SMOX缺陷小鼠视神经的蛋白质组学分析鉴定了视神经炎中神经炎症和轴突损伤的调节因子

Proteomic Profiling of Optic Nerves From SMOX-Deficient Mice Identifies Regulators of Neuroinflammation and Axonal Damage in Optic Neuritis

作者信息Harry Henry Ojo, Fang Liu, Abdulaziz H Alanazi, Kamyar A Zahedi, Manoocher Soleimani, Duo Zhang, Payaningal R Somanath, S Priya Narayanan
PMID42390174
发布时间2026-07-01
DOI10.1167/iovs.67.8.4

实验完整度

包含EAE动物模型、LC-MS/MS蛋白质组学分析和免疫荧光验证,但机制验证有限,且未进行体外或其他模型验证。

主要模型

EAE小鼠模型(WT和Smox KO) 视神经组织样本

重点核对

EAE诱导:MOG35-55乳化剂200 µg/只,皮下注射,含CFA;PTX 100 ng腹腔注射于第0和1天 临床评分:每日评估,0-5分制,盲法,n=6-9只/组,3次独立诱导 蛋白质组学样本:每只小鼠两条视神经合并为一个生物重复,n=4/组,在D17天收集 质谱分析:LC-MS/MS(Orbitrap Fusion Tribrid),数据依赖采集,FDR<1% 差异蛋白筛选:P<0.05,|log2FC|>1,且排除在<70%样本中未检出的蛋白

摘要

目的:由于视神经炎(ON)导致的视觉功能障碍是多发性硬化(MS)的早期临床表现。ON的特征是视神经炎症、脱髓鞘、轴突损伤和视网膜神经节细胞(RGC)丢失。先前,我们已证明精胺氧化酶(SMOX),一种多胺分解代谢酶,在ON实验模型中调节视觉功能。本研究旨在通过蛋白质组学分析,识别SMOX调节的参与ON相关视觉功能障碍的分子通路。方法:在野生型(WT)和SMOX缺陷(Smox KO)小鼠中诱导实验性自身免疫性脑脊髓炎(EAE)。每天记录小鼠的临床评分。收集WT和Smox KO EAE小鼠及其对照的视神经,并通过液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)进行分析。进行通路富集和比较分析,以识别由SMOX调节的关键过程和通路。进行免疫荧光检测以检测关键蛋白表达的变化。结果:Smox KO EAE小鼠表现出延迟和降低的临床评分。通路富集分析确定了EAE中受影响的几个关键过程,包括肌动蛋白细胞骨架的调节、紧密连接完整性和血小板活化/聚集。WT EAE和Smox KO EAE蛋白质组的比较分析,结合错误发现率(FDR)校正的通路富集分析,表明SMOX缺陷视神经中神经炎症通路的减弱。此外,SMOX缺陷恢复了神经完整性所必需的关键细胞骨架和细胞粘附蛋白。免疫荧光研究证实了活化C激酶1受体(RACK1)、肌动蛋白α4(ACTN4)、高迁移率族蛋白B1(HMGB1)和S100钙结合蛋白B(S100B)的失调,这些蛋白参与免疫信号传导、细胞骨架稳定和炎症的关键蛋白。结论:这些发现表明SMOX对ON中的炎症和细胞骨架稳定的影响,以及其作为MS中保护视力的治疗靶点的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SMOX缺乏如何影响EAE诱导的视神经炎中的视神经病理和视觉功能障碍,其潜在的分子机制是什么?
核心机制
SMOX缺乏减弱神经炎症通路,恢复关键细胞骨架和细胞粘附蛋白(如ACTN4、RACK1)的表达,并调节HMGB1和S100B等炎症介质,从而减轻轴突损伤和RGC丢失。
主要证据
Smox KO EAE小鼠表现出延迟和降低的临床评分;LC-MS/MS蛋白质组学显示SMOX缺乏减弱神经炎症通路,并恢复细胞骨架蛋白;免疫荧光证实ACTN4、RACK1、HMGB1在WT EAE中上调,在Smox KO EAE中下调,而S100B在WT EAE中下调但在Smox KO EAE中得以保持。
研究意义
本研究确定了SMOX调节的与视神经变性和视觉功能障碍相关的潜在通路,为MS中ON的治疗策略提供了新途径,并支持SMOX抑制作为双效治疗策略的进一步研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

诱导EAE模型

建立MS的体内模型,以研究视神经炎。

对WT和Smox KO小鼠皮下注射MOG35-55与CFA的乳化液,并在第0天和第1天腹腔注射PTX。对照组仅注射CFA乳化液。

2

评估疾病严重程度

监测EAE诱导后随时间出现的运动功能障碍。

每天对小鼠进行临床评分,采用0-5分六级评分系统。在第17天处死小鼠,收集视神经。

3

蛋白质组学分析

鉴定WT和Smox KO小鼠在EAE条件下视神经蛋白表达的差异。

从视神经提取蛋白,过滤沉淀,还原烷基化,胰酶酶解,然后通过LC-MS/MS分析。利用Proteome Discoverer处理原始数据,进行数据库搜索。

4

免疫荧光染色

验证RACK1, ACTN4, HMGB1, S100B在视神经中的表达变化。

对视神经冷冻切片进行免疫荧光染色,使用特异性一抗和二抗,通过共聚焦显微镜成像。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RIPA缓冲液----
C18微量离心板Harvard Apparatus--
Orbitrap Fusion Tribrid质谱仪Thermo Fisher Scientific--
UltiMate 3000纳升超高效液相色谱系统Thermo Fisher Scientific--
Acclaim PepMap 100 RSLC C18色谱柱Thermo Fisher Scientific--
Proteome Discoverer 2.5Thermo Fisher Scientific--
RACK1抗体Thermo Fisher ScientificPA5-78161
S100B抗体Thermo Fisher ScientificPA1-655
ACTN4抗体Proteintech19096-1-AP
HMGB1抗体Cell Signaling Technology3935
驴抗兔二抗Thermo Fisher ScientificA21206
EAE诱导试剂盒Hooke LaboratoriesEK-2110

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
EAE诱导
MOG35-55剂量200 µg/只,皮下注射;PTX 100 ng腹腔注射于第0和1天;小鼠品系及周龄(雌性C57BL/6J,10-13周),组别及对照
阅读提示:Methods: Animals, Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis, and Clinical Scoring
临床评分
评分系统(0-5分制),每日盲法评估,评分标准和伦理终点(评分≥4或体重下降>20%需安乐死)
阅读提示:Methods: Animals, Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis, and Clinical Scoring; Results及Figure 1图注
蛋白质组学分析
蛋白提取方法(RIPA缓冲液),样本量(n=4/组,每条视神经独立,每鼠两条视神经pooled),LC-MS/MS仪器参数(120分钟梯度,FDR<1%),蛋白保留标准(ΣCoverage ≥10%,缺失值imputation)
阅读提示:Methods: Protein Extraction, LC-MS/MS Analysis, Database Search, and Proteomic Data Processing; Supplementary Methods
免疫荧光分析
组织固定和切片(4% PFA固定,30%蔗糖,10 µm切片),抗体稀释及来源,成像设备,量化方法(mean ± SEM,n=3/组)
阅读提示:Methods: Immunofluorescence Staining; Table和Figure 8图注