肥胖诱导巨噬细胞上的PD-1抑制抗肿瘤免疫

Obesity induces PD-1 on macrophages to suppress anti-tumour immunity

作者信息Jackie E Bader, Melissa M Wolf, Gian Luca Lupica-Tondo, Matthew Z Madden, Bradley I Reinfeld, Emily N Arner, Emma S Hathaway, KayLee K Steiner, Gabriel A Needle, Zaid Hatem, Madelyn D Landis, Eden E Faneuff, Amondrea Blackman, Elysa M Wolf, Matthew A Cottam, Xiang Ye, Madison E Bates, Kyra Smart, Wenjun Wang, Laura V Pinheiro, Anthos Christofides, DuPreez Smith, Vassiliki A Boussiotis, Scott M Haake, Kathryn E Beckermann, Kathryn E Wellen, Cynthia A Reinhart-King, C Henrique Serezani, Cheng-Han Lee, Christa Aubrey, Heidi Chen, W Kimryn Rathmell, Alyssa H Hasty, Jeffrey C Rathmell
PMID38867043
期刊Nature
发布时间2024-06
DOI10.1038/s41586-024-07529-3

实验完整度

包含体外细胞实验、体内肿瘤模型、单细胞测序和临床样本分析等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证(如敲除、抑制剂、代谢分析)

主要模型

小鼠MC38结肠癌同系皮下移植模型 小鼠6419c5胰腺癌模型 小鼠LVRCC肾癌模型 人肾透明细胞癌肿瘤样本 人子宫内膜癌肿瘤样本

重点核对

使用45 kcal%高脂饮食或10 kcal%低脂饮食喂养20-25周诱导肥胖 皮下注射5×10^5 MC38细胞,肿瘤生长19天 抗PD-1(RMP1-14)或IgG对照在肿瘤可触及后第9、11、13、15天腹腔注射200 μg 骨髓来源巨噬细胞用IFNγ(50 ng/ml)或IL-4(50 ng/ml)或25%肿瘤条件培养基刺激24小时 LysMCre Pdcd1fl/fl小鼠用于髓系特异性PD-1敲除

摘要

肥胖是许多癌症进展和转移的主要风险因素,但在某些情况下可提高生存率和对免疫检查点阻断疗法(包括靶向PD-1的抗PD-1疗法)的反应。尽管肥胖促进慢性炎症,但免疫系统在肥胖与癌症联系及免疫治疗中的作用仍不清楚。已证明除T细胞外,巨噬细胞也能表达PD-1。我们研究发现肥胖选择性诱导肿瘤相关巨噬细胞(TAM)上的PD-1表达。与肥胖相关的I型炎症细胞因子和分子,包括干扰素-γ、肿瘤坏死因子、瘦素、胰岛素和棕榈酸酯,以mTORC1和糖酵解依赖的方式诱导巨噬细胞PD-1表达。PD-1随后向TAM提供负反馈,抑制糖酵解、吞噬作用和T细胞刺激潜能。相反,PD-1阻断增加了巨噬细胞糖酵解水平,这对于PD-1抑制增强TAM表达CD86和主要组织相容性复合体I和II类分子以及激活T细胞的能力至关重要。髓系特异性PD-1缺陷减缓了肿瘤生长,增强了TAM糖酵解和抗原呈递能力,并导致CD8+ T细胞活性增加,耗竭标志物水平降低。这些发现表明,肥胖相关的代谢信号和炎症线索导致TAM诱导PD-1表达,进而驱动TAM特异性反馈机制,损害肿瘤免疫监视。这可能有助于解释肥胖中癌症风险增加但PD-1免疫治疗反应改善的现象。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肥胖如何影响肿瘤相关巨噬细胞的PD-1表达及其在抗肿瘤免疫和免疫治疗反应中的作用?
核心机制
肥胖相关的炎症因子和代谢物通过mTORC1和糖酵解途径诱导TAM上的PD-1表达,PD-1随后反馈抑制TAM的糖酵解、吞噬作用和抗原呈递能力,从而抑制抗肿瘤免疫。
主要证据
通过DIO小鼠模型、scRNA-seq、流式细胞术、细胞外通量分析、临床试验样本和髓系特异性敲除小鼠,证明PD-1在TAM上的表达受肥胖诱导,且PD-1阻断或敲除可恢复TAM功能并增强CD8+ T细胞活性。
研究意义
揭示了PD-1作为TAM代谢调节剂的新机制,为肥胖相关癌症风险和免疫治疗反应提供了可能的解释,并为联合治疗策略提供了理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立饮食诱导肥胖模型并评估肿瘤生长和抗PD-1反应

验证高脂饮食是否影响肿瘤生长及抗PD-1治疗的疗效。

将C57BL/6J小鼠喂食低脂饮食(10% kcal)或高脂饮食(45% kcal)20-25周,皮下注射MC38结肠癌细胞,肿瘤生长19天后给予抗PD-1或IgG对照,测量肿瘤生长和体重。

