靶向巨噬细胞中的SPHK1重塑肿瘤微环境并增强结直肠癌肝转移中抗PD-1免疫治疗的疗效

Targeting SPHK1 in macrophages remodels the tumor microenvironment and enhances anti-PD-1 immunotherapy efficacy in colorectal cancer liver metastasis

作者信息Yizhi Zhan, Jinsong Xu, Zhanqiao Zhang, Yating Hu, Yongsheng Li, Junying Qian, Yunyan Ling, Dehua Wu, Haijun Deng, Guoxin Li, Zhiyong Shen, Yuan Fang
PMID40665874
发布时间2025-10
DOI10.1002/cac2.70047

实验完整度

包含体外共培养、多个小鼠肝转移模型、CyTOF、RNA-seq、蛋白质组学及临床样本分析,并进行功能验证(敲除/抑制剂)和机制验证(信号通路)。

主要模型

MC38和CT26小鼠结肠癌肝转移模型 BMDM和THP-1来源的TAM 人类CRC组织微阵列和CRLM/CRC配对样本

重点核对

SPHK1抑制剂PF543剂量(5 mg/kg)和SKI II剂量(50 mg/kg)经腹腔注射 SPHK1−/−小鼠(C57BL/6背景)用于基因敲除实验 抗PD-1抗体(克隆RMP1-14)剂量200 μg BMDMs与MC38细胞体外共培养比例为1:1 S1P处理浓度(10 μmol/L)和NLRP3激活条件(LPS 500 ng/mL 3h,ATP 5 mmol/L 30min)

摘要

背景:结直肠癌肝转移(CRLM)的特征是免疫抑制微环境和对免疫治疗的反应迟钝。值得注意的是,肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)在调节免疫反应中发挥关键作用,并在CRLM中表现出显著的异质性。鞘氨醇激酶1(SPHK1)是维持神经酰胺和1-磷酸鞘氨醇(S1P)水平平衡的关键激酶。然而,TAMs中SPHK1对CRLM肿瘤免疫逃逸的影响仍不清楚。本研究旨在探讨TAM内源性SPHK1在CRLM肿瘤免疫抑制微环境中的作用。方法:通过免疫荧光和生物信息学分析评估TAMs中SPHK1的表达水平。建立了几种动物模型以阐明SPHK1在体内肿瘤免疫重编程中的作用。通过流式细胞术、细胞因子测定和transwell实验研究了SPHK1在TAMs中对细胞间通讯的影响。使用RNA测序、Western blotting和实时定量聚合酶链反应探讨SPHK1激活TAMs中NLR家族pyrin结构域蛋白3(NLRP3)炎性小体的分子机制。结果:我们发现SPHK1主要在TAMs中表达,并确定SPHK1+ TAMs与CRLM及人类患者免疫治疗疗效降低相关。这些SPHK1+ TAMs通过TAMs与CRC细胞之间的相互作用,诱导高表达程序性死亡受体1(PD-1)的CD8+ T细胞耗竭,表现出强免疫抑制活性。机制上,SPHK1产生的S1P发挥自分泌作用,通过核因子-κB(NF-κB)和缺氧诱导因子1亚基α(HIF-1α)信号激活TAMs中的NLRP3炎性小体和白细胞介素1β(IL-1β)释放。旁分泌的IL-1β随后上调CRC细胞中单核细胞趋化因子和ADAM金属肽酶结构域17(ADAM17)脱落酶的表达,导致肝微环境中TAM浸润和CD8+ T细胞功能障碍。此外,将靶向SPHK1的治疗与抗PD-1疗法或放射免疫治疗联合使用,在临床前小鼠模型中很大程度上阻止了肝转移,并显著延长了寿命。结论:我们的研究结果强调了TAMs的SPHK1通过促进CD8+ T细胞功能障碍和免疫抑制微环境来促进CRLM的作用。将SPHK1阻断与抗PD-1治疗联合可能是CRLM患者有希望的治疗方案。关键词:SPHK1,肿瘤相关巨噬细胞,CD8+ T细胞,结直肠癌肝转移,免疫治疗

