癌症相关成纤维细胞来源的细胞外囊泡负载GLUT1抑制剂通过降解基质硬度和重塑肿瘤微环境协同抗PD-L1抑制肿瘤生长

Cancer-associated fibroblast-derived extracellular vesicles loaded with GLUT1 inhibitor synergize anti-PD-L1 to suppress tumor growth via degrading matrix stiffness and remodeling tumor microenvironment

作者信息Yali Wu, Wenjuan Chen, Jingjing Deng, Xingyu Zhou, Jiangbin Chen, Zimo Yang, Xinghui Cao, Jiatong Liu, Qi Tan, E Zhou, Minglei Li, Mengfei Guo, Yang Jin
PMID40609836
发布时间2025-09-10
DOI10.1016/j.jconrel.2025.113998

实验完整度

包含体外细胞实验(CAFs、LLC、NIH/3T3)、体内小鼠模型(皮下肿瘤)、流式细胞术、免疫荧光、单细胞RNA-seq及公共数据库分析,并进行了功能验证和机制验证,证据层级丰富。

主要模型

小鼠皮下肿瘤模型(LLC+CAF) TGF-β诱导的CAF模型(NIH/3T3) 人肺腺癌组织样本 TCGA及scRNA-seq数据集(LUAD)

重点核对

GLUT1抑制剂BAY-876的剂量(0.01-0.1 μM)和IC50值(CAFs 0.01022 μM,LLC 0.05033 μM) cEV-B6的给药剂量(低剂量20 μg/小鼠,高剂量40 μg/小鼠)和给药频率(每两天一次) 皮下肿瘤模型中LLC和CAF的接种量(2×10^5 LLC和1×10^5 CAF) 体外TGF-β诱导CAF的条件(10 ng/mL,24小时) 联合治疗中抗PD-L1的剂量(100 μg/小鼠,每两天一次)

摘要

癌症免疫疗法已经改变了癌症治疗,展示了在多种实体瘤和血液恶性肿瘤中产生持久反应的潜力,从而在临床上彻底改变了癌症治疗。然而,复杂的肿瘤微环境(TME),以刚性的细胞外基质(ECM)和强大的免疫抑制环境为特征,对癌症免疫疗法的有效性构成了重大障碍。因此,癌症相关成纤维细胞(CAFs),作为介导ECM重塑和参与免疫抑制的最丰富的基质细胞,代表了联合免疫治疗的有前景的治疗靶点。在本研究中,通过使用和分析公共数据集中的单细胞RNA测序(scRNA-seq),我们确定了肿瘤部位内活化CAF亚群中葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)的表达升高,与正常组织相比。此外,最近的文献也表明,具有高代谢水平的CAFs已被确定对免疫疗法表现出更好的反应。此外,CAFs分泌的细胞外囊泡(EVs)仍未被探索,它们在药物转运系统和靶向肿瘤细胞效率方面的作用仍未被研究。在此,我们确定了葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)的表达升高作为与不良预后相关的癌症的预后指标,并研究了肺肿瘤细胞系和CAFs对BAY-876药理学GLUT1抑制的敏感性。基于通过GLUT1抑制靶向内在TME相关代谢的可能性,我们首次采用CAFs衍生的细胞外囊泡(cEVs)作为载体,将BAY-876靶向递送至GLUT1高表达的CAFs和肿瘤细胞。cEV-BAY-876(cEVB6)治疗显著导致富含葡萄糖、低乳酸的TME,逆转活化CAFs表型,实现基质重编程,降低ECM硬度,并增强肿瘤核心中CD3+ CD8+ T细胞的浸润,从而实现了优异的抗肿瘤效率。此外,cEV-B6治疗与抗程序性死亡配体1(antiPD-L1)协同作用,使耗竭的淋巴细胞恢复活力,并对小鼠肺肿瘤发挥强大的抗癌作用。我们的研究首次证明,通过靶向葡萄糖代谢的肿瘤基质特异性治疗,为重塑细胞外基质以将CAFs逆转为正常类型并增强细胞毒性T淋巴细胞(CTLs)浸润从而改善抗癌免疫疗法提供了有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
通过靶向肿瘤微环境中CAFs的GLUT1介导的葡萄糖代谢,能否实现基质重塑、增强免疫细胞浸润并协同免疫检查点阻断疗法,从而改善癌症免疫治疗疗效?
核心机制
GLUT1抑制导致CAFs表型逆转,减少乳酸产生和ECM沉积,降低基质硬度,同时改善免疫抑制微环境,促进CD8+ T细胞浸润和活化,从而增强抗PD-L1疗法的抗肿瘤效果。
主要证据
体外实验表明BAY-876抑制CAFs和LLC的GLUT1表达、降低乳酸分泌并诱导凋亡;体内实验显示cEV-B6减少肿瘤生长、降低αSMA和FAP表达、增加CD8+ T细胞浸润,与抗PD-L1联合显著抑制肿瘤。
研究意义
该研究首次证明基于CAF来源的细胞外囊泡递送GLUT1抑制剂可重塑基质硬度并逆转免疫抑制微环境,为代谢干预与免疫治疗联合策略提供了新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

