验证VSIG4在肿瘤进展和T细胞免疫中的作用
探究VSIG4是否通过抑制CD8+ T细胞介导的免疫来促进肿瘤生长。
在Vsig4敲除(Vsig4-/-)和野生型小鼠中皮下接种MC38、B16-F10、RM-1和KPC细胞,原位接种KPC细胞,比较肿瘤生长;通过流式细胞术分析肿瘤浸润免疫细胞(尤其是IFN-γ+CD8+ T细胞);进行CD8+ T细胞耗竭实验。
VSIG4 suppresses antitumor T cell immunity via the SLC3A2-dependent metabolic-ionic checkpoint
包含体外T细胞功能与机制实验、动物肿瘤模型(皮下及原位)、人源化模型、单细胞转录组及临床样本分析等多个独立证据层级,并明确进行了功能验证(抗体阻断、基因敲除)和机制验证(受体鉴定、代谢离子通路)。
MC38结肠癌皮下移植模型 KPC胰腺癌原位移植模型 hVSIG4敲入小鼠肿瘤模型 人PBMC重建的NCG小鼠PANC-1移植瘤模型
细胞系和细胞数量:MC38 (1×10^6)、KPC (0.15×10^6或0.3×10^6)等 抗体处理剂量与方案:抗mVSIG4 (#44)或抗hVSIG4 (#88) 200 µg/小鼠腹腔注射 肿瘤接种方式:皮下注射于右胁或原位注射于胰腺尾部 主要终点:肿瘤体积、肿瘤重量、IFN-γ+CD8+ T细胞比例 对照设置:同型对照IgG,以及Vsig4基因敲除或hVSIG4-KI小鼠特异性验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究VSIG4是否通过抑制CD8+ T细胞介导的免疫来促进肿瘤生长。
在Vsig4敲除(Vsig4-/-)和野生型小鼠中皮下接种MC38、B16-F10、RM-1和KPC细胞,原位接种KPC细胞,比较肿瘤生长;通过流式细胞术分析肿瘤浸润免疫细胞(尤其是IFN-γ+CD8+ T细胞);进行CD8+ T细胞耗竭实验。
获得能有效阻断VSIG4并恢复T细胞功能的特异性抗体。
用mVSIG4免疫小鼠,产生杂交瘤,通过流式细胞术筛选结合mVSIG4的克隆;在激活的原代CD4+和CD8+ T细胞中测试阻断mVSIG4-Fc结合和恢复IL-2产生的能力;通过AlphaFold模拟和突变分析验证表位特异性。
确定抗mVSIG4抗体(#44)在体内是否具有抗肿瘤活性。
在皮下MC38、RM-1、B16-F10和原位KPC模型中,用#44抗体或同型对照处理,测量肿瘤体积、重量,并通过流式细胞术分析T细胞功能。
阐明VSIG4阻断逆转免疫抑制性TME的细胞和分子机制。
对KPC肿瘤进行单细胞RNA测序,分析免疫细胞亚群、差异表达基因和通路富集;进行CD8+ T细胞、巨噬细胞(CSF1R)、髓系细胞(Gr-1)和CCL5中和实验,确定效应细胞和分子。
确定抗VSIG4联合化疗(吉西他滨)或抗PD-1是否能增强抗肿瘤疗效。
在KPC原位模型中,单独或联合使用吉西他滨或抗PD-1抗体和#44,测量肿瘤负荷和CD8+ T细胞反应。
确定VSIG4在T细胞上的结合伴侣并验证其功能相关性。
通过免疫共沉淀和质谱鉴定候选受体,发现SLC3A2;在Jurkat细胞中用CRISPR-Cas9敲除SLC3A2,检测VSIG4-Fc对TCR信号和IL-2产生的影响;通过AlphaFold预测结合界面,并通过突变验证关键残基。
揭示VSIG4-SLC3A2相互作用如何通过代谢和离子途径抑制T细胞活化。
在Jurkat细胞中检测VSIG4-Fc对谷氨酰胺摄取、细胞内钠和钙离子通量的影响;在无谷氨酰胺、无钠(NMDG替代)或钙螯合(BAPTA-AM)条件下评估这些影响;在SLC3A2敲除细胞中验证依赖性。
获得靶向人VSIG4的中和抗体并评估其抗肿瘤活性。
用人VSIG4-Fc免疫小鼠,筛选杂交瘤克隆#88,验证其特异性阻断hVSIG4与SLC3A2结合,并恢复T细胞IL-2产生;在hVSIG4-KI小鼠和人类PBMC重建的NCG小鼠模型中评估其抗肿瘤疗效。
评估VSIG4表达在人肿瘤中的预后价值及其与T细胞的空间关系。
分析公开数据库中VSIG4表达和生存数据;通过Western blot检测肺癌组织VSIG4蛋白水平;通过免疫组化检测胰腺癌组织微阵列中的VSIG4表达;通过多重免疫组化观察VSIG4+细胞与CD8+T细胞的空间接触。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | 文中未明确说明 | -- |
| RPMI 1640培养基 | 文中未明确说明 | -- | |
| 胎牛血清 | 文中未明确说明 | -- | |
| 青霉素/链霉素 | 文中未明确说明 | -- | |
| MEM非必需氨基酸 | 文中未明确说明 | -- | |
| L-谷氨酰胺 | 文中未明确说明 | -- | |
| Freestyle 293表达培养基 | 文中未明确说明 | -- | |
| 动物实验 | 基质胶 | Corning | 354234 |
| 抗小鼠VSIG4抗体 (#44) | 文中未明确说明 | -- | |
| 抗人VSIG4抗体 (#88) | 文中未明确说明 | -- | |
| 小鼠/大鼠IgG | Beyotime | A7050/A7052 | |
| 抗PD-1抗体 | Selleck | A2122 | |
| 吉西他滨 | Yuanye | S17132 | |
| 抗CD8抗体 | Selleck | A2102 | |
| 抗CSF1R抗体 | Selleck | A2159 | |
| 抗Gr-1抗体 | Selleck | RB6-8C5 | |
| 抗CCL5抗体 | BioXcell | BE0449 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| 磷酸化蛋白酶抑制剂 | Seven | SW107-02 | |
| 抗ERK1抗体 | Santa Cruz | sc-271269 | |
| 抗磷酸化ERK1/2抗体 | Selleck | F0007 | |
| 抗磷酸化LCK抗体 | Affinity | AF3101 | |
| 抗HSP90抗体 | Santa Cruz | sc-13119 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | ABclonal | AC026 | |
