发现SNX17与免疫治疗反应的相关性
筛选与免疫治疗耐药相关的基因
分析公共转录组数据集(GSE189469、GSE215011、GSE188481)和CRC患者队列,评估SNX17表达与抗PD-1反应及生存期的关系。
Uridine depletion impairs CD8⁺ T cell antitumor activity through N-glycosylation
包含体外细胞实验、小鼠皮下及原位肿瘤模型、CD8+ T细胞耗竭实验、临床样本分析、单细胞RNA测序、代谢组学及机制验证(N-糖基化位点突变、ChIP)等多层级验证。
CMT93小鼠结直肠癌细胞皮下移植瘤模型 MC38小鼠结直肠癌细胞皮下移植瘤模型 B16F10小鼠黑色素瘤细胞皮下移植瘤模型 Hepa1-6小鼠肝癌细胞原位及皮下移植瘤模型
SNX17表达水平与患者抗PD-1治疗反应的相关性(临床队列n=44) CD8+ T细胞耗竭后肿瘤生长恢复情况(抗体介导的体内耗竭) 尿苷补充剂量与给药途径(腹腔注射250 mg/kg每日两次或饮食添加1%尿苷) CD45 N-糖基化位点N38Q突变对尿苷诱导IFN-γ的影响 SNX17-UPP1-RUNX2通路基因敲除/过表达对肿瘤生长和尿苷水平的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选与免疫治疗耐药相关的基因
分析公共转录组数据集(GSE189469、GSE215011、GSE188481)和CRC患者队列,评估SNX17表达与抗PD-1反应及生存期的关系。
确定SNX17在肿瘤生长中的功能
在CMT93、MC38、Hepa1-6、B16F10细胞中敲除或过表达SNX17,并接种至免疫正常小鼠(C57BL/6)和免疫缺陷小鼠(裸鼠),监测肿瘤生长。
确定SNX17影响哪种免疫细胞
通过单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析肿瘤浸润CD45+细胞组成,结合流式细胞术和T细胞耗竭实验,证实CD8+ T细胞介导SNX17的抗肿瘤免疫效应。
探究SNX17影响CD8+ T细胞功能的分子机制
通过LC-MS/MS代谢组学比较对照和SNX17敲除肿瘤细胞的上清液,鉴定尿苷为差异代谢物,并在体外用外源性尿苷处理CD8+ T细胞,检测IFN-γ产生。
评估尿苷在体内的抗肿瘤效果及其机制
在小鼠肿瘤模型中给予尿苷(腹腔注射或饮食添加),评估肿瘤生长,并通过CD8+ T细胞耗竭实验证明其依赖性。
揭示尿苷增强CD8+ T细胞功能的分子机制
利用LC-MS/MS和ELISA检测尿苷代谢产物UDP-GlcNAc,通过糖基化抑制剂(TM、B-α-G)和CD45突变体(N38Q)证明CD45 N-糖基化是尿苷作用的关键。
阐明SNX17调节尿苷代谢的分子通路
通过RNA-seq、qPCR、Western blot、ChIP和免疫共沉淀等,证明SNX17通过稳定RUNX2上调UPP1表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Pricella | PM150210 |
| RPMI-1640培养基 | Pricella | PM150110 | |
| 胎牛血清 | Excell | FSP500 | |
| 青霉素-链霉素 | NCM Biotech | C100C5 | |
| 药物处理 | 尿苷 | TargetMol | T2221 |
| 衣霉素 | MedChemExpress | HY-A0098 | |
| 苄基无环尿苷 | MedChemExpress | HY-106406 | |
| 毒胡萝卜素 | MedChemExpress | HY-13433 | |
| NBMPR(S-(4-硝基苄基)-6-硫代肌苷) | Selleck | S0838 | |
| UCK2抑制剂-1 | MedChemExpress | HY-148394 | |
| 布雷菲德菌素A | MedChemExpress | HY-16592 | |
| 巴弗洛霉素A1 | Selleck | S1413 | |
| 饮食补充 | 添加1%尿苷的AIN-76A啮齿动物饲料 | ReadyDietech | 24120703 |
| 体内抗体处理 | 体内抗小鼠PD-1抗体 | Bio X cell | BE0146 |
