抑制磷酸甘油酸激酶1通过重编程CD4+ T细胞代谢减轻自身免疫性心肌炎

Inhibition of phosphoglycerate kinase 1 attenuates autoimmune myocarditis by reprogramming CD4+ T cell metabolism

作者信息Yang Lu, Ning Zhao, Yuwei Wu, Shuaitao Yang, Qiongfeng Wu, Qian Dong, Yimei Du
PMID36726197
发布时间2023-06-13
DOI10.1093/cvr/cvad029

实验完整度

包含EAM小鼠模型、患者样本、单细胞测序分析、体外T细胞分化实验、机制验证(PDHK1磷酸化、ROS)和体内功能验证(心脏功能、组织学)。

主要模型

BALB/c小鼠EAM模型 小鼠原代CD4+ T细胞 心肌炎患者外周血CD4+ T细胞

重点核对

EAM诱导使用MHC-α614-629肽皮下注射,剂量0.2 mL,Day 0和Day 7。 NG52给药剂量100 mg/kg/d,灌胃,Day 0至Day 21。 体外Th17分化条件:IL-6 50 ng/mL, TGF-β 2.5 ng/mL, anti-IFN-γ 5 μg/mL, anti-IL-4 5 μg/mL。 NG52浓度:3 μM和6 μM。 ROS检测:DCFDA 10 μM和MitoSOX 5 μM。

摘要

目的:CD4+ T细胞是心肌炎中心脏特异性自身免疫的主要驱动因素,尤其是Th1、Treg以及最重要的Th17细胞。但其激活的分子机制仍不清楚。我们旨在阐明磷酸甘油酸激酶1(PGK1)在CD4+ T细胞和实验性自身免疫性心肌炎(EAM)中的调节作用。方法和结果:通过皮下注射α肌球蛋白重链肽与完全弗氏佐剂乳化的混合物在BALB/c小鼠中诱导EAM。单细胞测序分析发现,心肌炎小鼠心脏CD4+ T和Th17细胞中糖酵解和PGK1表达升高。用PGK1抑制剂NG52处理的小鼠心脏炎症和纤维化减轻,收缩功能改善,心脏浸润Th17和Th1细胞减少,Treg比例增加。NG52在体外抑制小鼠和心肌炎患者的CD4+ T细胞活化和分化。机制上,抑制PGK1抑制糖酵解活性并降低丙酮酸脱氢酶激酶1(PDHK1)磷酸化,从而增加线粒体活性氧(ROS)产生,进而阻止Th17细胞分化。结论:PGK1可能作为CD4+ T细胞分化的关键代谢调节因子,通过调节糖酵解和PDHK1-ROS轴调控Th17细胞分化。靶向PGK1可能是治疗心肌炎的有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PGK1是否通过调节CD4+ T细胞代谢影响自身免疫性心肌炎的发病机制?
核心机制
PGK1通过调控糖酵解和PDHK1磷酸化,抑制ROS产生,从而促进Th17细胞分化;抑制PGK1则导致ROS积累,抑制Th17分化并促进Treg生成。
主要证据
单细胞测序显示心肌炎小鼠心脏CD4+ T和Th17细胞中糖酵解和PGK1表达升高;NG52处理减轻EAM小鼠心脏炎症和纤维化,改善心功能;体外实验证实NG52抑制CD4+ T细胞活化和Th17分化,并增加ROS。
研究意义
靶向PGK1可能成为治疗心肌炎并延缓其向扩张型心肌病进展的新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

