运动通过增加肌肉来源的L-β-氨基异丁酸分泌抑制破骨细胞生成

Exercise suppresses osteoclastogenesis by increasing the secretion of muscle-derived L-β-aminoisobutyric acid

作者信息Zhi-Wei Huang, Yong-Peng Yu, Xin-Rong He, Yun-Biao Chen, Xin Xiang, Hong-Zhou Li, Zhi-Hai Cai, Jia-Yi Zhang, Di-Zheng Wu, Guo-Zheng Zhu, Jia-Wen Gao, Gui-Xing Cai, Sheng Yang, Chen Tu, Zhao-Ming Zhong
PMID40789518
发布时间2025-08-09
DOI10.1016/j.jshs.2025.101077

实验完整度

包含OVX小鼠运动模型和药物干预的体内实验,以及BMMs、MuSCs、PBMCs的体外实验,RNA-seq和机制验证,并有人体临床样本相关性分析。

主要模型

OVX小鼠模型 骨髓来源巨噬细胞 肌肉卫星细胞 人外周血单个核细胞(PMOP女性)

重点核对

OVX小鼠8周跑步机运动(12 m/min,1 h/天,5天/周)或L-BAIBA灌胃(150 mg/kg/天) BMMs破骨诱导条件:50 ng/mL M-CSF和100 ng/mL RANKL L-BAIBA体外处理:60 μM siSlc6a6敲低序列 患者分组标准(NBM、ON、OP)基于DXA T值

摘要

运动是应对绝经后骨质疏松症(PMOP)个体骨丢失的关键策略。L-β-氨基异丁酸(L-BAIBA)是一种运动反应性肌因子,在体力活动期间分泌水平升高。然而,运动诱导的L-BAIBA分泌在PMOP中的作用仍不清楚。在本研究中,我们旨在利用去卵巢(OVX)小鼠运动诱导模型评估L-BAIBA缓解骨丢失的治疗效果。方法:建立OVX小鼠模型模拟PMOP。分离并培养原代骨髓来源巨噬细胞、小鼠肌肉卫星细胞(MuSCs)和人外周血单个核细胞。我们假设运动诱导的L-BAIBA释放通过抑制破骨细胞生成来减轻PMOP。为验证这一假设,我们进行了以下实验:(a)测量OVX小鼠在8周跑步机运动后血浆L-BAIBA浓度、股骨形态和生物力学性能以及骨吸收标志物,并使用拉伸的原代MuSCs的条件共培养评估体外破骨细胞诱导;(b)对OVX小鼠每天给予L-BAIBA(150 mg/kg)8周后重复相同测量;(c)研究L-BAIBA作用相关的分子信号通路;(d)检查PMOP女性血浆L-BAIBA浓度与骨矿物质密度(BMD)之间的相关性。结果:运动增加了L-BAIBA分泌,抑制了OVX小鼠的破骨细胞生成并减少了骨丢失。L-BAIBA补充在体内和体外均同样抑制破骨细胞生成。机制上,L-BAIBA通过牛磺酸转运体溶质载体家族6成员6(SLC6A6)发挥作用,下调磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)/丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(AKT)/核因子κB(NF-κB)信号,并激活核因子E2相关因子2(NRF2)抗氧化系统。PMOP女性的L-BAIBA水平显著降低,并与BMD呈正相关。结论:运动通过增强L-BAIBA分泌来抑制破骨细胞生成。这些发现为运动骨骼益处的机制提供了新见解,并强调了L-BAIBA作为治疗PMOP的新型药物的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
运动诱导的L-BAIBA分泌在绝经后骨质疏松症中是否具有治疗作用及其潜在机制是什么?
核心机制
L-BAIBA通过SLC6A6受体下调PI3K/AKT/NF-κB信号通路,并激活NRF2抗氧化系统,从而抑制破骨细胞生成。
主要证据
体内实验显示运动或L-BAIBA补充(150 mg/kg/天)减少OVX小鼠骨丢失和骨吸收;体外实验显示L-BAIBA抑制BMMs和PBMCs的破骨细胞分化;siSlc6a6敲低逆转L-BAIBA的抑制作用;RNA-seq和western blot显示PI3K/AKT/NF-κB通路抑制和NRF2激活。
研究意义
研究揭示了运动骨骼益处的机制,并强调L-BAIBA作为治疗PMOP的新型药物的潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内运动模型建立与效应评估

明确运动是否能升高血浆L-BAIBA并改善OVX小鼠骨丢失

对OVX小鼠进行8周跑步机运动,检测血浆L-BAIBA、股骨微结构、生物力学和骨吸收标志物。

2

L-BAIBA补充治疗OVX小鼠

验证外源性L-BAIBA是否能模拟运动效应,抑制破骨细胞生成和骨丢失

OVX小鼠每日灌胃L-BAIBA(150 mg/kg/天)8周,评估骨微结构、生物力学、骨吸收标志物和组织学。

3

离体肌肉拉伸实验模拟运动

验证机械拉伸能否刺激MuSCs分泌L-BAIBA并抑制破骨细胞生成

分离并培养MuSCs,施加机械拉伸,收集条件培养基处理BMMs,检测破骨细胞生成。

4

体外破骨细胞分化及功能分析

评估L-BAIBA对破骨细胞分化、成熟和功能的影响

用RANKL和M-CSF诱导BMMs或PBMCs破骨生成,不同浓度或时间窗的L-BAIBA处理,检测TRAP阳性细胞、F-actin环、骨吸收陷窝及标志基因/蛋白表达。

