确认SCFFBXL17底物并验证突变体
验证KEAP1 BTB突变体是否被SCFFBXL17识别,并确认突变体与野生型结构相似。
在体外通过结合实验检测35S标记KEAP1突变体与FBXL17结合;使用SEC和SEC-MALS分析突变体和野生型BTB结构域的二聚状态;使用圆二色光谱监测尿素变性曲线;通过X射线晶体学解析KEAP1突变体结构。
Structural basis for dimerization quality control
结合体外生化、细胞降解实验、结构生物学(X射线晶体学、冷冻电镜)和组学分析(MudPIT质谱)等多种独立证据层级,并进行功能与机制验证。
293T细胞 KEAP1 BTB结构域(野生型及突变体) KLHL12 BTB结构域(野生型及突变体) 体外重建的SCFFBXL17复合物
KEAP1 BTB突变体(F64A, V98A, V99A) FBXL17野生型及突变体(LRR+CTH组合突变、ΔCTH) 293T细胞共转染 体外泛素化测定 FRET二聚体解离测定
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证KEAP1 BTB突变体是否被SCFFBXL17识别,并确认突变体与野生型结构相似。
在体外通过结合实验检测35S标记KEAP1突变体与FBXL17结合;使用SEC和SEC-MALS分析突变体和野生型BTB结构域的二聚状态;使用圆二色光谱监测尿素变性曲线;通过X射线晶体学解析KEAP1突变体结构。
揭示SCFFBXL17如何识别单体BTB结构域。
纯化SCFFBXL17与KEAP1突变体BTB结构域复合物,分别通过X射线晶体学和冷冻电镜解析结构。
通过突变分析确定FBXL17底物识别所需的表面。
在293T细胞中表达FBXL17突变体或KEAP1突变体,通过免疫共沉淀和Western blot检测结合及降解情况。
验证SCFFBXL17是否诱导异常二聚体解离。
使用FRET测定,监测KEAP1突变体二聚体在FBXL17作用下的解离;将内源KLHL12复合物与重组FBXL17孵育,检测异二聚体变化。
验证结构域交换β折叠片在底物识别中的关键作用。
通过引入影响β折叠片稳定性或改变β-strand与螺旋区的突变,检测SCFFBXL17对这些突变体的识别变化,并使用结构模型预测异二聚体中的clash。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 重组蛋白表达与纯化 | KEAP1 BTB结构域(残基48-180)及突变体,FBXL17(310-701)与SKP1复合物的表达系统、纯化条件。 阅读提示:参见Methods中的'Protein purifications' |
| 体外结合实验 | SCFFBXL17与KEAP1突变体结合实验中的蛋白浓度、缓冲液、孵育时间和温度;竞争蛋白如GroEL的使用。 阅读提示:参见Methods中的'In vitro assays'及图4相关描述 |
| 细胞降解实验 | 293T细胞转染条件(DNA量、转染试剂)、FBXL17及突变体表达、KEAP1底物、dnCUL1的转染比例、细胞收集时间。 阅读提示:参见Methods中的'Cell culture analyses'及图3相关描述 |
| 泛素化实验 | 体外翻译反应及泛素化反应的组分组成:RRL、35S-甲硫氨酸、FBXL17、抗泛素抗体量、反应时间。 阅读提示:参见Methods中的'In vitro assays' |
| FRET实验 | 蛋白标记、二聚体形成的步骤;FRET实验中的荧光团、浓度、缓冲液、温度、测定时间。 阅读提示:参见Methods中的'Protein Labeling for Fluorescence Energy Transfer'和'Fluorescence Resonance Energy Transfer Assay and Analysis' |