NAT10表达与临床相关性分析
评估NAT10在鼻咽癌组织中的表达及其与患者预后的关系。
对150例鼻咽癌组织芯片进行IHC染色,评估NAT10表达,结合临床分期、复发、转移和生存数据进行分析。
Acetyltransferase NAT10 inhibits T-cell immunity and promotes nasopharyngeal carcinoma progression through DDX5/HMGB1 axis
包含临床组织芯片、细胞系体外实验、动物模型、转基因小鼠、acRIP-seq、RIP、CHIP、双荧光素酶报告等多种独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
鼻咽癌细胞系(CNE2、C666-1) 裸鼠移植瘤模型 C57BL/6小鼠及NAT10敲除小鼠(C57BL/6 NAT10em1Smoc) 人外周血T细胞
NAT10在鼻咽癌组织中的表达水平(IHC评分) NAT10敲除或过表达对肿瘤生长和转移的影响(肿瘤体积、重量、肺转移灶) NAT10敲除对CD4+和CD8+ T细胞比例的影响(流式细胞术) NAT10介导的ac4C修饰对CEBPG、DDX5、HLTF mRNA稳定性和翻译效率的影响 NAT10抑制对anti-PD-1治疗敏感性的影响(肿瘤体积、生物发光成像)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估NAT10在鼻咽癌组织中的表达及其与患者预后的关系。
对150例鼻咽癌组织芯片进行IHC染色,评估NAT10表达,结合临床分期、复发、转移和生存数据进行分析。
验证NAT10对鼻咽癌细胞增殖和转移的影响。
通过慢病毒或CRISPR-Cas9在CNE2细胞中过表达或敲除NAT10,进行体外增殖、迁移实验以及裸鼠皮下移植瘤和肺转移模型实验。
探讨NAT10在鼻咽癌免疫微环境中对T细胞的影响。
利用TIMER2.0数据库分析NAT10与免疫浸润的相关性;通过流式细胞术检测NAT10敲除小鼠外周血T细胞比例;进行T细胞杀伤实验和体内T细胞回输实验。
鉴定NAT10介导ac4C修饰的下游靶mRNA。
通过acRIP-seq和RNA-seq联合分析,结合RT-qPCR和Western blot验证,鉴定CEBPG、DDX5、HLTF为候选靶基因。
验证NAT10通过ac4C修饰影响靶基因mRNA稳定性和翻译。
使用放线菌素D处理细胞检测mRNA稳定性;使用CHX和MG132处理检测蛋白稳定性;进行acRIP-qPCR和RIP实验。
验证HLTF作为转录因子调控NAT10表达。
通过siRNA沉默HLTF检测NAT10表达,CHIP和荧光素酶报告实验验证HLTF与NAT10启动子结合。
验证DDX5对HMGB1的转录调控,并确认NAT10-DDX5-HMGB1轴的功能重要性。
通过shRNA敲低DDX5检测HMGB1表达,CHIP验证DDX5与HMGB1启动子结合,回补实验验证DDX5和HMGB1对肿瘤细胞增殖和转移的作用。
评估抑制NAT10是否能增强抗PD-1治疗的疗效。
在C57BL/6野生型和NAT10敲除小鼠中建立皮下移植瘤模型(LLC或CNE2),给予抗PD-1或IgG对照,检测肿瘤体积和T细胞比例。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Biological Industries Israel Beit-Haemek | 01-100-1ACS |
| 胎牛血清 | -- | 04-001-1ACS | |
| 角质形成细胞无血清培养基 | Thermo Fisher Scientific | 17005-042 | |
| 动物实验 | 抗IgG同型对照 | Bio X Cell | BE0089 |
| 抗PD-1抗体 | Bio X Cell | BE0273 | |
| HMGB1蛋白 | MCE | HY-P73104 | |
| Western blot | 抗NAT10抗体 | -- | -- |
| 抗DDX5抗体 | -- | -- | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| SYBR Green PCR预混液 | Roche | -- | |
| 蛋白质稳定性实验 | MG132 | -- | -- |
| RIP实验 | Magna RIP试剂盒 | Merck | 17-700 |
| CHIP实验 | CHIP检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 27177 |
| 流式细胞术 | CD3抗体 | Elabscience | F1013C |
| CD4抗体 | Elabscience | F1097D | |
| CD8抗体 | Elabscience | F1104E | |
| CD45抗体 | eBioscience | 56-0451-80 | |
| CD11B抗体 | eBioscience | 67-0112-80 | |
| NK1.1抗体 | eBioscience | 25-5941-81 | |
| CD19抗体 | eBioscience | 15-0193-81 | |
| LY6G抗体 | eBioscience | 17-9668-80 | |
| F4/80抗体 | eBioscience | 123131 | |
| LY6C抗体 | eBioscience | 12-5932-80 | |
| CD11C抗体 | eBioscience | 11-0114-81 | |
| 细胞培养 | Ficoll分离液 | TBD | LTS1077-1 |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | Novoprotein | C003 | |
| 白细胞介素-4 | PeproTech | 200-04 | |
| 干扰素-γ | Novoprotein | GMP-CI57 | |
| CD3/CD28扩增磁珠 | Biogradetech | C-BETA2001 | |
| 白细胞介素-2 | Novoprotein | C013 | |
| 白细胞介素-7 | Novoprotein | C086 | |
| 白细胞介素-15 | PeproTech | 200-15 | |
| 动物模型 | DiD荧光染料 | Thermo Fisher | D307 |
| acRIP-seq | 抗ac4C抗体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | NPC细胞系(CNE2、C666-1)使用RPMI 1640培养基含10% FBS,NP69细胞使用Keratinocyte-SFM培养基,LLC细胞使用Eagle培养基含10% FBS和1%青霉素-链霉素,均在37°C、5% CO2条件下培养。 阅读提示:详见Materials and methods中的Cell culture部分 |
| 动物模型建立 | CNE2或LLC细胞以5×10^5个细胞皮下注射至小鼠右前肢,肿瘤体积按公式计算,每2-3次/周测量。 阅读提示:详见Materials and methods中的Tumor growth and treatment部分 |
| NAT10表达检测 | IHC染色评分标准:染色强度和阳性率各分4级,总分为乘积,低表达1–8分,高表达9–16分,使用X-tile软件确定截断值。 阅读提示:详见Results部分及Materials and methods中的Immunohistochemistry部分 |
| T细胞功能分析 | 流式细胞术检测外周血免疫细胞,使用CD3、CD4、CD8等抗体,具体抗体及用量需核对。 阅读提示:详见Materials and methods中的Flow cytometry部分 |
| acRIP-seq实验 | RNA浓度>400ng/µL,OD260/280在1.8-2.2之间,使用150µg总RNA,片段化至约200nt,抗体为anti-ac4C和对照rabbit IgG。 阅读提示:详见Materials and methods中的acRIP-seq analysis部分 |
| RNA稳定性实验 | 使用放线菌素D(5µg/mL)处理不同时间(0, 3, 6小时),检测mRNA表达。 阅读提示:详见Materials and methods中的RNA stability assay部分 |
| 抗PD-1治疗实验 | 肿瘤生长至100mm^3时,腹腔注射抗PD-1抗体(100µg)或IgG对照,每4天一次。 阅读提示:详见Materials and methods中的Tumor growth and treatment部分 |