Biolabs (NEB) | -- | |
| Hemo KlenTaq DNA聚合酶 | New England Biolabs (NEB) | -- | |
| AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| Strand-seq测序 | NextSeq 550测序仪 | Illumina | -- |
| 基因组组装 | Verkko | -- | -- |
| hifiasm | -- | -- | |
| 序列比对 | minimap2 | -- | -- |
| pbmm2 | -- | -- | |
| Winnowmap | -- | -- | |
| BWA | -- | -- | |
| 甲基化分析 | guppy | -- | -- |
| dorado | -- | -- | |
| modkit | -- | -- | |
| modbam2bed | -- | -- | |
| CDR-Finder | -- | -- | |
| CenMAP | -- | -- | |
| 结构变异检测 | PBSV | -- | -- |
| Sniffles2 | -- | -- | |
| Delly | -- | -- | |
| 单核苷酸变异检测 | DeepVariant | -- | -- |
| 系统发育分析 | MAFFT | -- | -- |
| IQ-TREE | -- | -- | |
| iTOL | -- | -- | |
| FigTree | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集 | 样本来源:Coriell细胞库(AG16777,AG16778,AG16782)和Emory大学生物样本库(7个先证者和6个母亲),需确认样本类型(外周血或淋巴母细胞样细胞系),以及年龄信息(母亲需<35岁,以确保MMIE)。 阅读提示:Material and methods - Sample recruitment and data collection |
| DNA提取与长读长测序 | DNA提取试剂盒类型、测序平台(PacBio Sequel II或Revio)、覆盖率要求(父母30×,先证者60×)、超长ONT读长(>100 kbp)。 阅读提示:Material and methods - PacBio HiFi sequencing; UL-ONT sequencing |
| 基因组组装与着丝粒提取 | 组装软件版本(Verkko v1.2-2.1, hifiasm v0.19.5-0.19.9)、着丝粒区域定义(chr21:10700000-11650000)以及验证方法(NucFreq、StainedGlass、HumAS-HMMER)。 阅读提示:Material and methods - Genome assembly; Centromere characterization and validation |
| 着丝粒α-卫星HOR组成分析 | 判定着丝粒完整的标准:与参考基因组比对时需延伸至q臂着丝粒旁区域,且HOR类型主要11-mer,需确认特定家系中的特殊HOR组成(如5-mer、4-mer)。 阅读提示:Material and methods - Centromere characterization and validation; Results - Population chr21 centromere diversity and phylogeny |
| CpG甲基化与CDR鉴定 | 甲基化调用工具(guppy, dorado, modkit等)及其版本,CDR鉴定算法CDR-Finder的版本与参数,以及CDR的最小大小阈值(25 kbp),并需手动确认。同时需注意血液与细胞系样本之间CDR位置一致但甲基化水平可能不同。 阅读提示:Material and methods - CpG methylation and CDR analysis; Results - Population chr21 centromere diversity and phylogeny |
| CENP-A与CENP-C检测 | IF-FISH方法中使用的抗体(CENP-A:Enzo ADI-KAM-CC006-E;CENP-C:Abcam ab50974)及浓度;DiMeLo-seq方法中使用的抗体(CENP-A:Enzo ADI-KAM-CC006;IgG:Abcam ab171870)及纳米抗体-Hia5的浓度;需在中期染色体上进行检测。 阅读提示:Material and methods - Cell culture, slide preparation and immunofluorescence (IF) combined with fluorescence in situ hybridization (FISH); CENP-A DiMeLo-seq |
| 群体对照比较 | 对照样本的着丝粒大小信息来源(HGSVC、HPRC、阿拉伯泛基因组计划),以及是否使用CenMAP进行验证;对照样本的数量,以便进行统计检验。 阅读提示:Material and methods - Centromere characterization and validation; Results - Asymmetry of centromeric α-satellite HOR length |
| 系统发育分析 | 用于比对的着丝粒侧翼序列(q臂20 kbp),以及外群(黑猩猩)的使用;需确保人-黑猩猩分化时间估计(6.4百万年),以及使用的软件(MAFFT, IQ-TREE)和参数。 阅读提示:Material and methods - Phylogenetic analysis |