2

单细胞转录组分析肿瘤免疫微环境

比较不同饮食和处理组肿瘤中免疫细胞组成和基因表达差异。

从MC38肿瘤中分离CD45+和CD45−细胞进行scRNA-seq,鉴定免疫细胞亚群并分析基因表达,同时进行V(D)J测序分析TCR克隆性,并用Compass分析代谢状态。

3

表征肥胖对TAM功能的影响

确定高脂饮食是否改变肿瘤相关巨噬细胞的吞噬、抗原呈递和代谢表型。

通过流式细胞术测量TAM的吞噬能力(pHrodo)、MHC-I/II表达、CD80表达,以及用Seahorse分析糖酵解水平。

4

检测肥胖和炎症对巨噬细胞PD-1表达的影响

验证肥胖相关的细胞因子、脂肪酸和炎症信号是否直接诱导巨噬细胞PD-1。

用LPS、IFNγ、IL-4、TCM、IL-6、MCP1、IL-1β、TNF、瘦素、胰岛素、棕榈酸等处理BMDMs,检测PD-1表达;使用免疫组化分析人类肿瘤样本中PD-1+巨噬细胞。

5

研究PD-1对巨噬细胞代谢和功能的直接作用

确定PD-1是否直接调节巨噬细胞糖酵解、吞噬和抗原呈递能力。

通过FACS分选PD-1+和PD-1low/− TAM进行bulk RNA-seq和细胞外通量分析;使用rmPD-L1或抗PD-1处理TCM刺激的BMDMs,检测代谢和功能;使用CRISPR敲除Pten激活mTORC1,观察PD-1表达变化。

6

评估髓系特异性PD-1缺失对肿瘤免疫的影响

验证巨噬细胞PD-1在肿瘤免疫监视中的直接作用。

使用LysMCre Pdcd1fl/fl小鼠和野生型对照,皮下接种MC38细胞,测量肿瘤生长,分析TAM功能和CD8+ T细胞活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗PD-1抗体(RMP1-14)BioXCell--
大鼠IgG2a同型对照(2A3)BioXCell--
巨噬细胞集落刺激因子Peprotech--
干扰素-γ----
白细胞介素-4----
棕榈酸----
脂多糖----
2-脱氧葡萄糖Cayman Chemical14325
依托莫昔Cayman Chemical11969
6-重氮-5-氧代-L-正亮氨酸Sigma-AldrichD2131
雷帕霉素Sigma--
KJ Pyr 9MedChemExpress--
10058-F4MedChemExpress--
BMS-345541Sigma--
AICARSigma--
Seahorse XFe96生物分析仪Agilent--
Cell-TakCorning354240
MitoStress检测试剂盒Agilent--
GlycoStress检测试剂盒Agilent--
Fc受体阻断剂BD553142
Ghost Dye Red 780死活染料Cell Signaling18452S
pHrodo红色大肠杆菌生物颗粒InvitrogenP35361
BODIPY FL C16荧光染料Invitrogen--
2-NBDG葡萄糖类似物SigmaA8625
重组小鼠PD-L1(rmPD-L1)R&D Systems9048-B7
胶原酶Sigma-AldrichC2674
脱氧核糖核酸酶ISigma-AldrichD5025
MACS CD45磁珠Miltenyi130-110-618
死细胞去除试剂盒Miltenyi130-090-101
CD11b磁珠Miltenyi130-049-601
Chromium控制器10x Genomics--
Illumina NovaSeq 6000测序仪Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
饮食诱导肥胖模型
饮食配方(D12451或D12450H)、喂养持续时间(20-25周)、小鼠周龄和性别、代谢参数(血糖和胰岛素)
阅读提示:方法部分'Diet treatment'和扩展数据图1
肿瘤模型建立
细胞系(MC38等)、注射细胞数(如5×10^5)、注射途径(皮下或原位)、肿瘤生长天数、肿瘤测量方式
阅读提示:方法部分'Cell lines and primary macrophage isolation'和'Diet treatment'
抗PD-1治疗
抗体克隆(RMP1-14)、剂量(200 μg)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(第9、11、13、15天)
阅读提示:方法部分'Diet treatment'
巨噬细胞分离和培养
骨髓来源巨噬细胞制备(M-CSF浓度和天数)、BMDM刺激条件(IFNγ、IL-4浓度和时间)、肿瘤条件培养基制备方法
阅读提示:方法部分'Cell lines and primary macrophage isolation'
代谢分析
细胞数量、培养基成分、Seahorse分析仪型号、相关试剂浓度(寡霉素、FCCP等)
阅读提示:方法部分'Extracellular flux assay'
流式细胞术
抗体克隆和荧光素、染色浓度、死活染料、Fc阻断、gating策略
阅读提示:方法部分'Mouse flow cytometry'和补充图