| 抗C3/C3b/C3c抗体 | Proteintech | 21337–1 | |
| 抗GAPDH抗体 | BBI | D190090-0100 | |
| HRP标记的二抗 | 文中未明确说明 | L153, | |
| 增强化学发光检测试剂盒 | bltlux | ECL001 | |
| 单细胞RNA测序 | DNBelab C TaiM4 V3.0平台 | 文中未明确说明 | -- |
| MGI DNBSEQ-T7测序系统 | MGI | -- | |
| 细胞培养 | Rhod-2 AM钙离子荧光探针 | Yeasen | 40776ES50 |
| Pluronic F-127表面活性剂 | Beyotime | ST501 | |
| BAPTA-AM钙螯合剂 | MCE | HY-100545 | |
| N-甲基-D-葡萄糖胺 | Beyotime | ST1551 | |
| SBFI-AM钠离子荧光探针 | Absin | abs42027097 | |
| 谷氨酰胺微量板检测试剂盒 | Cohesion | CAK1206 | |
| ELISA | 小鼠IFN-γ ELISA试剂盒 | BioLegend | 430804 |
| 人IL-2 ELISA试剂盒 | BioLegend | 431804 | |
| 免疫共沉淀 | 重组人SLC3A2-His蛋白 | MCE | HY-P75368 |
| 免疫组化 | 柠檬酸钠溶液 | Solarbio | C1032 |
| 山羊血清 | Solarbio | SL038 | |
| DAB底物试剂盒 | BD Pharmingen | 550880 | |
| DAPI核酸染料 | Solarbio | C0060 | |
| 抗人VSIG4抗体 | Abmart | ME012547S | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | Proteintech | RGAM011 | |
| 抗CD8抗体 | ZSGB-BIO | ZA-0508 | |
| 抗VSIG4抗体 | Abmart | m044899s | |
| 抗SLC3A2抗体 | CST | 13180S | |
| 细胞培养 | 多聚-D-赖氨酸 | Beyotime | ST508 |
| 细胞成像 | Vevo 3100超声成像系统 | Fujifilm Visualsonics/VevoLAZR-X | -- |
| 细胞培养 | Varioskan LUX多功能酶标仪 | Thermo Fisher | -- |
| AlphaFold 3 | 文中未明确说明 | -- | |
| 数据分析 | Prism V.10软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体筛选与验证 | 抗VSIG4抗体克隆的选择标准、中和活性(如阻断VSIG4-Fc结合和恢复IL-2) 阅读提示:Materials and methods: Screening and functional validation of anti-mouse VSIG4 blocking monoclonal antibodies; Results: 对应部分 |
| 肿瘤模型建立 | 细胞系(MC38、KPC等)、细胞数量(1×10^6、0.15×10^6等)、接种方式(皮下或原位)、Matrigel用量(40%) 阅读提示:Materials and methods: Mouse models and treatment; Figure legends for 图1 |
| 抗体治疗 | 抗体类型(#44或#88)、剂量(200 µg/小鼠)、给药途径(腹腔)、给药方案(如每日) 阅读提示:Materials and methods: Mouse models and treatment; Figure legends for 图1、图3、图6 |
| 联合治疗 | 联合用药(吉西他滨50 mg/kg、抗PD-1 100 µg/小鼠)的剂量和方案 阅读提示:Materials and methods: Mouse models and treatment; Figure legends for 图3 |
| 细胞耗竭实验 | 耗竭抗体(抗CD8、抗CSF1R、抗Gr-1、抗CCL5)的剂量和给药时间 阅读提示:Materials and methods: Mouse models and treatment; Figure legends for 图2 |
| 体外T细胞实验 | Jurkat细胞预处理条件(无谷氨酰胺、NMDG、BAPTA-AM浓度)、刺激条件(抗CD3/CD28)、VSIG4-Fc浓度 阅读提示:Materials and methods: ELISA of cytokines, Gln detection, Intracellular Ca2+ flux detection, Intracellular Na+ flux detection; Figure legends for 图4、图5 |
| 受体鉴定 | 免疫共沉淀条件、质谱分析、SLC3A2敲除验证(qPCR、Western blot) 阅读提示:Materials and methods: Coimmunoprecipitation, Lentivirus-mediated gene knockout in Jurkat cells; Results: SLC3A2 is a functional receptor... |
| 临床样本分析 | GEO数据集编号、组织芯片样本数、多重免疫组化染色方案 阅读提示:Materials and methods: Bioinformatics and data mining, Immunohistochemistry and multiplex immunohistochemistry; Figure legends for 图7 |
| 统计分析 | 统计方法(t检验、方差分析)、显著性水平(p<0.05) 阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis |