血管内皮细胞产生凝血因子,通过蛋白酶激活受体和C5a受体1(CD88)联合信号控制其生长

Vascular Endothelial Cells Produce Coagulation Factors That Control Their Growth via Joint Protease-Activated Receptor and C5a Receptor 1 (CD88) Signaling

作者信息Devin Cao, Michael G Strainic, Daniel Counihan, Shiva Sridar, Fengqi An, Wasim Hussain, Alvin H Schmaier, Marvin Nieman, M Edward Medof
PMID35144762
发布时间2022-02
DOI10.1016/j.ajpath.2021.09.011

实验完整度

研究包含体外细胞培养(bEnd.3、HAEC、HUVEC)、体内Matrigel plug血管生成实验、小鼠主动脉环出芽实验、基因敲除小鼠(C5ar1-/-、PAR1-/-、PAR3-/-PAR4-/-)以及多种机制验证(BRET、Co-IP、siRNA敲降、信号通路分析)。

主要模型

bEnd.3小鼠脑内皮细胞系 人主动脉内皮细胞(HAEC) 人脐静脉内皮细胞(HUVEC) 小鼠主动脉环出芽模型 C57BL/6小鼠Matrigel plug血管生成模型

重点核对

EC中凝血因子II、V、VII、X的mRNA和蛋白合成随VEGF-A刺激上调 凝血酶抑制剂(bivalirudin、antithrombin)完全消除VEGF-A诱导的EC增殖 C5ar1和PAR4在EC膜上共定位(BRET、Co-IP、confocal) PAR1和PAR4 siRNA敲降消除了VEGF-A诱导的EC生长 C5ar1-/-、PAR1-/-、PAR3-/-PAR4-/-小鼠主动脉环出芽能力降低

摘要

根据经典观点,凝血系统仅存在于血浆中,以维持止血。本研究使用模拟血管重建的实验方法,表明血管内皮细胞(ECs)在血管生成过程中内源性合成凝血因子。这种合成产生的细胞内凝血酶促进血管内皮细胞生长因子A(VEGF-A)的有丝分裂功能。凝血酶同时裂解EC合成的补体成分C5产生C5a,并暴露EC表达的蛋白酶激活受体4(PAR4)的束缚配体。这两种配体共同触发EC C5a受体1(C5ar1)和PAR4信号传导,两者共同促进VEGF受体2的生长信号传导。C5ar1与PAR4功能相关,使C5a或凝血酶能够引发Gαi和/或Gαq信号传导。EC凝血因子和EC补体成分的合成随接触抑制而同步下调。这些过程与VEGF受体2信号传导的联系为血管生成的机制提供了新的见解。对内源性凝血因子/补体成分合成以及PAR4/C5ar1联合信号传导的了解可应用于其他细胞类型。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
血管内皮细胞是否内源性合成凝血因子,并且这些凝血因子通过与补体系统联合的信号通路参与VEGF-A诱导的血管生成?
核心机制
在增殖的ECs中,VEGF-A上调凝血因子II、V、VII、X的合成,产生凝血酶;凝血酶裂解EC合成的C5产生C5a,并激活PAR1/4;C5a和凝血酶分别通过C5ar1和PAR4信号,两者协同促进VEGFR2信号传导,驱动EC增殖和血管生成。
主要证据
体外:bEnd.3、HAEC、HUVEC细胞增殖实验、凝血实验、ELISA、流式细胞术、Western blot、BRET、Co-IP、siRNA敲降。体内:WT和基因敲除小鼠的主动脉环出芽实验、Matrigel plug血管生成实验。关键结果:凝血酶或C5a单独不足以促进EC生长,两者协同激活C5ar1-PAR4信号是必需的。
研究意义
作者提出,EC内源性合成凝血因子和补体成分,并通过联合PAR4/C5ar1信号促进血管生成,这一机制可能也适用于其他细胞类型,为理解血管生成的调控提供新见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证EC内源性合成凝血因子

