青光眼小鼠模型的诱导与表型验证
建立与人类POAG病理特征相似的小鼠青光眼模型,并确认IOP升高和神经变性的发生。
使用地塞米松眼周注射诱导GC型青光眼,使用HAd5-Cre注射诱导Tg.Cre-MYOCY437H小鼠的MYOC相关青光眼;监测IOP,并通过RBPMS染色和PPD染色评估RGC存活和轴突变性。
Pharmacological restoration of impaired autophagy in retinal ganglion cells prevents abnormal mitochondrial accumulation and glaucomatous neurodegeneration
包含多种相互独立的证据:两种青光眼小鼠模型、Mt-Keima线粒体自噬报告小鼠、RGC特异性Atg5敲除小鼠及离体人视网膜外植体,涵盖功能验证(PERG、CTB转运)和机制验证(自噬/线粒体自噬标志物)。
糖皮质激素诱导的青光眼小鼠模型(C57BL/6J小鼠,地塞米松眼周注射) Cre诱导的MYOC相关POAG小鼠模型(Tg.Cre-MYOCY437H) Mt-Keima线粒体自噬报告小鼠 离体人视网膜外植体
地塞米松剂量:200 µg/眼,每周一次,持续5或10周 HAd5-Cre注射剂量:2×10⁷ pfu/眼 Torin 2浓度:1 mM(小鼠眼内注射)或100 µM(人视网膜外植体) Atg5敲除时间点:6周 RGC计数标记物:RBPMS
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立与人类POAG病理特征相似的小鼠青光眼模型,并确认IOP升高和神经变性的发生。
使用地塞米松眼周注射诱导GC型青光眼,使用HAd5-Cre注射诱导Tg.Cre-MYOCY437H小鼠的MYOC相关青光眼;监测IOP,并通过RBPMS染色和PPD染色评估RGC存活和轴突变性。
评估青光眼视网膜中是否发生线粒体异常积累以及自噬/线粒体自噬是否受损。
通过TEM观察ON中的线粒体形态和数量;通过免疫染色检测TOM20、8-OHdG、p62、LC3B、LAMP1和phospho-Ub(Ser65)的表达;使用Mt-Keima报告小鼠测量线粒体自噬通量。
验证RGC中自噬的缺失是否足以导致线粒体积累和神经变性,确立因果关系。
通过AAV2-Syn-Cre递送在Atg5flox/flox小鼠RGC中条件性敲除Atg5;通过免疫染色、TEM、PERG和PPD染色评估线粒体积累、RGC功能和轴突完整性。
评估药理学增强自噬是否能防止青光眼小鼠模型和离体人视网膜外植体中的神经变性。
在青光眼小鼠模型中眼内注射Torin 2,评估PERG、RBPMS计数、PPD染色和TEM线粒体形态;在离体人视网膜外植体中进行Torin 2处理,并通过RBPMS计数评估RGC存活。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 青光眼模型诱导 | 地塞米松 | Spectrum | DE121 |
| 药物治疗 | Torin 2 | Millipore Sigma | SML |
| 免疫染色 | RBPMS抗体 | Gene Tex / Invitrogen | 118619 |
| TOMM20抗体 | Santa Cruz / Proteintech | sc-17764 | |
| COX IV抗体 | Proteintech | 11242-1 | |
| 8-OHdG抗体 | Santa Cruz | sc-66036 | |
| p62抗体 | MBL | PM045 | |
| LC3抗体 | Gene Tex | GTX127375 | |
| LC3B (E5Q2K)抗体 | CST | 83506 | |
| LAMP1 (D4O1S)抗体 | CST | 15665 | |
| 磷酸化泛素 (Ser65) (E5T1W)抗体 | CST | 70973 | |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V抗体 | Novus | NBP2-52414 |
| Western blot | GAPDH抗体 | Invitrogen | PA1-987-HRP |
| 轴突运输检测 | 霍乱毒素B | Invitrogen | C34776 |
| 封片 | VECTASHIELD抗淬灭封片剂(含DAPI) | Vector Laboratories | -- |
| 眼压测量 | Tonolab回弹式眼压计 | Colonial Medical Supply | -- |
| PERG测量 | Miami PERG系统 | Jorvec | -- |
| 显微镜 | Keyence荧光显微镜 | Keyence | -- |
| 组织处理 | Eponate-12树脂 | Ted Pella | -- |
| 细胞培养 | Neurobasal A培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| B-27添加剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| N-2添加剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| L-谷氨酰胺 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 图像分析 | ImageJ | -- | -- |
| Fiji | -- | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism v10.0 | -- | -- |
| 科学绘图 | BioRender | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 青光眼模型诱导 | 地塞米松(Dex)剂量:200 µg/眼;注射途径:眼周;频率:每周一次;持续时间:5或10周(部分实验为7周后加用Torin 2再持续3周)。Tg.Cre-MYOCY437H模型:HAd5-Cre或HAd5-empty剂量:2×10⁷ pfu/眼;注射途径:玻璃体腔;监测IOP每周。 阅读提示:Materials and methods: Mouse models of glaucoma; Figure legends 1a, 1i, 4d |
| 线粒体自噬通量测定(Mt-Keima) | Mt-Keima小鼠;地塞米松注射时间点:5周和10周;ON组织立即封片;共聚焦激发波长:458 nm(绿)和561 nm(红);计算红/绿荧光面积比。 阅读提示:Materials and methods: Analysis of ex vivo mitophagy flux; Figure legends 2c-e |
| RGC特异性Atg5敲除 | Atg5flox/flox小鼠;AAV2-Syn-Cre或AAV2-Syn-empty注射剂量:1.67E+13 VG/mL;注射途径:玻璃体腔;注射后观察时间:6周;验证AAV2-Syn的RGC特异性(GFP共标RBPMS,转导效率87%)。 阅读提示:Materials and methods: Adeno-Associated Viral 2 (AAV2) vector injections; Figure legends 3a-b |
| Torin 2治疗 | 小鼠:Torin 2浓度:1 mM(溶于DMSO);注射途径:玻璃体腔;注射时机:IOP升高7周后;评估时间点:注射后3周(总10周);人视网膜外植体:Torin 2浓度:100 µM;处理时间:7天(营养因子剥夺);TORIN 2效果验证:Mt-Keima小鼠注射后24小时测通量;Western blot检测p62水平。 阅读提示:Materials and methods: Treatment of mice with Torin 2; Ex vivo culture of human axotomized retinal explants; Figure legends 4a-d, 4o-p; Figure S4i-j |
| RGC功能评估 | PERG:使用Miami PERG系统;麻醉:ketamine/xylazine (100/10 mg/kg);电极放置:snout(active)、head(reference)、tail(ground);记录P1-N2振幅。CTB转运:玻璃体腔注射CTB;48小时后脑背侧成像观察上丘。 阅读提示:Materials and methods: Pattern electroretinography (PERG); Treatment of mice with Torin 2; Figure legends 4e-f |