建立骨癌疼痛模型并评估疼痛行为
建立稳定的骨癌疼痛小鼠模型,并验证模型是否成功以及疼痛行为的变化。
将NCTC2472骨肉瘤细胞注入小鼠右侧股骨骨髓腔建立BCP模型,通过HE染色观察骨组织破坏,并通过测量PWMT和NSF评估疼痛行为。
USP48 alleviates bone cancer pain and regulates MrgC stabilization in spinal cord neurons of male mice
该研究包含体内动物模型(BCP小鼠)和体外细胞实验(N2a细胞),并进行了功能验证(疼痛行为学)和机制验证(免疫共沉淀、泛素化分析等),满足高完整度要求。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立稳定的骨癌疼痛小鼠模型,并验证模型是否成功以及疼痛行为的变化。
将NCTC2472骨肉瘤细胞注入小鼠右侧股骨骨髓腔建立BCP模型,通过HE染色观察骨组织破坏,并通过测量PWMT和NSF评估疼痛行为。
明确在骨癌疼痛过程中,脊髓中USP48和MrgC的表达变化以及USP48的细胞定位。
通过Western blotting和RT-qPCR检测不同时间点脊髓组织中USP48和MrgC的表达,通过免疫荧光染色观察USP48在脊髓背角的表达和细胞定位。
验证在脊髓神经元中过表达USP48是否能缓解骨癌疼痛。
在BCP模型建立前21天,通过鞘内注射AAV-USP48或AAV-NC,然后通过Western blotting检测USP48表达,并通过疼痛行为学测试评估疼痛缓解效果。
明确USP48是否影响MrgC蛋白水平以及两者是否存在直接相互作用。
通过Western blotting检测过表达或敲低USP48后MrgC蛋白的变化;在脊髓组织和N2a细胞中进行免疫共沉淀验证内源和外源USP48与MrgC的相互作用。
阐明USP48是否通过去泛素化影响MrgC的稳定性和降解途径。
使用CHX追踪实验检测MrgC蛋白半衰期;通过表达不同的泛素突变体进行免疫共沉淀分析USP48影响的泛素链类型;使用不同的降解途径抑制剂处理N2a细胞,探究MrgC的降解方式。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | C3H/HeNCrl小鼠 | 北京维通利华实验动物技术有限公司 | -- |
| 细胞培养 | Neuro-2a (N2a)细胞 | American Type Culture Collection | -- |
| DMEM培养基 | BI | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素 | Gibco | -- | |
| 链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| BCP模型建立 | α-MEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| NCTC2472细胞 | American Type Culture Collection | -- | |
| 鞘内注射 | AAV-USP48 | -- | NM_130879 |
| AAV-NC | -- | -- | |
| 免疫荧光 | anti-USP48抗体 | Abcam | ab72226 |
| anti-Iba1抗体 | Wako | 019-19741 | |
| anti-GFAP抗体 | Cell Signalling Tech | 80788 | |
| anti-NeuN抗体 | Abcam | -- | |
| Alexa 488偶联山羊抗兔二抗 | Invitrogen | A32731 | |
| Alexa 594偶联山羊抗小鼠二抗 | Invitrogen | A-11005 | |
| DAPI | Abcam | -- | |
| Western blotting | M-PER哺乳动物蛋白提取试剂 | ThermoFisher | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| anti-MrgC抗体 | Invitrogen | PA5-89019 | |
| anti-β-Actin抗体 | Bioss | bs-0061R | |
| anti-Flag抗体 | Cell Signalling Tech | 14793 | |
| anti-Myc抗体 | Cell Signalling Tech | 2276 | |
| anti-HA抗体 | Cell Signalling Tech | 3724 | |
| 山羊抗兔二抗 | Beyotime | A0208 | |
| 山羊抗小鼠二抗 | Beyotime | A0216 | |
| 增强化学发光试剂 | Vazyme | -- | |
| 免疫沉淀 | anti-USP48抗体 | Proteintech | 12076-1-AP |
| anti-IgG抗体 | Beyotime | A7016 | |
| Protein A/G磁珠 | Beyotime | -- | |
| anti-Myc磁珠 | Beyotime | P2118 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| HiScript II qRT SuperMix逆转录试剂 | Vazyme | -- | |
| ChamQ Universal SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| QuantStudio™ 5食品安全实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| HE染色 | EDTA脱钙液 | -- | -- |
| 行为学测试 | von Frey纤毛 | Stoelting | -- |
| 统计分析 | SPSS 25.0 | IBM | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系(C3H/HeNCrl)、性别(雄性)、年龄(4-6周龄)、体重(23±2g)、肿瘤细胞类型(NCTC2472)及数量(2×10^5)、注射体积(20μL) 阅读提示:Materials and Methods, 2.1 Animals和2.3 Establishment of BCP model |
| 鞘内注射 | AAV血清型(9型)、注射体积(5μL)、注射时间(BCP建模前21天)、注射位点(L5-L6椎间隙) 阅读提示:Materials and Methods, 2.4 Intrathecal injection |
| 细胞培养与转染 | 细胞系(N2a)、培养基(90% DMEM+10% FBS+100U/mL青霉素+100μg/mL链霉素)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、质粒量(3-4.5μg)、siRNA浓度(100nM)、转染时间(48小时) 阅读提示:Materials and Methods, 2.2 Cell culture and transfection |
| 疼痛行为学评估 | 评估时间点(术前1天及术后3,7,10,14,21,28天)、von Frey纤毛强度范围(0.16, 0.4, 0.6, 1.0, 1.4, 2.0g)、每次刺激测试次数(5次)、自发退缩计数时间(2分钟) 阅读提示:Materials and Methods, 2.5 Paw withdrawal mechanical threshold和2.6 Spontaneous flinching test |
| 蛋白检测与相互作用 | 蛋白提取试剂(M-PER)、BCA定量试剂盒、PVDF膜、一抗及稀释比例(如anti-USP48 1:1000, anti-MrgC 1:1000)、IP抗体用量(4μg)、磁珠用量(1:20) 阅读提示:Materials and Methods, 2.8 Western blotting和2.9 Immunoprecipitation |