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TAM内在的SPHK1在结直肠癌肝转移的免疫抑制微环境中发挥什么作用?
核心机制
SPHK1产生的S1P以自分泌方式激活NF-κB和HIF-1α信号,上调NLRP3炎性小体并促进IL-1β释放;IL-1β旁分泌作用于CRC细胞,上调趋化因子和ADAM17,导致TAM浸润和CD8+ T细胞功能障碍。
主要证据
体内SPHK1抑制或敲除减少CRLM并改善免疫微环境;体外实验表明SPHK1通过NLRP3促进IL-1β分泌,且IL-1β刺激CRC细胞分泌ADAM17,降低CD8+ T细胞CD62L表达;临床样本分析显示SPHK1表达与不良预后相关。
研究意义
SPHK1在TAM中通过促进CD8+ T细胞功能障碍和免疫抑制微环境促进CRLM进展,靶向SPHK1阻断与抗PD-1联合可能成为CRLM患者有希望的治疗方案。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定SPHK1在TAMs中的表达及其临床相关性

确定SPHK1在CRLM中的表达模式及其与患者预后的关系。

使用免疫荧光和生物信息学分析评估人类CRC和CRLM样本中SPHK1表达;利用组织微阵列进行IHC并分析生存数据。

2

评估SPHK1抑制对CRLM进展的影响

在体内模型中检验药理学或遗传学抑制SPHK1对肝转移的影响。

在脾-肝转移模型中用SPHK1抑制剂(PF543或SKI II)处理小鼠,并与SPHK1−/−小鼠比较肝转移灶数量和大小;检测S1P水平。

3

分析SPHK1缺失对肝转移微环境免疫细胞组成的影响

确定SPHK1缺失是否改变TAMs和CD8+ T细胞等免疫细胞的比例和功能。

通过CyTOF、流式细胞术和IHC分析WT和SPHK1−/−小鼠肝转移瘤中免疫细胞亚群比例及CD8+ T细胞耗竭标志物。

4

探索SPHK1-S1P轴对TAMs中NLRP3炎性小体的激活机制

阐明SPHK1产生的S1P如何通过受体和下游信号激活NLRP3炎性小体。

用S1P处理BMDM和THP-1来源的TAM,检测NLRP3、IL-1β、Caspase1表达;使用S1PR抑制剂和激动剂鉴定受体;敲低P65和HIF-1α验证信号通路。

5

验证IL-1β对CRC细胞和CD8+ T细胞功能的影响

确定SPHK1+ TAM分泌的IL-1β是否通过作用于CRC细胞影响TAM募集和CD8+ T细胞功能。

用重组IL-1β处理CRC细胞,检测趋化因子表达和分泌蛋白组;在共培养体系中验证对CD8+ T细胞CD62L和PD-1表达的影响;动物实验用anakinra阻断IL-1R。