确定ECs是否自身合成凝血因子,并确认VEGF-A是否上调其合成

使用bEnd.3和HAEC细胞,在VEGF-A刺激下检测凝血因子II、V、VII、X的mRNA表达(RT-qPCR)和蛋白功能(凝血实验);用灌注的小鼠主动脉和Matrigel plug免疫荧光染色验证体内表达

2

验证凝血酶在EC内生成C5a并参与VEGF-A功能

确定EC产生的凝血酶是否裂解EC合成的C5产生C5a,并参与VEGF-A诱导的EC增殖

用凝血酶抑制剂(bivalirudin或antithrombin)处理EC,检测C5a生成和细胞增殖;通过流式细胞术检测细胞内和细胞外C5a和凝血酶

3

验证C5a和凝血酶协同诱导EC增殖

确定C5a和凝血酶是否单独或协同促进EC增殖

用C5a、凝血酶、PAR1/PAR4激动剂和拮抗剂或siRNA敲降PAR1/4,观察EC增殖

4

验证C5ar1和PAR4在EC中的关联

确定C5ar1和PAR4是否在EC膜上形成复合物并协同信号

通过BRET、共免疫沉淀和共聚焦显微镜检测C5ar1-PAR4相互作用

5

验证联合信号通路(Gαi/Gαq、PI3K、AKT、STAT3)

