单核RNA测序及肿瘤细胞组分分析
鉴定化疗后残余的恶性持久细胞并分析化疗对肿瘤细胞组成的影响
对20对匹配的诊断和手术样本进行snRNA-seq,整合248,591个细胞核,通过inferCNV和标志基因鉴定恶性细胞,比较诊断和手术时各细胞类型比例变化。
Identification and Characterization of Chemotherapy-Resistant High-Risk Neuroblastoma Persister Cells
包含患者配对样本snRNA-seq与WGS、PDX模型、细胞系功能验证及体内异种移植实验等多层级验证。
患者配对肿瘤样本(诊断与手术) PDX小鼠模型(COG-424x、COG-496x) 神经母细胞瘤细胞系(LAN5、IMR5、SKNSH、SHEP、BE2C等) NSG小鼠异种移植模型(BE2-LUC+TAMs+CAFs)
MYCN扩增状态及ALK/TP53突变状态与持久细胞亚型的关联 化疗药物处理方案(topotecan、etoposide的IC90剂量及3周间隔模拟临床) NFκB活性抑制(JSH-23、ML120B)对细胞存活的影响 TAMs和CAFs条件培养基对NFκB活性和耐药性的增强作用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定化疗后残余的恶性持久细胞并分析化疗对肿瘤细胞组成的影响
对20对匹配的诊断和手术样本进行snRNA-seq,整合248,591个细胞核,通过inferCNV和标志基因鉴定恶性细胞,比较诊断和手术时各细胞类型比例变化。
根据信号通路激活模式定义持久细胞的转录程序
对86,901个持久细胞核进行基于通路的聚类,使用VISION计算52条hallmark通路得分,选择9条最信息通路进行Louvain聚类,并用Hotspot鉴定基因模块,得到四种持久细胞亚型。
评估诊断时遗传改变对持久细胞表型的影响
对肿瘤对进行批量WGS,比较诊断和手术样本的CNV和SNV,并将持久细胞亚型与MYCN扩增、ALK/TP53突变、11q缺失等遗传事件关联。
验证非增殖持久细胞中MYC(N)活性被抑制
通过GSEA比较非增殖和增殖持久细胞的差异表达基因,显示MYC(N)靶基因是最显著负富集通路;使用IF/IHC验证TOP2A和MKI67蛋白下降;在PDX模型和细胞系中验证化疗后MYCN/MYC蛋白下降。
研究NFκB信号在持久细胞中的作用及上游激活因素
使用GFP报告基因检测基础NFκB活性,发现与topotecan耐药相关;CRISPR-Cas9敲除RelA降低细胞存活;用PRRX1诱导间充质转化证明间充质状态与NFκB激活相关;化疗或TAM/CAF条件培养基可诱导NFκB活性。
验证抑制NFκB可消除持久细胞并阻止肿瘤进展
NSG小鼠皮下注射BE2-LUC细胞+人TAMs和CAFs,用etoposide加或不加JSH-23处理,测量生物发光和肿瘤大小。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| snRNA-seq文库制备 | Chromium单细胞3'试剂盒 | 10x Genomics | -- |
| 测序平台 | Novaseq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 核提取 | 杜恩斯匀浆器 | Millipore Sigma | D8938 |
| 核过滤 | 40微米细胞过滤器 | Falcon | 352340 |
| WGS文库制备 | Quick-DNA微量制备加试剂盒 | Zymo Research | D4074 |
| Illumina DNA制备(M)标签化试剂盒 | Illumina | 20018705 | |
| Nextera DNA CD索引试剂盒 | Illumina | 20018707 | |
| 细胞培养 | RPMI培养基 | -- | -- |
| 药物处理 | 拓扑替康 | Teva | -- |
| 依托泊苷 | Teva | -- | |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒 | Promega | G7570 |
| Western blot | 细胞裂解液 | Cell Signaling Technology | 9803 |
| 磷酸酶抑制剂混合物2 | Sigma-Aldrich | P5726 | |
| 磷酸酶抑制剂混合物3 | Sigma-Aldrich | P0044 | |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| NuPage LDS样品缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | NP0007 | |
| 4-12% Bis-Tris凝胶 | Life Technologies | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| SuperSignal West Femto化学发光底物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 4967 | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 2118 | |
| c-MYC抗体 | Cell Signaling Technology | 18583 | |
| N-MYC抗体 | Cell Signaling Technology | 9405 | |
| p65抗体 | Cell Signaling Technology | 4767 | |
| PRRX1抗体 | OriGene | TA803116 | |
| YAP抗体 | Cell Signaling Technology | 14074 | |
| PHOX2B抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-376997 | |
| DLK1抗体 | Cell Signaling Technology | 2069 | |
| TUB抗体 | Calbiochem | CP06 | |
| RT-PCR | Direct-zol RNA微量制备试剂盒 | Zymo Research | R2062 |
| 高容量cDNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 4368814 | |