6

评估SPHK1靶向治疗联合抗PD-1或放疗的疗效

检测SPHK1抑制剂与免疫治疗联合的协同抗肿瘤作用。

在MC38和CT26肝转移模型中用抗PD-1抗体联合SPHK1抑制剂治疗,评估肿瘤负荷、生存期和免疫指标;在皮下+肝转移模型中联合放疗。

7

分析SPHK1表达与免疫治疗反应的相关性

验证SPHK1在预测免疫治疗反应中的价值。

对人类肿瘤样本(非响应者 vs 响应者)和公共数据集进行IHC和生物信息学分析,评估SPHK1表达与生存及治疗反应的关系。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM高糖培养基Gibco--
RPMI-1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯InvivoGen--
PF543MedChemExpress--
SKI IIMedChemExpress--
表达小鼠Sphk1的腺相关病毒载体Vigene Biosciences--
抗CSF1R抗体克隆AFS98BioXcell--
抗CD8单克隆抗体克隆YTS 169.4BioXcell--
抗PD-1抗体(克隆RMP1-14)BioXcell--
阿那白滞素MedChemExpress--
SPHK1抗体Proteintech10670-1-AP
磷酸化SPHK1(Ser225)抗体Proteintech19561-1-AP
CD68抗体Abcamab213363
IL-1β抗体Abcamab9722
NLRP3抗体Abcamab283819
F4/80抗体Cell Signaling Technology70076
CD19抗体Proteintech66298-1-lg
CD3抗体Proteintech17617-1-AP
CD31抗体Proteintech66065-1-lg
α平滑肌肌动蛋白抗体Proteintech67735-1-lg
CD11c抗体Proteintech17342-1-AP
EPCAM抗体Proteintech21050-1-AP
SPHK1抗体AbmartPK69865
CD8抗体Abcamab245118
CD8抗体Abcamab209775
F4/80抗体Cell Signaling Technology70076
CCL2抗体Proteintech26161-1-AP
ADAM17抗体HuabioET1703-06
TRIzol试剂TaKaRa--
NanoDrop 8000Thermo Fisher Scientific--
PrimeScript RT-PCR试剂盒TaKaRa--
SYBR Premix Ex TaqTaKaRa--
LightCycler 96检测系统Roche--
胶原酶IVSigma-Aldrich--
脱氧核糖核酸酶I型Sigma-Aldrich--
ACK裂解液Leagene--
IC固定缓冲液Biolegend--
胞内染色透化洗涤缓冲液Biolegend--
含布雷菲德菌素A的细胞激活混合物Biolegend--
膜联蛋白V结合缓冲液KeyGen BioTech--
GentleMACS系统Miltenyi Biotec--
Helios CyTOF系统Fluidigm--
抗CD8磁珠Miltenyi Biotec--
Histopaque®-1077Sigma-Aldrich--
SepMate-50Stemcell Technologies--
Countess 3自动细胞计数器Thermo Fisher Scientific--
抗CD3抗体----
抗CD28抗体----
白细胞介素-2Peprotech--
1-磷酸鞘氨醇Avanti Polar Lipids--
脂多糖Sigma-Aldrich--
三磷酸腺苷InvivoGen--
W146MedChemExpress--
JET013MedChemExpress--
TY52156MedChemExpress--
CYM50358MedChemExpress--
CYM5520MedChemExpress--
嘌呤霉素Sigma-Aldrich--
Lipofectamine 3000Invitrogen--
Bio-Plex Pro人细胞因子27-Plex免疫测定试剂盒BioRad--
小鼠炎症抗体芯片C1Ray Biotech--
RIPA裂解液Amresco--
Pierce BCA蛋白测定试剂盒Thermo Fisher Scientific--
聚偏二氟乙烯膜Millipore--
增强化学发光试剂盒(FDbio-pico ECL)Fude Bio--
人或小鼠IL-1β ELISA试剂盒Dakewe--
小鼠ADAM17 ELISA试剂盒Cusabio--
重组IL-1βSinoBiological--
Transwell小室(12µm孔径)Corning--
基质胶BD Biosciences--
Bioanalyzer 2100Agilent--
Illumina NovaSeq 6000平台Illumina--
Zeiss LSM 880共聚焦激光扫描显微镜Zeiss--
OLYMPUS DP22显微镜Olympus--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞系培养
细胞系来源(MC38、CT26、L929、HCT116、THP-1)及培养条件,包括培养基(DMEM或RPMI-1640)、FBS浓度、抗生素浓度、CO2浓度
阅读提示:材料与方法 2.1 Cell lines
动物模型建立
小鼠品系(C57BL/6或BALB/c)、年龄(6-9周)、细胞注射数量和途径、肿瘤生长时间(3-4周)
阅读提示:材料与方法 2.4 Tumor models
SPHK1抑制处理
PF543剂量(5 mg/kg)和SKI II剂量(50 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药频率(每三天一次)、起始时间(第4天)
阅读提示:材料与方法 2.5 Animal treatments
联合治疗
抗PD-1抗体剂量(200 μg)、给药时间(第7、10、13、16天)、放疗剂量(8 Gy ×2)和时间(第6、7天)
阅读提示:材料与方法 2.5 Animal treatments
TAMs培养和处理
BMDM诱导条件(20% L929条件培养基)、S1P浓度(10 μmol/L)、LPS浓度(500 ng/mL)、ATP浓度(5 mmol/L)、处理时间
阅读提示:材料与方法 2.3, 2.14