| 体内抗小鼠PD-L1抗体 | Bio X cell | BE0101 | |
| 体内抗小鼠CD4抗体 | Bio X cell | BE0119 | |
| 体内抗小鼠CD8α抗体 | Bio X cell | BE0061 | |
| 体内大鼠IgG2b同型对照 | Bio X cell | BE0090 | |
| T细胞分离 | EasySep小鼠CD8+ T细胞分选试剂盒 | Stemcell | 19853A |
| EasySep小鼠CD4+ T细胞分选试剂盒 | Stemcell | 19852A | |
| EasySep小鼠TIL(CD45)阳性分选试剂盒 | Stemcell | 100-0350 | |
| 流式细胞术 | PE/Cyanine7抗小鼠CD45抗体 | Biolegend | 103114 |
| APC抗小鼠CD8a抗体 | Biolegend | 100712 | |
| PE/Cyanine7抗小鼠IFN-γ抗体 | Biolegend | 505826 | |
| Brilliant Violet 605抗小鼠CD279(PD-1)抗体 | Biolegend | 135219 | |
| Zombie Aqua可固定活性检测试剂盒 | Biolegend | 423101 | |
| 酶联免疫吸附测定 | 小鼠干扰素γ ELISA试剂盒 | MBBiology | MK5716A |
| 小鼠UDP-GlcNAc ELISA试剂盒 | MBBiology | MK0034MA | |
| 蛋白质印迹 | 兔单克隆重组抗Lck抗体 | Abcam | ab227975 |
| 兔单克隆ZAP70抗体 | Abcam | ab32429 | |
| 小鼠单克隆CD45RO抗体 | Abcam | ab23 | |
| 马鞍树凝集素II | Vector Laboratories | B-1265 | |
| 免疫沉淀 | 蛋白A/G琼脂糖珠 | -- | -- |
| 质谱分析 | Sciex Triple Quad 6500+质谱仪 | Sciex | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系与培养条件 | CMT93、MC38、Hepa1-6、B16F10细胞的来源和培养条件(DMEM或RMPI-1640,10% FBS,1%青霉素-链霉素,37°C,5% CO2) 阅读提示:STAR Methods中的Cell Lines部分 |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6、BALB/c裸鼠、SLC29A1-/-、CD45-/-),年龄(6-8周),细胞接种数量和途径(皮下2×10^6或1×10^6;原位3×10^5) 阅读提示:STAR Methods中的Experimental model and study participant details |
| SNX17敲除/过表达 | sgRNA序列(SNX17: TGCCTATGACGACGATGTCA;UPP1: TGAAGTGCCAATGCGGATGA;RUNX2: GCACGACAACCGCACCATGG),嘌呤霉素筛选浓度(3 μg/mL) 阅读提示:STAR Methods中的Gene Knockout via Lentiviral Transduction |
| 尿苷处理 | 给药剂量和途径(腹腔注射250 mg/kg每日两次,或饮食添加1%尿苷),处理时间(肿瘤生长期间) 阅读提示:Figure 4 legend及相关方法部分 |
| CD8+ T细胞耗竭 | 抗CD8抗体(BE0061)或抗CD4抗体(BE0119)剂量200 μg/只,给药时间(肿瘤接种前2天开始,每4天重复) 阅读提示:STAR Methods中的Depletion of CD8+ T/CD4+ T Cells in vivo |
| 抗PD-1/PD-L1治疗 | 抗PD-1(BE0146)或抗PD-L1(BE0101)抗体给药方案(每3天腹腔注射,PBS对照) 阅读提示:STAR Methods中的In Vivo Treatment with Anti-PD-1 or Anti-PD-L1 Antibodies |