| MYCN Taqman基因表达检测 | Thermo Fisher Scientific | Hs00232074 | |
| MYC Taqman基因表达检测 | Thermo Fisher Scientific | HS00153408 | |
| GAPDH Taqman基因表达检测 | Thermo Fisher Scientific | HS999905 | |
| Applied Biosystems 7900HT序列检测系统 | Applied Biosystems | -- | |
| NFκB GFP报告基因 | NFκB GFP慢病毒 | BPS Bioscience | 79926 |
| 聚凝胺 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 嘌呤霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| CRISPR-Cas9敲除 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | L3000008 |
| PMD2.G质粒 | Addgene | 12259 | |
| psPAX2质粒 | Addgene | 12260 | |
| RelA质粒 | Addgene | 83944 | |
| 转分化实验 | pLVX-TetOne载体 | Takara | 631847 |
| NFκB pNifty2-Luc报告质粒 | Invivogen | -- | |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | D9891 | |
| Bright-Glo荧光素酶检测系统 | Promega | E2610 | |
| IF共聚焦显微镜 | CD44抗体 | Cell Signaling Technology | 3579 |
| Alexa Fluor二抗 | Invitrogen | A32744 | |
| DAPI染料 | -- | -- | |
| 共聚焦显微镜(TCS SP8) | Leica | -- | |
| 共培养实验 | Transwell小室(0.4微米孔径) | Corning | -- |
| Iscove改良Dulbecco培养基 | -- | -- | |
| JSH-23 | Selleckchem | -- | |
| 体内实验 | NOD/SCID gamma小鼠 | -- | -- |
| 二甲基亚砜 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 药物处理 | ML120B | Tocris | 4899 |
| JSH-23 | MedChemExpress | 13982 | |
| 测序平台 | Countess细胞计数仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞培养 | 胎牛血清 | -- | -- |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 链霉素/青霉素 | -- | -- | |
| 细胞系鉴定 | GenePrint 24系统 | Promega | -- |
| 细胞处理 | 甲醛缓冲液 | -- | -- |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| Tween-20 | -- | -- | |
| 鬼笔环肽 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者样本处理 | 样本类型(诊断活检与手术切除)、患者治疗方案(诱导化疗方案、是否接受131I-MIBG等)、样本采集时间点(诊断、手术、复发) 阅读提示:Methods: Patient Samples and Ethics; Results: 引言部分 |
| snRNA-seq | 组织解离和核提取条件(Nuclear Extraction Buffer配方、匀浆次数)、文库制备试剂盒版本、测序平台、数据过滤参数(去除双细胞、线粒体比例等)、细胞类型注释方法 阅读提示:Methods: Sample Dissociation and Nuclei Isolation, snRNA-seq Library Preparation and Sequencing, Quality Control and Preprocessing |
| 持久细胞亚型分类 | 通路得分计算方法、通路选择标准(C>0.5, FDR<0.01)、Hotspot参数、meta-modules定义及基因列表 阅读提示:Methods: Pathway-Based Clustering, Identifications of Gene Module and Persister Subtype Assignment; Supplementary Table S3 |
| WGS分析 | DNA提取方法、文库制备试剂盒、测序平台、比对和变异检测软件、CNV和SNV过滤参数 阅读提示:Methods: WGS, Copy Number Detection in WGS Data, SNV Calling in WGS Data |
| 细胞系实验 | 细胞系来源、培养条件、药物处理剂量和时间(IC90、处理天数)、细胞活力检测方法 阅读提示:Methods: Cell Lines, Drug Studies |
| PDX实验 | PDX模型来源(COG-424x, COG-496x)、小鼠品系和年龄、肿瘤接种方式、化疗给药方案(topotecan和cyclophosphamide剂量、时间)、肿瘤收集时间点 阅读提示:Methods: PDX |
| 体内NFκB抑制实验 | 细胞系(BE2-LUC)、TAMs/CAFs获取方法、细胞注射比例和数量、药物处理方案(etoposide和JSH-23剂量、时间)、肿瘤测量方法 阅读提示:Methods: Drug Response of the Xenotransplanted Model |
| NFκB活性检测 | 报告基因类型(GFP或荧光素酶)、细胞处理条件、检测方法 阅读提示:Methods: NFκB GFP Reporter Assay, Transdifferentiation Assays |
| 共培养实验 | 细胞比例(4:4:1 NB:MN:MSC)、培养基、处理时间、JSH-23浓度 阅读提示:Methods: Coculture Experiments |