肠道菌群代谢物吲哚-3-乙酸通过黏液硫化维持肠道上皮稳态

Gut microbiota metabolite indole-3-acetic acid maintains intestinal epithelial homeostasis through mucin sulfation

作者信息Mengfan Li, Yiyun Ding, Jingge Wei, Yue Dong, Jingyi Wang, Xin Dai, Jing Yan, Feifei Chu, Kexin Zhang, Fanyi Meng, Jiahui Ma, Weilong Zhong, Bangmao Wang, Yunhuan Gao, Rongcun Yang, Xinjuan Liu, Xiaomin Su, Hailong Cao
PMID39068517
发布时间2024-01
DOI10.1080/19490976.2024.2377576

实验完整度

包含患者饮食调查与样本分析、多种小鼠结肠炎模型(DSS、TNBS、IL-10-/-)及Ahr-/-小鼠基因敲除验证、细胞实验、转录组测序、CUT&Tag等,具备多层级功能及机制验证。

主要模型

C57BL/6J小鼠DSS诱导急性结肠炎模型 TNBS诱导结肠炎模型 IL-10-/-自发性结肠炎模型 HT29和LS174T人结肠癌细胞系 Ahr-/-小鼠 IBD患者(UC和CD)队列

重点核对

高脂饮食喂养时长及DSS处理周期(2周HFD+7天DSS) IAA给药剂量和途径(20 mg/kg口服灌胃,持续7天) Ahr-/-小鼠基因敲除背景(来源及验证) L. reuteri及LactobacillusΔiaaM的iaaM基因缺失构建及IAA产生能力 黏液硫化检测方法(HID-AB染色、MALII凝集素染色)

摘要

炎症性肠病(IBD)的全球发病率和患病率逐渐上升。已知高脂饮食(HFD)会破坏肠道稳态并加重IBD,但其潜在机制在很大程度上仍未明确。在这里,观察到IBD患者和小鼠结肠炎模型中膳食脂肪摄入与疾病严重程度呈正相关。HFD诱导吲哚-3-乙酸(IAA)显著降低并导致肠道屏障损伤。此外,补充IAA增强肠道黏液硫化并有效缓解结肠炎。机制上,IAA通过芳烃受体(AHR)上调参与黏液硫化的关键分子,包括3‘-磷酸腺苷5’-磷酸硫酸合酶2(Papss2)和溶质载体家族35成员B3(Slc35b3),分别是3‘-磷酸腺苷-5’-磷酸硫酸(PAPS)的合成酶和转移酶。更重要的是,AHR可以直接结合Papss2的转录起始位点。口服能够产生IAA的罗伊氏乳杆菌有助于抵抗结肠炎并促进黏液硫化,而缺乏iaaM基因且无法产生IAA的修饰罗伊氏乳杆菌菌株(LactobacillusΔiaaM)未能表现出这些效果。总之,IAA通过AHR-Papss2-Slc35b3通路增强肠道黏液硫化,有助于保护肠道稳态。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
高脂饮食如何通过影响肠道菌群代谢物进而加剧肠道炎症,其潜在机制是什么?
核心机制
高脂饮食导致肠道菌群色氨酸代谢紊乱,降低吲哚-3-乙酸(IAA)水平,IAA作为芳香烃受体(AHR)配体,激活AHR并直接结合到Papss2和Slc35b3启动子区域的XRE位点,上调其表达,促进黏液硫化,增强肠道屏障功能,从而缓解结肠炎。
主要证据
小鼠模型(DSS、TNBS、IL-10-/-)中IAA补充减轻结肠炎并增加黏液硫化;Ahr-/-小鼠中IAA的保护作用和黏液硫化作用消失;细胞实验中AHR抑制剂阻断IAA诱导的Papss2表达;CUT&Tag证明AHR结合Papss2和Slc35b3启动子;L. reuteri产生IAA发挥保护作用,而LactobacillusΔiaaM不能。
研究意义
本研究揭示了肠道菌群代谢物IAA通过AHR-Papss2-Slc35b3通路促进黏液硫化,保护肠道屏障,为IBD的治疗提供了新的靶点和策略,并提示调节IAA或黏液硫化可能作为IBD的潜在治疗途径。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

HFD加重结肠炎模型的建立

验证高脂饮食是否加剧DSS诱导的结肠炎及肠道屏障损伤

C57BL/6J小鼠喂食HFD(60%脂肪)或标准饲料2周,然后给予2.5% DSS饮水7天诱导急性结肠炎,期间监测体重、DAI评分,处死后测量结肠长度,进行组织病理学检查和FISH检测细菌易位。

2

粪便代谢组学分析

探究HFD对小鼠肠道色氨酸代谢的影响,寻找关键差异代谢物

收集HFD和对照小鼠粪便样本,进行靶向色氨酸代谢组学分析(LC-MS/MS),通过PCA、火山图和热图分析差异代谢物。

3

IAA补充对结肠炎的改善作用评估

验证IAA是否能够缓解DSS诱导的结肠炎并增强肠道屏障功能

在DSS诱导结肠炎前给小鼠口服IAA(20 mg/kg)7天,并持续至实验结束,评估体重、DAI、结肠长度、内镜评分、组织学损伤、炎症因子表达、肠道通透性及细菌易位。

