神经酰胺通过调控CREB活性增强肝脏胰高血糖素反应

Ceramide enhanced the hepatic glucagon response through regulation of CREB activity

作者信息Jizheng Wang, Dan Wang, Shan Lu, Yifang Hu, Yaoqi Ge, Xiaoxuan Qin, Yanfei Mo, Jingbao Kan, Dong Li, Rihua Zhang, Yun Liu, Wen-Song Zhang
PMID38142481
期刊Clin Nutr
发布时间2024-02
DOI10.1016/j.clnu.2023.12.008

实验完整度

包含临床样本分析、小鼠代谢模型、原代肝细胞功能实验、Sptlc2基因敲低体内验证及分子机制研究(PP2A、CRTC2),多个证据层级相互支撑。

主要模型

小鼠原代肝细胞 C57BL/6J小鼠(高脂饮食模型) HepG2细胞 HEK-293T细胞

重点核对

临床样本中血清神经酰胺水平与空腹血糖的关联 小鼠模型中神经酰胺合成与糖异生基因表达的关系 原代肝细胞中C2-神经酰胺增强胰高血糖素诱导的葡萄糖生成 Sptlc2敲低对肝脏葡萄糖生成的影响 PP2A抑制剂冈田酸对CRTC2去磷酸化及葡萄糖生成的影响

摘要

背景与目的:高血糖与糖尿病患者脂质紊乱相关。神经酰胺是鞘脂代谢中涉及代谢物,在脂质紊乱时积累并对葡萄糖和脂质代谢产生不良影响。然而,神经酰胺对胰高血糖素介导的肝脏糖异生的影响仍大部分未知。本研究旨在探讨神经酰胺在肝脏胰高血糖素反应背景下对糖异生的影响,以寻找糖尿病高血糖新的药物干预措施。方法:采用液相色谱-质谱联用技术定量检测糖尿病患者血清神经酰胺含量。从雄性C57BL/6J小鼠中分离原代肝细胞,研究神经酰胺对肝脏葡萄糖生成的影响。采用免疫荧光染色观察肝细胞中cAMP反应元件结合蛋白(CREB)调控的转录共激活因子2(CRTC2)核转位。利用含有shRNA的腺相关病毒生成丝氨酸棕榈酰转移酶长链碱基亚基2(Sptlc2)敲低小鼠,并通过胰高血糖素耐受试验和丙酮酸耐受试验评估正常饲料和高脂饲料喂养小鼠的肝脏葡萄糖生成。结果:新诊断2型糖尿病患者血清神经酰胺水平升高。代谢紊乱小鼠中神经酰胺从头合成被激活。神经酰胺增强原代肝细胞肝脏葡萄糖生成。相反,Sptlc2基因沉默阻止了此过程。机制上,神经酰胺使CRTC2(Ser 171)去磷酸化并促进其转位至细胞核以激活CREB,从而增强肝脏胰高血糖素反应。肝脏Sptlc2沉默阻断肝脏神经酰胺生成,从而在正常饲料和高脂饲料喂养的小鼠中抑制肝脏胰高血糖素反应。结论:这些数据表明神经酰胺作为细胞内信使,通过在肝脏胰高血糖素反应背景下调节CRTC2/CREB活性增强肝脏葡萄糖生成,提示CRTC2磷酸化可能是药物干预糖尿病禁食期间高血糖反应的潜在节点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经酰胺是否以及如何影响胰高血糖素介导的肝脏糖异生,从而参与糖尿病高血糖的发生?
核心机制
神经酰胺通过激活PP2A使CRTC2在Ser171位点去磷酸化,促进其核转位并与CREB结合,增强CREB转录活性,进而上调糖异生关键酶G6pc和Pck1的表达,放大肝脏胰高血糖素反应。
主要证据
糖尿病患者血清神经酰胺水平升高并与空腹血糖正相关;小鼠高脂喂养后肝脏神经酰胺合成增加且糖异生增强;原代肝细胞中C2-神经酰胺增强胰高血糖素诱导的葡萄糖生成和糖异生基因表达,而Sptlc2敲低则抑制;体内Sptlc2敲低改善胰高血糖素耐受;PP2A抑制剂逆转神经酰胺效应。
研究意义
本研究揭示神经酰胺作为细胞内信使在肝脏胰高血糖素反应中的作用,提示CRTC2磷酸化可能是药物干预糖尿病禁食期间高血糖的潜在节点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本分析

探究糖尿病患者血清神经酰胺水平与血糖的关系

收集健康对照和2型糖尿病患者的血清样本,通过LC-MS/MS定量检测神经酰胺含量,并进行相关分析。

2

小鼠代谢模型建立

验证代谢紊乱状态下神经酰胺合成与内源性葡萄糖生成的关系

对C57BL/6J小鼠进行高脂饮食或高脂高胆固醇饮食喂养,检测血糖、糖耐量、胰岛素耐量、丙酮酸耐量及肝脏神经酰胺含量和相关基因表达。

3

原代肝细胞功能实验

验证神经酰胺对胰高血糖素诱导的肝脏葡萄糖生成的影响

分离小鼠原代肝细胞,用C2-神经酰胺处理,检测葡萄糖生成、糖异生基因表达,并通过siRNA敲低Sptlc2观察其对葡萄糖生成的影响。

4

分子机制解析

阐明神经酰胺增强胰高血糖素反应的分子机制

通过免疫印迹、免疫沉淀、免疫荧光和报告基因实验检测CRTC2磷酸化、14-3-3结合、核转位及G6pc和Pck1启动子活性,并使用PP2A抑制剂验证通路。

5

体内基因敲低验证

验证抑制神经酰胺合成对肝脏胰高血糖素反应的影响

通过尾静脉注射AAV8-shSptlc2敲低小鼠肝脏Sptlc2,进行胰高血糖素挑战和丙酮酸耐受实验,检测血糖、PP2A活性及糖异生基因表达。

6

慢性疾病模型验证

在长期高脂饮食背景下验证Sptlc2敲低对高血糖和脂质积累的影响

HFD喂养12周后敲低Sptlc2,检测体重、血糖、糖耐量、丙酮酸耐量及肝脏脂质沉积。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
液相色谱-串联质谱8050Shimadzu--
ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱Waters--
IV型胶原酶gibco17104019
Percoll分离液Sigma-AldrichP1644
DMEM培养基----
RIPA裂解液Thermo Scientific89901
NE-PER核浆蛋白提取试剂盒Thermo Scientific78833
蛋白L磁珠MedChemExpressHY-K0205
RNA-easy RNA提取试剂VazymeR701-01
HiScript III RT SuperMix反转录试剂VazymeR323-01
SYBR Green定量PCR预混液VazymeQ141-02
QuantStudio 7实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
Alexa Fluor™ 594山羊抗小鼠IgGInvitrogen2326075
Fluoromount-G封片剂SouthernBiotechH0621–V341
THUNDER DMi8显微镜Leica--
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668019
双荧光素酶报告基因检测系统PromegaE1910

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
糖尿病诊断标准、样本量、空腹血糖水平、血清神经酰胺检测方法
阅读提示:见2.1 Human subjects及2.2 LC-MS/MS analysis
小鼠模型建立
小鼠品系、性别、年龄、饮食类型与时长、各组样本量、血糖检测方法
阅读提示:见2.3 Animal models and analysis及图2图注
原代肝细胞实验
肝细胞分离方法、C2-神经酰胺浓度、胰高血糖素浓度、处理时间、葡萄糖生成检测方法
阅读提示:见2.5和2.7节及图3图注
分子机制实验
抗体信息、PP2A抑制剂浓度、报告基因载体、转染条件
阅读提示:见2.9、2.10、2.12、2.13节及图4、图5图注
体内敲低实验
AAV8-shSptlc2注射剂量与时间、胰高血糖素和丙酮酸剂量、检测时间点
阅读提示:见2.4节及图6图注