分析GLUT1在肺癌中的表达及预后价值

评估GLUT1在肺癌组织中的表达及其与患者预后的关联,并探究其在肿瘤微环境细胞亚群中的分布。

利用GEPIA数据库分析SLC2A1表达及生存曲线;对GSE131907单细胞RNA-seq数据进行无监督聚类,鉴定成纤维细胞亚群并比较肿瘤与正常组织中的基因表达。

2

体外验证GLUT1抑制对CAFs和肿瘤细胞的影响

验证GLUT1抑制剂BAY-876能否抑制CAFs和肿瘤细胞的代谢、降低细胞活性并逆转CAF活化表型。

TGF-β诱导NIH/3T3成纤维细胞为CAFs;用不同浓度BAY-876处理CAFs和LLC细胞,检测细胞活力、凋亡、GLUT1表达、乳酸分泌和葡萄糖消耗。

3

合成并表征CAF来源的细胞外囊泡及BAY-876负载

制备CAF来源的细胞外囊泡(cEVs)并负载GLUT1抑制剂BAY-876,表征其物理化学性质及细胞摄取能力。

通过血清饥饿和紫外照射诱导CAFs产生cEVs,超速离心分离cEVs和cEV-B6,用NTA、Zeta电位、透射电镜和Western blot表征,并用DiL标记检测细胞摄取。

