LentiMutate技术验证
验证慢病毒转导能否产生耐药突变。
在H1993和HCC827细胞中转入RUVBL1和EGFR突变体cDNA,用致死剂量药物处理,鉴定耐药细胞并测序。
Lentiviral-Driven Discovery of Cancer Drug Resistance Mutations
研究包含多个独立的证据层级:使用多种细胞系进行体外功能验证(如H1993、HCC827、K562),鉴定耐药突变并进行功能验证,分析了患者样本(CML)的RNA-seq和WES数据,并使用结构分析(PDB 6OIM)解释机制。
H1993非小细胞肺癌细胞系 HCC827非小细胞肺癌细胞系 K562慢性粒细胞白血病细胞系 H358非小细胞肺癌细胞系
使用慢病毒转导的MOI约为0.3,以约30%的嘌呤霉素抗性细胞比例确定 使用M-RT(RT-M230I突变体)提高突变率并减少突变偏好 Doxycycline诱导浓度1 μg/mL,用于表达目标cDNA 药物处理浓度和时长:吉非替尼1 μmol/L、奥希替尼100 nmol/L、伊马替尼1 μmol/L、AMG 510 1 μmol/L 对耐药细胞进行全ORF或大片段扩增子测序,以识别点突变和结构变异
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证慢病毒转导能否产生耐药突变。
在H1993和HCC827细胞中转入RUVBL1和EGFR突变体cDNA,用致死剂量药物处理,鉴定耐药细胞并测序。
提高LentiMutate的效率。
在包装质粒pCMV-dR8.91中引入RT的M230I突变,比较WT-RT和M-RT的突变率和突变偏好。
鉴定EGFR对吉非替尼和奥希替尼的耐药突变。
在HCC827细胞中转入EGFRdel746–750 cDNA,用吉非替尼或奥希替尼处理,鉴定耐药突变。
鉴定BCR-ABL1对伊马替尼的耐药突变。
在K562细胞中转入BCR-ABL1 p210 cDNA,用伊马替尼处理,鉴定耐药突变和结构变异。
验证LentiMutate鉴定的缺失突变是否赋予伊马替尼耐药。
构建表达SV8、SV11、NTCD和35INS变体的K562细胞,检测对伊马替尼和阿西米尼的敏感性。
确认缺失突变单独足以驱动耐药。
通过CRISPR敲除内源BCR-ABL1,同时表达外源变体,检测细胞对doxycycline的依赖和药物敏感性。
在CML患者样本中寻找与LentiMutate发现的缺失相似的剪接变异。
对120例CML患者样本进行RNA-seq和WES,分析BCR-ABL1剪接变体。
鉴定KRAS对AMG 510的耐药突变。
在H358细胞中转入KRAS-WT或KRAS-G12C cDNA,用AMG 510处理,鉴定耐药突变。
解释KRAS耐药突变的结构基础。
使用KRAS-G12C:AMG 510共晶结构(PDB 6OIM)对V9D和Y96H等突变进行建模分析。
验证LentiMutate鉴定的KRAS突变是否赋予耐药。
在H358细胞中表达鉴定的KRAS突变体,检测对AMG 510和MRTX849的敏感性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Millipore Sigma | R8758 |
| 胎牛血清 | ThermoFisher Scientific | 26140079 | |
| Lenti-X 293T细胞 | Takara | 632180 | |
| 慢病毒生产 | FuGene6转染试剂 | Promega | E2691 |
| 免疫印迹 | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | ThermoFisher Scientific | 23225 | |
| Mini-PROTEAN TGX凝胶 | BioRad | 4561096 | |
| Trans-Blot Turbo RTA Mini硝酸纤维素转印试剂盒 | BioRad | 1704270 | |
| Trans-Blot Turbo转印系统 | BioRad | 1704150 | |
| TBS Odyssey封闭缓冲液 | LI-COR | 927-50100 | |
| ABL1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-131 | |
| GAPDH抗体 | GeneTex | GTX627408 | |
| 山羊多克隆抗小鼠IRDye 680RD偶联物 | LI-COR | 925-68070 | |
| 山羊多克隆抗兔IRDye 800CW偶联物 | LI-COR | 925-32211 | |
| 细胞培养 | 聚凝胺 | Santa Cruz Biotechnology | sc-134220 |
| 嘌呤霉素 | InvivoGen | ant-pr-1 | |
| 遗传霉素(G418) | ThermoFisher Scientific | 11811031 | |
| 诱导表达 | 多西环素 | MilliporeSigma | D9891 |
| 药物处理 | 化合物B | Daiichi-Sankyo | -- |
| 吉非替尼 | Selleck Chemicals | S1025 | |
| 奥希替尼 | Selleck Chemicals | S7297 | |
| 伊马替尼 | Selleck Chemicals | S2475 | |
| AMG 510 | MedChemExpress | HY-114277 | |
| MRTX849 | Selleck Chemicals | S8884 | |
| DNA提取 | DNeasy血液和组织试剂盒 | Qiagen | 69504 |
| PCR | Q5定点突变试剂盒 | New England BioLabs | E0554S |
| Q5热启动聚合酶 | New England Biolabs | M0494S | |
| 测序 | KAPA HyperPrep试剂盒 | Roche | -- |
| NextSeq500测序平台 | Illumina | -- | |
| MiSeq测序平台 | Illumina | -- | |
| HiSeq 3000测序平台 | Illumina | -- | |
| Agilent Tapestation 4200 | Agilent | -- | |
| Qubit荧光定量仪 | ThermoFisher Scientific | -- | |
| Covaris S2超声破碎仪 | Covaris | -- | |
| 细胞染色 | 结晶紫 | Millipore Sigma | C6158 |
| 甲醛 | Fisher Scientific | 50-980-487 | |
| 细胞活力检测 | MTS试剂 | Promega | G3582 |
| SpectraMax 190酶标仪 | Molecular Devices | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 慢病毒转导 | MOI约0.3,嘌呤霉素抗性细胞比例约30%;转导细胞数需根据cDNA大小调整(如1kb为5,250,000) 阅读提示:Materials and Methods, 'Performing LentiMutate to identify drug resistance mutations' |
| 逆转录酶突变 | M-RT突变(M230I)的使用 阅读提示:Results, 'The M230I substitution in the lentiviral reverse transcriptase enzyme' |
| 药物处理 | 药物浓度和暴露时间:吉非替尼1 μmol/L、奥希替尼100 nmol/L、伊马替尼1 μmol/L、AMG 510 1 μmol/L;处理时间直至耐药集落出现 阅读提示:Materials and Methods, 'Performing LentiMutate...' |
| cDNA表达诱导 | doxycycline浓度1 μg/mL(某些实验为200 ng/mL或500 ng/mL) 阅读提示:Figure legends 和 Materials and Methods |
| 测序分析 | 对EGFR全ORF、BCR-ABL1大片段、KRAS扩增子进行测序;使用UMI标记测序评估突变率 阅读提示:Materials and Methods, 'Performing LentiMutate...' 和 'Analysis of RT mutation rates' |
| 患者样本分析 | 120例CML患者样本的RNA-seq和WES数据;分选标准(新诊断或TKI耐药) 阅读提示:Materials and Methods, 'Samples of patients with chronic myeloid leukemia' |