鉴定缺氧外泌体中的关键lncRNA
识别缺氧条件下结直肠癌细胞外泌体中差异表达的lncRNA,并筛选与预后相关的关键分子
对HCT116和LoVo细胞缺氧/常氧外泌体进行RNA-seq,筛选11个上调lncRNA;qRT-PCR验证6个;结合10种机器学习算法构建预后和复发预测模型,最终聚焦HIF1A-AS2。
Modulation of tumor-derived exosomes and reprogramming of cancer-associated fibroblasts for colorectal cancer therapy
包含体外细胞实验(外泌体处理、Transwell、胶原收缩)、体内异种移植模型、多组学分析(RNA-seq、scRNA-seq、空间转录组)及功能验证(增殖、迁移、血管生成),并验证机制(双荧光素酶、Western blot)。
HCT116和LoVo结直肠癌细胞系 原代正常组织相关成纤维细胞(NAFs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) BALB/c裸鼠皮下异种移植瘤模型
HCT116和LoVo细胞在缺氧(1% O2)和常氧(21% O2)条件下培养,外泌体分离和表征(超速离心、TEM、NTA、Western blot验证CD63/CD81) NAFs与CRC条件培养基或不同外泌体共培养的条件(如100 μg/mL外泌体处理) HCT116和LoVo细胞(5×10^4)Transwell迁移和侵袭实验的条件(Matrigel 100 μg/mL) 裸鼠皮下移植瘤模型(HCT116细胞2×10^6)及肿瘤内注射外泌体(100 μg/剂量,每周三次) HIF1A-AS2敲低(siRNA)和过表达(质粒)的效率验证(qRT-PCR)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
识别缺氧条件下结直肠癌细胞外泌体中差异表达的lncRNA,并筛选与预后相关的关键分子
对HCT116和LoVo细胞缺氧/常氧外泌体进行RNA-seq,筛选11个上调lncRNA;qRT-PCR验证6个;结合10种机器学习算法构建预后和复发预测模型,最终聚焦HIF1A-AS2。
评估HIF1A-AS2在泛癌及结直肠癌中的表达、预后及肿瘤微环境特征
利用TCGA和GEO数据、泛癌scRNA-seq(GSE210347)及内部scRNA-seq和空间转录组数据,分析HIF1A-AS2的表达模式、预后意义、免疫浸润、通路活性及细胞间通讯。
体外验证H-Exo对成纤维细胞表型转化的影响
分离并鉴定H-Exo和N-Exo,用H-Exo处理NAFs,通过胶原收缩、免疫荧光、qRT-PCR和Transwell实验检测CAF标志物及迁移侵袭能力。
验证外泌体HIF1A-AS2是介导NAF向CAF转化的关键分子
敲低或过表达HIF1A-AS2后,提取外泌体处理NAFs,检测CAF标志物表达、迁移侵袭能力。
阐明外泌体HIF1A-AS2通过调控miR-33和HIF-1α促进CAF转化的分子机制
通过数据库预测miR-33,双荧光素酶报告实验验证结合,qRT-PCR和Western blot检测miR-33、HIF-1α表达,并通过rescue实验证实调控关系。
验证靶向HIF1A-AS2/miR-33轴能否抑制肿瘤生长和血管生成
建立裸鼠皮下移植瘤模型,共接种HCT116和不同处理的NAFs,观察肿瘤生长、CAF标志物、增殖标志物和血管生成相关指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| F-12K培养基 | -- | -- | |
| EGM-2 MV内皮细胞培养基 | Lonza | -- | |
| 外泌体分离 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| 免疫荧光 | α-SMA抗体 | Proteintech | 14395-1-AP |
| FAP抗体 | Cell Signaling Technology | 66562 | |
| Vimentin抗体 | Proteintech | 10366-1-AP | |
| DAPI | -- | -- | |
| qRT-PCR | TB Green® Premix Ex Taq™ III | Invitrogen | -- |
| ABI PRISM 7500系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Transwell实验 | Transwell小室(8 μm孔径) | Corning | -- |
| 基质胶 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000 | -- | -- |
| Lipofectamine RNAiMAX | -- | -- | |
| ELISA | VEGF ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M1292 |
| bFGF ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0170 | |
| PDGF ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0632 | |
| HGF ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M3085 | |
| 直接外泌体效应评估 | VEGF ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H0111 |
| ANGPT2 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H0008 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与外泌体分离 | HCT116和LoVo细胞培养条件;缺氧条件(1% O2);外泌体分离步骤(超速离心转速和时间) 阅读提示:Materials and methods: 细胞培养;外泌体分离和鉴定 |
| NAFs处理 | NAFs来源;外泌体处理浓度(100 μg/mL)和处理时间;CM诱导条件 阅读提示:Materials and methods: 细胞共培养实验;外泌体处理 |
| HIF1A-AS2调控实验 | siRNA序列或过表达质粒构建;转染试剂(Lipofectamine 3000)浓度和时间;外泌体来源 阅读提示:Materials and methods: 外泌体HIF1A-AS2敲低和过表达构建及细胞转染 |
| 机制验证 | miR-33 mimic/inhibitor浓度(100 nM);双荧光素酶实验载体(psiCHECK-2-miR-33);缺氧处理条件 阅读提示:Materials and methods: miRNA mimic和inhibitor转染;荧光素酶报告实验 |
| 体内动物实验 | 裸鼠品系、周龄、性别;细胞接种数量和部位;外泌体注射剂量和频率(100 μg/剂量,每周3次);分组及肿瘤测量时间 阅读提示:Materials and methods: 动物实验 |