验证KAT抑制诱导ISG表达
确认p300/CREBBP催化抑制在AML细胞中诱导ISG表达的现象。
使用scRNA-seq和定量蛋白质组学分析MOLM-13和OCI-AML3细胞经KATi或DMSO处理24小时后的ISG表达变化;在14种AML细胞系中检测CXCL10表达;使用独立KAT抑制剂CPI-1612进行验证。
Inhibition of p300/CREBBP catalytic activity drives context-dependent transcriptional activation in AML
包含体外细胞系功能实验、多组学分析(scRNA-seq、SLAM-seq、PRO-seq、ChIP-seq、蛋白质组学)以及体内异种移植和小鼠模型验证,并进行了CRISPR筛选和Perturb-seq机制验证。
MOLM-13细胞系(KMT2A重排AML) OCI-AML3细胞系(NPM1突变AML) MOLM-13异种移植NSG小鼠模型 Npm1c/Flt3-ITD突变驱动的C57BL/6小鼠AML模型
KAT抑制剂处理浓度和时间(如A-485 1000 nM,24小时) STAT1敲低对ISG诱导和细胞活力的影响 BRDi和Deg作为对照处理对p300/CREBBP功能的影响 IFNa(10 ng/mL)与KATi(500 nM)联合处理的协同效应 体内模型中KATi(100 mg/kg)和IFNa(1×10^6 U/kg)的给药方案
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认p300/CREBBP催化抑制在AML细胞中诱导ISG表达的现象。
使用scRNA-seq和定量蛋白质组学分析MOLM-13和OCI-AML3细胞经KATi或DMSO处理24小时后的ISG表达变化;在14种AML细胞系中检测CXCL10表达;使用独立KAT抑制剂CPI-1612进行验证。
确定STAT1是否为KAT抑制诱导ISG表达的关键介质。
通过诱导性shRNA敲低STAT1,检测对CXCL10表达和细胞活力的影响。
区分催化抑制与支架/信号整合功能对ISG诱导的作用。
使用SLAM-seq分析新生和总RNA的动态变化;分别用KATi、BRDi和Deg处理,并分析ISG表达和基因集富集。
研究KAT抑制对p300/CREBBP染色质结合的影响。
通过RIME、SILAC乙酰化蛋白质组学和ChIP-seq分析p300/CREBBP及其相互作用网络;进行基序富集和GO分析。
探究KAT抑制后哪些转录因子和共调节因子在IRF/ISG位点组装。
通过PRO-seq和ChIP-seq分析转录变化和因子结合,比较增加和减少转录的区域,并进行基序分析。
确定p300/CREBBP乙酰相互作用组成员在KATi诱导的ISG表达和细胞毒性中的作用。
进行全基因组CRISPR-Cas9 dropout筛选和聚焦Perturb-seq,分析基因敲除对ISG表达和细胞活力的影响。
确认KAT抑制促进STAT1在IRF/ISG位点的从头招募。
通过ChIP-seq和ChIP-qPCR检测STAT1结合,并进行western blot检测总STAT1和磷酸化STAT1水平。
评估KATi与IFNa联合对ISG表达和凋亡的协同作用。
使用KATi(A-485或CPI-1612)和IFNa处理AML细胞,检测CXCL10表达和凋亡。
评估KATi与IFNa联合在AML小鼠模型中的治疗效果。
MOLM-13异种移植NSG小鼠和Npm1c/Flt3-ITD小鼠模型,给予vehicle、IFNa、KATi或联合治疗,监测生存期和白血病浸润。
测试KATi与IFNa联合在AML和CMML原代细胞中的效果。
处理原代单核细胞,检测ISG表达、细胞活力和凋亡。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| StemSpan SFEMII培养基 | StemCell Technologies | -- | |
| CD34+扩增添加物(UM729, SR1) | -- | -- | |
| 药物处理 | A-485 | -- | -- |
| CPI-1612 | -- | -- | |
| (S,S)-CPI-1612 | -- | -- | |
| inobrodib | -- | -- | |
| p300/CREBBP的PROTAC降解剂 | -- | -- | |
| 干扰素α | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo试剂盒 | Promega | -- |
| 凋亡检测 | Annexin V / 7-AAD染料 | -- | -- |
| RT-qPCR | SYBR Green | -- | -- |
| 蛋白质印迹 | 抗STAT1抗体 | -- | -- |
| 抗磷酸化STAT1抗体 | -- | -- | |
| 抗β-微管蛋白抗体 | -- | -- | |
| 染色质免疫沉淀 | 抗p300抗体 | -- | -- |
| 抗CREBBP抗体 | -- | -- | |
| 抗ARID1A抗体 | -- | -- | |
| 抗H3K27ac抗体 | -- | -- | |
| 抗H3K27me3抗体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞培养基和添加物(如RPMI-1640、FBS)、人原代细胞培养条件(StemSpan SFEMII + CD34+扩增添加物) 阅读提示:Methods: Primary samples; Cell culture(如有补充) |
| 药物处理 | KATi(A-485)和CPI-1612的浓度和处理时间,以及对照化合物(如(S,S)-CPI-1612、BRDi、Deg)的浓度 阅读提示:Methods: 相关抑制剂描述及图注 |
| 基因表达检测 | RNA提取、RT-qPCR条件和内参基因(如GAPDH) 阅读提示:见图1和图例的qPCR方法 |
| 蛋白质检测 | Western blot的抗体和稀释比例 阅读提示:见图5和相关图注,补充方法 |
| 染色质免疫沉淀 | ChIP-seq和ChIP-qPCR的细胞数量、抗体、片段化条件 阅读提示:Methods: 补充方法中的ChIP步骤 |
| 流式分析 | 凋亡和细胞周期检测的染色步骤和仪器设置 阅读提示:Methods: 图6图注 |
| 体内模型 | 小鼠品系、年龄、照射剂量、细胞注射数量和途径、治疗开始时间、给药方案 阅读提示:Methods: In vivo studies; 图7图注 |