确定C5ar1-PAR4联合信号如何激活下游信号通路

用C5a、凝血酶或激动剂处理EC,检测PLC、PKA、GSK-3β、STAT3、PI3K亚型的活性

6

验证VEGFR2信号通路激活

确定PAR和C5ar1信号是否通过VEGFR2促进PI3K激活

用PAR1/4激动剂、C5a或VEGF-A处理细胞,免疫沉淀VEGFR2,检测其关联的PI3K活性

7

验证接触抑制对信号的影响

确定EC生长状态(汇合 vs. 非汇合)是否影响凝血因子和补体成分的合成

在70%和100%汇合的HUVEC中检测凝血因子和补体成分的mRNA及蛋白表达

8

体内外血管生成验证

验证联合C5ar1/PAR信号在生理性血管生成中的作用

用WT和基因敲除小鼠的主动脉环进行出芽实验,或在Matrigel plug中检测新生血管

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜尔贝科改良伊格尔培养基----
EBM-2培养基及BulletKitLonza--
胎牛血清----
低生长因子MatrigelCorning--
FII缺陷血浆George King Biomedical--
FV缺陷血浆George King Biomedical--
FVII缺陷血浆George King Biomedical--
FX缺陷血浆George King Biomedical--
Phospoplastin RL试剂R2 Diagnostics--
抗凝血酶----
沃拉帕沙Axon Medchem1755
TFLLRN(PAR1激动剂)Tocris Biosciences1464
AY-NH2(PAR4激动剂)Tocris Biosciences1487
C5a受体拮抗剂,W-54011Calbiochem234415
AS252424(PI-3Kγ抑制剂)Tocris Biosciences3671
SU5416(VEGFR2拮抗剂)Tocris Biosciences3037
靶向人PAR1的siRNAThermoFisherAM16708
靶向人PAR4的siRNAThermoFisher4392420
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂ThermoFisher--
抗FII抗体ThermoFisherPA1-43040
抗FV抗体BiossBs-1040R
抗FVII抗体BiossBs-4846R
抗FX抗体BiossBs-9501R
抗C5aR抗体Santa Cruz BiotechnologiesSC-53795 PE
抗小鼠C5a抗体BD Biosciences558027
抗人C5a抗体R&D SystemsAF2037
抗人凝血酶抗体ThermoFisherHYB 109-04-02
抗PAR1抗体BD Biosciences611522
抗PAR4抗体AbcamAb5787
抗VEGFR2抗体Cell Signalling Technologies2479
GSK-3β活性检测试剂盒Sigma-AldrichCS0990
肝素----
血管内皮生长因子A----
C5a----
凝血酶----
TP508----
林格氏液----
MetaMorph软件Molecular Devices--
Leica DMI6000显微镜Leica--
Leica HyVolution SP8共聚焦显微镜Leica--
Hyugens Professional软件Hilversum--
含DAPI的ProLong Gold防淬灭剂Molecular ProbesP36935
细胞裂解液(10×)Cell Signaling9803
Complete Mini蛋白酶抑制剂片Roche11836153001
蛋白A/G琼脂糖珠Santa Cruz Biotechnology--
腔肠素400aBiotium Inc.--
腔肠素HInvitrogen--
Microsoft Excel----
SigmaPlot----
GraphPad Prism 6GraphPad--
bEnd.3细胞系ATCC--
原代人主动脉内皮细胞(HAECs)ATCC--
HUV-EC-C(HUVECs)ATCC--
293(HEK-293)细胞系ATCC--
C57BL/6小鼠Jackson Laboratories--
C5ar1−/−小鼠C. Gerard, Children's Hospital, Boston, MA--
PAR1−/−小鼠Jackson Laboratories--
PAR3−/−PAR4−/−小鼠Mutant Mouse Resource & Research Centers--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和凝血因子合成检测
细胞类型(bEnd.3、HAEC、HUVEC),血清浓度(0.5% FBS),VEGF-A浓度(30 ng/mL),孵育时间(1小时或72小时),mRNA标准化基因(β-actin或GAPDH)。
阅读提示:Materials and Methods: Growth Assays and Real-Time Quantitative PCR; Figure 1 legends
凝血酶抑制实验
bivalirudin浓度(25 μg/mL),antithrombin浓度(1 μmol/mL),处理时间(72小时),C5a浓度(10 ng/mL)
阅读提示:Materials and Methods: Growth Assays; Figure 2 legends
C5a和PAR信号协同实验
C5a浓度(30 ng/mL或10 ng/mL),凝血酶浓度(1 nmol/mL或1 μmol/mL),vorapaxar浓度(10 ng/mL),TFLLRN浓度(5 μg/mL),TP508浓度(10 μg/mL),处理时间(72小时)
阅读提示:Materials and Methods: Growth Assays; Figure 3 legends
siRNA敲降实验
siRNA浓度(30 nmol/L),处理时间(48小时),敲降验证时间(3和7天),血清饥饿时间(16小时)
阅读提示:Materials and Methods: RNA Interference; Figure 4 legends
C5ar1-PAR4相互作用实验
BRET:HEK293细胞数量(1×10^5),转染DNA量(0.5 μg PAR4-Luc, 0-5 μg C5ar1-GFP)等;Co-IP:抗体类型,蛋白量;Confocal:抗体浓度(2 μg/mL)
阅读提示:Materials and Methods: BRET Data; Co-Immunoprecipitation Assays; Confocal Microscopy; Figure 5 legends
主动脉环出芽实验
小鼠周龄(8-14周),主动脉环制备,Matrigel培养条件,VEGF-A浓度(30 ng/mL),C5ar1-A或antithrombin浓度,出芽时间(6-8天)
阅读提示:Materials and Methods: Sprouting Assay; Figure 7D-F legends
Matrigel plug血管生成实验
Matrigel体积(500 μL),肝素浓度(60 U/mL),VEGF-A浓度(300 ng/mL),植入时间(10天)
阅读提示:Materials and Methods: Matrigel Plug Angiogenesis Assay; Figure 1E legends
信号通路分析
处理时间(5分钟或72小时),抑制剂浓度(AS252424 10 μmol/mL,SU5416 10 μmol/mL),抗体浓度(anti-VEGFR2 0.1 μg/mL等)
阅读提示:Materials and Methods: GSK-3β Assay; Figure 5 and 6 legends