临床样本分析
探究糖尿病患者血清神经酰胺水平与血糖的关系
收集健康对照和2型糖尿病患者的血清样本,通过LC-MS/MS定量检测神经酰胺含量,并进行相关分析。
Ceramide enhanced the hepatic glucagon response through regulation of CREB activity
包含临床样本分析、小鼠代谢模型、原代肝细胞功能实验、Sptlc2基因敲低体内验证及分子机制研究(PP2A、CRTC2),多个证据层级相互支撑。
小鼠原代肝细胞 C57BL/6J小鼠(高脂饮食模型) HepG2细胞 HEK-293T细胞
临床样本中血清神经酰胺水平与空腹血糖的关联 小鼠模型中神经酰胺合成与糖异生基因表达的关系 原代肝细胞中C2-神经酰胺增强胰高血糖素诱导的葡萄糖生成 Sptlc2敲低对肝脏葡萄糖生成的影响 PP2A抑制剂冈田酸对CRTC2去磷酸化及葡萄糖生成的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究糖尿病患者血清神经酰胺水平与血糖的关系
收集健康对照和2型糖尿病患者的血清样本,通过LC-MS/MS定量检测神经酰胺含量,并进行相关分析。
验证代谢紊乱状态下神经酰胺合成与内源性葡萄糖生成的关系
对C57BL/6J小鼠进行高脂饮食或高脂高胆固醇饮食喂养,检测血糖、糖耐量、胰岛素耐量、丙酮酸耐量及肝脏神经酰胺含量和相关基因表达。
验证神经酰胺对胰高血糖素诱导的肝脏葡萄糖生成的影响
分离小鼠原代肝细胞,用C2-神经酰胺处理,检测葡萄糖生成、糖异生基因表达,并通过siRNA敲低Sptlc2观察其对葡萄糖生成的影响。
阐明神经酰胺增强胰高血糖素反应的分子机制
通过免疫印迹、免疫沉淀、免疫荧光和报告基因实验检测CRTC2磷酸化、14-3-3结合、核转位及G6pc和Pck1启动子活性,并使用PP2A抑制剂验证通路。
验证抑制神经酰胺合成对肝脏胰高血糖素反应的影响
通过尾静脉注射AAV8-shSptlc2敲低小鼠肝脏Sptlc2,进行胰高血糖素挑战和丙酮酸耐受实验,检测血糖、PP2A活性及糖异生基因表达。
在长期高脂饮食背景下验证Sptlc2敲低对高血糖和脂质积累的影响
HFD喂养12周后敲低Sptlc2,检测体重、血糖、糖耐量、丙酮酸耐量及肝脏脂质沉积。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| LC-MS/MS分析 | 液相色谱-串联质谱8050 | Shimadzu | -- |
| ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱 | Waters | -- | |
| 小鼠原代肝细胞分离 | IV型胶原酶 | gibco | 17104019 |
| Percoll分离液 | Sigma-Aldrich | P1644 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Thermo Scientific | 89901 |
| NE-PER核浆蛋白提取试剂盒 | Thermo Scientific | 78833 | |
| 免疫沉淀 | 蛋白L磁珠 | MedChemExpress | HY-K0205 |
| RT-qPCR | RNA-easy RNA提取试剂 | Vazyme | R701-01 |
| HiScript III RT SuperMix反转录试剂 | Vazyme | R323-01 | |
| SYBR Green定量PCR预混液 | Vazyme | Q141-02 | |
| QuantStudio 7实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor™ 594山羊抗小鼠IgG | Invitrogen | 2326075 |
| Fluoromount-G封片剂 | SouthernBiotech | H0621–V341 | |
| THUNDER DMi8显微镜 | Leica | -- | |
| 报告基因分析 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 11668019 |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | 糖尿病诊断标准、样本量、空腹血糖水平、血清神经酰胺检测方法 阅读提示:见2.1 Human subjects及2.2 LC-MS/MS analysis |
| 小鼠模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、饮食类型与时长、各组样本量、血糖检测方法 阅读提示:见2.3 Animal models and analysis及图2图注 |
| 原代肝细胞实验 | 肝细胞分离方法、C2-神经酰胺浓度、胰高血糖素浓度、处理时间、葡萄糖生成检测方法 阅读提示:见2.5和2.7节及图3图注 |
| 分子机制实验 | 抗体信息、PP2A抑制剂浓度、报告基因载体、转染条件 阅读提示:见2.9、2.10、2.12、2.13节及图4、图5图注 |
| 体内敲低实验 | AAV8-shSptlc2注射剂量与时间、胰高血糖素和丙酮酸剂量、检测时间点 阅读提示:见2.4节及图6图注 |