4

黏液硫化水平检测及转录组分析

探究IAA对结肠黏液分泌及硫化修饰的影响及潜在机制

对结肠组织进行AB-PAS染色检测黏液层厚度、HID-AB染色和MALII凝集素染色检测硫化黏液,并对结肠组织进行RNA-seq及GSEA分析,验证硫化途径相关基因表达。

5

在细胞中验证IAA对黏液硫化基因表达的影响及AHR依赖性

确定IAA是否直接上调黏液硫化相关基因表达,并验证AHR和PXR的作用

使用HT29和LS174T细胞,分别用IAA、LPS、IAA+LPS处理24小时,并在加入AHR抑制剂CH223191或PXR抑制剂白藜芦醇后检测Papss2、Slc35b3和GlcNAc6st2的mRNA表达。

6

AHR核转位和结合验证

验证IAA是否能激活AHR并促使AHR结合到靶基因启动子

AHR抑制剂实验显示AHR介导IAA效应;显微镜观察AHR核转位;分子对接显示IAA与AHR结合;使用CUT&Tag技术证明AHR结合Papss2和Slc35b3启动子区域,并分析XRE基序。

7

Ahr基因敲除小鼠验证

在体内确认IAA通过AHR发挥作用

使用Ahr-/-小鼠,给予IAA和DSS处理,评估结肠炎严重程度、黏液硫化水平和相关基因表达。

8

工程菌验证IAA的作用

验证肠道菌群来源的IAA是否足以发挥保护作用

构建iaaM基因缺失的LactobacillusΔiaaM,将L. reuteri和LactobacillusΔiaaM灌胃给抗生素处理的小鼠,然后诱导DSS结肠炎,评估结肠炎严重程度和黏液硫化水平。

9

临床样本验证

评估IBD患者中IAA相关基因表达和黏液硫化水平与饮食脂肪摄入的关系

分析GSE59071数据集,对UC患者结肠活检进行单细胞RNA-seq,并对UC患者(伴或不伴HFD)进行HID-AB染色和Papss2免疫组化染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals0216011080
吲哚-3-乙酸Yuanye BiotechnologyS18031
二甲基亚砜BeyotimeST038
RPMI 1640培养基ProcellPM150110
胎牛血清Procell164,210-50
非必需氨基酸ProcellPB180424
青霉素/链霉素ProcellPB180120
脂多糖BeyotimeST1470
CH223191(AHR抑制剂)MedChemExpressHY-12684
白藜芦醇(PXR抑制剂)MedChemExpressHY-16561
TRIzol试剂Ambion15596026
RNA提取试剂Vazyme--
HiScript III逆转录预混液Vazyme--
ChamQ通用SYBR qPCR预混液Vazyme--
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
蛋白酶抑制剂Solarbio--
PVDF膜Invitrogen--
抗Papss2抗体Santa Cruzsc-100801
抗β-actin抗体CSTmAb3700
HRP标记抗小鼠IgGCST7076
AB-PAS染色试剂盒Solarbio--
HID-AB染色试剂盒Solarbio--
抗ZO-1抗体ABclonalA0659
DAPIBeyotimeC1002
抗MUC2抗体CST88686S
抗AHR抗体Abcamab308215
Alexa Fluor 594标记二抗Abcamab150080
AHR抗体CST83200
正常兔IgGSigma Aldrich12-370
山羊抗兔IgG H&LAbcamab6721
MRS肉汤----
MRS琼脂----
厌氧产气袋Mitsubishi Gas Chemical--
IAA化学发光免疫测定试剂盒Abbexaabx190011
粪便DNA提取试剂盒QIAGEN--
FITC-葡聚糖(分子量4000)MedChemExpressHY-128868A
精胺AladdinS425636
Illumina Novaseq 6000Illumina--
Sciex MultiQuantSCIEX--
CIEX Analyst工作站SCIEX--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
HFD加重结肠炎模型
HFD配方(60%脂肪)及喂养时长(2周);DSS浓度(2.5%)和暴露时间(7天);鼠龄(6-8周)和性别(雌性)
阅读提示:见Materials and Methods 'Animals and experiments'部分
IAA补充处理
IAA剂量(20 mg/kg)和给药途径(口服灌胃);预处理时长(7天);溶剂(DMSO)及对照组设置
阅读提示:见Materials and Methods 'Animals and experiments'部分
细胞实验
细胞系(HT29、LS174T)及培养条件(培养基、FBS浓度);IAA浓度(100 μM)、LPS浓度(100 ng/ml)和刺激时间(24小时);AHR抑制剂CH223191和PXR抑制剂白藜芦醇的浓度(10 μM)
阅读提示:见Materials and Methods 'Cell culture and treatment'部分
Ahr-/-小鼠验证
Ahr-/-小鼠来源及基因型验证;IAA给药剂量和时长;DSS诱导方案
阅读提示:见Materials and Methods 'Animals and experiments'部分
L. reuteri灌胃实验
抗生素清除(ABX)方案及时长(2周);细菌灌胃剂量(1×10^9 CFU)和频率(每周两次);DSS诱导时间(12天)
阅读提示:见Materials and Methods 'Animals and experiments'部分
黏液硫化检测
固定液(Carnoy's fixative)和包埋方法;染色方案(HID-AB、MALII)及定量分析方法
阅读提示:见Materials and Methods 'Histologic analysis and immunostaining'部分