4

评估cEV-B6的体外抗肿瘤活性

检测cEV-B6对CAFs和肿瘤细胞的杀伤作用、代谢影响以及功能机制。

用不同浓度cEV-B6处理CAFs和LLC,检测细胞活力、凋亡、葡萄糖消耗和乳酸产生,并进行转录组分析。

5

皮下肿瘤模型验证cEV-B6的体内疗效

评估cEV-B6在体内对肿瘤生长的抑制效果及其对肿瘤微环境的影响。

建立LLC和CAF共接种的皮下肿瘤模型,给予PBS、BAY-876、cEVs、低剂量和高剂量cEV-B6治疗,检测肿瘤体积、体重、GLUT1表达及CAF标志物。

6

联合抗PD-L1治疗评估协同抗肿瘤效果

探究cEV-B6与抗PD-L1联合治疗是否能增强抗肿瘤免疫并改善免疫抑制微环境。

在皮下肿瘤模型中给予cEV-B6和抗PD-L1联合治疗,监测肿瘤生长、体重和生理指标,分析免疫细胞浸润。

7

免疫微环境分析揭示cEV-B6的免疫调节作用

研究cEV-B6及联合治疗对肿瘤组织中免疫细胞亚群、功能状态和空间分布的影响。

流式细胞术分析DC、巨噬细胞、T细胞、NK细胞等亚群及功能分子;免疫荧光染色评估CD8+ T细胞浸润和αSMA、胶原I表达。

8

体内分布和安全性评估

验证cEVs和cEV-B6在体内的肿瘤靶向性,并评估其系统性毒性。

用DiR标记cEVs和cEV-B6,活体成像观察其在肿瘤和主要器官的分布;检测主要脏器H&E染色和血清生化指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco BRL/Life Technologies--
RPMI 1640培养基Gibco BRL/Life Technologies--
胎牛血清Newzerum--
转化生长因子-βPeprotech--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子Peprotech--
白细胞介素-2Peprotech--
白细胞介素-4Peprotech--
BAY-876----
CCK-8试剂BiosharpBS350B
钙黄绿素-AM/碘化丙啶BeyotimeC2015S
膜联蛋白V-FITC/碘化丙啶Yeason40302ES60
抗αSMA抗体Proteintech14395-1-AP
抗FAP抗体AffinityAF0739
抗GLUT1抗体Proteintech66290-1-Ig
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗CD63抗体AffinityAF5117
抗TSG101抗体Proteintech28283-1-AP
抗EpCAM抗体Proteintech21050-1-AP
抗β-微管蛋白抗体Proteintech10094-1-AP
RNAiso PlusTakara9109
cDNA合成试剂盒VazymeR23301
葡萄糖检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA154-1-1
乳酸检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA019-2-1
NIH/3T3细胞系Procell life Science & TechnologyCL-0171
LLC细胞系American Type Culture CollectionCRL-1642
牛血清白蛋白ServicebioG5001-100G
抗PD-L1抗体MCEHY-P99145
DiR荧光染料AAT Bioquest100068-60-8
CD45抗体Biolegend103115
CD11b抗体Biolegend101237
CD80抗体Biolegend104708
CD86抗体Biolegend105012
F4/80抗体Biolegend123110
CD206抗体Biolegend141720
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯SolarbioP6741-1mg
离子霉素Aladdin1139530-1mg
CD3e抗体Biolegend100326
CD4抗体Biolegend100406
CD8抗体Biolegend100751
NK1.1抗体Biolegend156525
FOXP3抗体Biolegend126404
IFN-γ抗体Biolegend505839
颗粒酶B抗体Biolegend372215
IV型胶原酶SolarbioC810-100mg
透明质酸酶SolarbioH8030-100mg

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和CAF诱导
NIH/3T3细胞培养条件、TGF-β浓度和刺激时间、CAF和LLC细胞系来源(需核对Procell和ATCC货号)
阅读提示:Materials and methods - Cell culture; Immunofluorescence staining
体外GLUT1抑制实验
BAY-876浓度范围(0.01-0.1 μM)、处理时间(24 h)、细胞密度(CAFs/NIH-3T3 5000细胞/孔,LLC 8000细胞/孔)
阅读提示:Materials and methods - Cell viability assay; Results - Inhibition of GLUT1 results in deactivated metastasis and normalization of CAFs phenotype
cEV和cEV-B6的制备
血清饥饿条件、BAY-876浓度(100 nM)、紫外照射剂量和时间(300 J/m²,30 min)、超速离心参数(800 rpm 10 min, 2000×g 30 min, 16,000×g 60 min)
阅读提示:Materials and methods - Preparation of cEVs and cEV-B6
cEV-B6的体内给药
皮下肿瘤模型建立(LLC 2×10^5,CAF 1×10^5)、给药剂量(cEVs 20 μg/小鼠,cEV-B6低剂量20 μg/小鼠,高剂量40 μg/小鼠,BAY-876 0.03 mg/小鼠)、给药频率(每两天一次,共5次)
阅读提示:Materials and methods - The therapeutic effectiveness of cEV-B6 in vivo models; Figure 4F
联合免疫治疗
抗PD-L1剂量(100 μg/小鼠)、给药开始时间(第三次干预时)、给药频率(每两天一次,共3次)
阅读提示:Materials and methods - The therapeutic effectiveness of cEV-B6 in vivo models; Figure 5A
肿瘤组织免疫细胞分析
组织消化方法(胶原酶IV和透明质酸酶浓度)、染色抗体克隆号及浓度、刺激条件(PMA和ionomycin浓度)
阅读提示:Materials and methods - Flow cytometry landscape of immune cells in tumor tissue after different treatment