EAM模型建立及PGK1表达检测

建立自身免疫性心肌炎小鼠模型并检测PGK1在心脏和T细胞中的表达。

通过皮下注射MHC-α肽诱导EAM,收集心脏组织,采用RT-qPCR、免疫组化和免疫荧光检测PGK1表达及定位。

2

单细胞测序数据分析

分析心肌炎小鼠心脏中T细胞亚群的糖酵解基因表达特征。

重新分析GSE142564数据集,利用Seurat聚类和GO富集分析,评估Th17等T细胞亚群的糖酵解通路和PGK1表达。

3

体内NG52治疗实验

评估PGK1抑制剂NG52对EAM小鼠心脏损伤和CD4+ T细胞亚群的影响。

EAM诱导后,每天灌胃给予NG52或溶剂,在第21天和第42天评估心脏功能、组织病理及流式细胞术分析免疫细胞。

4

体外CD4+ T细胞活化与分化实验

研究NG52对CD4+ T细胞活化和Th17分化的直接影响。

分离EAM小鼠或正常小鼠的CD4+ T细胞或初始CD4+ T细胞,在抗CD3/CD28刺激下添加NG52,检测活化标志物、增殖和Th17/Treg分化。

5

机制验证实验

阐明PGK1调控Th17分化的分子机制。

检测NG52对Th17细胞糖酵解、PDHK1磷酸化及ROS产生的影响,并用ROS清除剂NAC进行回补实验。

6

患者样本验证

验证PGK1在人心肌炎患者CD4+ T细胞中的作用。

分离心肌炎患者外周血CD4+ T细胞,检测PGK1表达、NG52对活化和Th17分化的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MHC-α614-629肽GL Biochem--
完全弗氏佐剂Sigma--
NG52MedChemExpress--
羟丙基-β-环糊精Sigma-Aldrich--
胶原酶IIWashington--
RPMI-1640培养基Hyclone--
胎牛血清SCIENCELL--
L-谷氨酰胺Gibco--
非必需氨基酸Gibco--
青霉素/链霉素Servicebio--
β-巯基乙醇Gibco--
CD4 T细胞分离试剂盒STEMCELL--
CD8 T细胞分离试剂盒STEMCELL--
初始CD4+ T细胞分离试剂盒STEMCELL--
抗CD16/32抗体Biolegend--
Zombie Aqua固定活力试剂盒Biolegend423102
Cytofix/CytopermBD Biosciences--
Perm/Wash缓冲液BD Biosciences--
Foxp3固定/破膜试剂盒eBioscience--
PE抗小鼠Foxp3Invitrogen72-5775-40
FITC抗小鼠CD45Biolegend103108
APC-Cy7抗小鼠CD11bBiolegend101226
Brilliant Violet 421抗小鼠Ly6CBiolegend128031
PE抗小鼠CD44Biolegend103007
FITC抗小鼠CD4Biolegend100406
Brilliant Violet 421抗小鼠CD4Biolegend100437
APC抗小鼠IFN-γBiolegend505809
PE抗小鼠IL-4Biolegend504104
PE-Cy7抗小鼠CD8Biolegend100791
APC-Cy7抗小鼠GZMBBiolegend372209
APC抗小鼠Ly6GBiolegend127614
APC抗小鼠CD62LBiolegend104411
APC抗小鼠CD25Biolegend102012
APC抗小鼠IL-17ABiolegend506916
PE抗小鼠IL-17ABiolegend506904
PerCP/Cyanine5.5抗人CD4Biolegend317427
PE抗人HLA-DRBiolegend307605
APC抗人CD25Biolegend302609
DCFDAInvitrogen--
MitoSOXInvitrogen--
2-NBDGPeprotech--
Trizol试剂Invitrogen--
PrimeScript逆转录试剂盒Takara Biotechnology--
AceQ通用SYBR qPCR预混液Vazyme--
CFX CONNECT检测系统Bio-rad--
抗GAPDH抗体AntgeneANT325
抗β-actin抗体AntgeneANT321
增强化学发光试剂盒Pierce--
Agilent糖酵解速率试剂盒Agilent--
Seahorse XF分析仪Agilent--
抗PGK1抗体Proteintech17811-1-AP
抗PDHK1抗体Proteintech18262-1-AP
抗磷酸化Thr338 PDHK1抗体Signalway antibody11596
抗小鼠CD4抗体Abcamab183685
抗人CD4抗体Proteintech67786-1-Ig
抗IL-17A抗体Abcamab79056

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
EAM诱导
MHC-α614-629肽的剂量和注射体积,完全弗氏佐剂与肽的乳化比例。
阅读提示:Methods 2.3 EAM induction and NG52 treatment in vivo
药物处理
NG52给药剂量(100 mg/kg/d)、给药方式(灌胃)、时间窗口(Day 0至Day 21)。
阅读提示:Methods 2.3 EAM induction and NG52 treatment in vivo
心脏功能评估
超声心动图参数(EF、FS),小鼠麻醉条件(1.5%异氟烷),探头频率。
阅读提示:Methods 2.5 Echocardiography
体外T细胞分化
细胞刺激抗体浓度(αCD3/αCD28各5 μg/mL),极化细胞因子浓度,NG52浓度(3 μM和6 μM),培养时间。
阅读提示:Methods 2.9 T cell culture and differentiation in vitro
糖酵解分析
Seahorse细胞数量(500,000 cells/孔),试剂注射浓度(Rotenone/antimycin A 0.5 μM, 2-DG 50 mM)。
阅读提示:Methods 2.13 Glycolysis analysis using the Seahorse XF platform