体内I/R模型建立及IKKɑ表达检测
检测心肌I/R损伤后IKKɑ的表达变化及其细胞定位
对IKKɑflox/flox小鼠进行LAD结扎30分钟,再灌注3天或7天,通过Western blot检测IKKɑ、IKKβ、IKKγ表达,并通过共免疫荧光检测IKKɑ与CD68共定位。
Regulatory role of IKKɑ in myocardial ischemia/reperfusion injury by the determination of M1 versus M2 polarization of macrophages
包含体内动物模型(巨噬细胞特异性IKKɑ敲除小鼠)和体外细胞实验(RAW264.7),并进行了功能验证(极化、炎症)和机制验证(NF-κB和MAPK通路)
巨噬细胞特异性IKKɑ敲除小鼠 IKKɑflox/flox同窝小鼠 RAW264.7巨噬细胞系
缺血时间30分钟,再灌注时间3天和7天 LPS刺激浓度1 μg/ml,刺激1小时或24小时 巨噬细胞特异性IKKɑ敲除小鼠(mIKKɑ−/−) LAD结扎模拟心肌缺血/再灌注 M1标志物(iNOS, TNF-ɑ, IL-1β)和M2标志物(Arg1)的检测
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测心肌I/R损伤后IKKɑ的表达变化及其细胞定位
对IKKɑflox/flox小鼠进行LAD结扎30分钟,再灌注3天或7天,通过Western blot检测IKKɑ、IKKβ、IKKγ表达,并通过共免疫荧光检测IKKɑ与CD68共定位。
评估巨噬细胞IKKɑ缺失对心肌损伤、炎症和功能的影响
对mIKKɑ−/−小鼠和IKKɑflox/flox同窝小鼠进行I/R手术,通过HE染色、Masson染色、超声心动图、免疫组化检测炎症因子和巨噬细胞浸润。
检测IKKɑ缺失对心肌组织巨噬细胞极化的影响
通过qPCR检测M1(iNOS, TNF-ɑ, IL-1β)和M2(Arg1, TGF-β, IL-10)标志物mRNA表达,通过Western blot和共免疫荧光检测iNOS和Arg1蛋白表达。
验证IKKɑ对巨噬细胞极化的直接调控作用
使用siRNA或慢病毒敲低/过表达RAW264.7细胞中的IKKɑ,再用LPS刺激,检测M1标志物表达。
阐明IKKɑ调控巨噬细胞极化的分子机制
在RAW264.7中敲低或过表达IKKɑ,LPS刺激1小时后,通过Western blot检测NF-κB通路(p65, IκBɑ, RelB, p100/p52)和MAPK通路(MEK1/2, ERK1/2, JNK, p38)的磷酸化水平;通过免疫共沉淀检测IKKɑ与RelB的相互作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 5%水合氯醛 | -- | -- |
| 异氟烷 | -- | -- | |
| 细胞培养 | Lipofectamine-2000转染试剂 | Invitrogen | 11668-019 |
| 脂多糖 | Sigma | L4391 | |
| qRT-PCR | Trizol试剂 | Invitrogen | 15596-026 |
| PrimScript逆转录试剂盒 | Takara | RR047A | |
| SYBR Premix Ex Taq II | Takara | RR082A | |
| Applied Biosystems 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| Immobilon Western化学发光HRP底物 | Millipore | WBKLS0500 | |
| ChemiScope 3300 Mini化学发光成像系统 | Clinx Science Instruments | 3300 Mini | |
| 免疫共沉淀 | Protein G磁珠系统 | Millipore | LSKMAGG02 |
| RIPA裂解液 | Beyotime | P0013D | |
| 免疫组化 | 山羊血清 | 北京中杉金桥 | ZLI-9022 |
| 抗IL-12A抗体 | Abcam | ab131039 | |
| 抗TNF-α抗体 | Bioss | bs-2081R | |
| 抗IL-10抗体 | Bioss | bs-0698R | |
| 抗CD68抗体 | Abcam | ab125212 | |
| 抗波形蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 5741S | |
| 山羊抗兔IgG | MXB | KIT-5004 | |
| 山羊抗小鼠IgG | MXB | KIT-5001 | |
| 免疫荧光 | 抗iNOS抗体 | Abcam | ab49999 |
| 抗Arg1抗体 | Novus | NBP1-32731 | |
| 抗CXCR4抗体 | Abcam | ab2074 | |
| Alexa Fluor 488鸡抗兔IgG (H+L) | Invitrogen | A21441 | |
| Alexa Fluor 488鸡抗小鼠IgG (H+L) | Invitrogen | A21220 | |
| Alexa Fluor 594鸡抗兔IgG (H+L) | Invitrogen | A21442 | |
| Hoechst染料 | Sigma | B-2261 | |
| Western blot | 抗IKKα抗体 | Novus | NB100-56704 |
| 抗磷酸化p65抗体 | Cell Signaling Technology | cs3033 | |
| 抗p65抗体 | Santa Cruz | sc8008 | |
| 抗磷酸化IκBα抗体 | Cell Signaling Technology | 2859s | |
| 抗IκBα抗体 | Santa Cruz | sc371 | |
| 抗磷酸化p100/p52抗体 | Abcam | ab31474 | |
| 抗p100/p52抗体 | Abcam | ab109440 | |
| 抗磷酸化RelB抗体 | Abcam | ab47366 | |
| 抗RelB抗体 | Abcam | ab180127 | |
| 抗磷酸化p38抗体 | Cell Signaling Technology | 4511s | |
| 抗p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9212s | |
| 抗磷酸化JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 4668s | |
| 抗JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 9258s | |
| 抗磷酸化MEK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9154s | |
| 抗MEK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9122s | |
| 抗磷酸化ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370s | |
| 抗ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4695s | |
| HRP偶联GAPDH抗体 | KangChen | KC-5G5 | |
| 山羊抗小鼠IgG/HRP | Bioss | bs-0296G-HRP | |
| 抗兔IgG HRP连接抗体 | Cell Signaling Technology | 7074P2 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6背景,IKKαflox/flox和Lyz2-Cre),年龄6-8周,体重20-25g 阅读提示:Materials and methods - Animals |
| 缺血/再灌注手术 | LAD结扎位置(距起点3mm),缺血时间30分钟,再灌注时间3天和7天 阅读提示:Materials and methods - Ischemia/reperfusion protocol |
| 超声心动图 | 麻醉方式(1.5-2%异氟烷吸入),探头频率30MHz,测量参数(LVIDd, LVIDs, IVSd) 阅读提示:Materials and methods - Echocardiography evaluation |
| 体外细胞实验 | RAW264.7细胞系,LPS浓度1 μg/ml,刺激时间1小时或24小时,siRNA转染效率>70%,慢病毒感染MOI=10,感染16小时,培养72小时 阅读提示:Materials and methods - Transfection, Lentivirus infection, and Results |
| Western blot | 蛋白上样量30 μg,一抗稀释比例(见文中相应抗体),使用PVDF膜,TBST洗涤,5% BSA封闭 阅读提示:Materials and methods - Western blotting analysis |