5

受体鉴定与信号通路机制研究

确定L-BAIBA的功能受体及其下游信号机制

通过siRNA敲低Slc6a6,检测对L-BAIBA抑制破骨生成的影响;通过RNA-seq和western blot分析PI3K/AKT/NF-κB通路。

6

氧化应激与NRF2通路分析

探讨L-BAIBA是否通过激活NRF2抗氧化系统降低ROS积累

检测L-BAIBA处理后BMMs的ROS水平、线粒体膜电位、NRF2核转位及下游抗氧化基因表达。

7

临床样本相关性分析

评估PMOP患者血浆L-BAIBA水平与骨密度的关系

收集46名绝经后女性的血浆,检测L-BAIBA浓度并与BMD、T值等指标进行相关性分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
L-β-氨基异丁酸GlpBioGC30148
SOLA WAX固相萃取小柱Thermo Fisher Scientific60409-005
Hypersil Gold色谱柱Thermo Fisher Scientific--
Q Exactive HF-X质谱仪Thermo Fisher Scientific--
甲酸MacklinF809712
MacklinW820536
甲醇MacklinM813907
乙酸铵MacklinA801000
动物跑步机Chengdu Techman Software CompanyFT-200
异氟烷RWDR510-22-16
磷酸盐缓冲液Thermo Fisher Scientific10010023
α-MEM培养基Thermo Fisher Scientific12492013
胎牛血清Thermo Fisher Scientific10091148
巨噬细胞集落刺激因子PEPROTECH315-02
核因子κB受体活化因子配体Abcamab129136
RPMI-1640培养基Thermo Fisher ScientificC22400500CP
巨噬细胞集落刺激因子NovoproteinC417
核因子κB受体活化因子配体NovoproteinCK63
胶原酶ISigma-AldrichC0130
基质胶AbsinABS9491
DMEM培养基Thermo Fisher ScientificC11995500BT
马血清Procell164215
鸡胚提取物Gemini Bio100-163P
碱性成纤维细胞生长因子MedChemExpressHY-P7066
TRAP染色试剂盒Sigma-Aldrich387A
罗丹明-鬼笔环肽Abcamab205
4',6-二脒基-2-苯基吲哚Abcamab104139
Lipofectamine 3000转染试剂InvitrogenL3000015
Opti-MEM减血清培养基Thermo Fisher Scientific31985070
TRIzol试剂Invitrogen15596026
Illumina HiSeq4000测序仪Illumina--
ACP5 ELISA试剂盒biorbytorb775322
CTX-1 ELISA试剂盒Jiangsu Meimian IndustrialMM-47165M2
Ficoll分离液SolarbioP9011
K2EDTA采血管BD Biosciences367863
磷酸盐缓冲液KeygenBioTECHKGL2206
红细胞裂解液KeygenBioTECHKGB5201
细胞筛网BD Biosciences352360
SkyScan1176微型CTBruker--
CTAn软件Bruker--
CTVox软件Bruker--
GraphPad Prism软件GraphPad--
R软件R Foundation for Statistical Computing--
ComplexHeatmap包----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型与分组
小鼠品系、性别、年龄(C57BL/6J雌性,6-8周龄),OVX或假手术,分组方案(Sham-rest、Sham-exercise、OVX-rest、OVX-exercise、Sham+PBS、Sham+L-BAIBA、OVX+PBS、OVX+L-BAIBA),每组样本量n=8
阅读提示:Methods 2.1、2.5
运动方案
跑步机速度(12 m/min)、时间(1 h/天)、频率(5天/周)、持续时间(8周)、适应期(8 m/min,15 min/天,2天)
阅读提示:Methods 2.4
L-BAIBA给药
给药剂量(150 mg/kg/天)、给药途径(口服灌胃)、溶剂(水)、对照组(PBS)、持续时间(8周)
阅读提示:Methods 2.5
BMMs细胞培养与破骨诱导
小鼠品系和年龄(OVX C57BL/6J,14-16周)、培养基(α-MEM+10% FBS)、M-CSF浓度(50 ng/mL)、RANKL浓度(100 ng/mL)、诱导时间(3-7天)
阅读提示:Methods 2.7
PBMCs细胞培养与破骨诱导
临床样本来源(PMOP女性),Ficoll分离,RPMI-1640+10% FBS,M-CSF(50 ng/mL),RANKL(100 ng/mL)
阅读提示:Methods 2.8
MuSCs拉伸实验
肌肉类型(趾长伸肌)、消化条件(2 μg/mL collagenase I,2 h)、培养基(DMEM+20% FBS+10% 马血清+1%鸡胚提取物+1×bFGF),拉伸条件(文中未明确说明具体参数)
阅读提示:Methods 2.9、Supplementary materials
L-BAIBA体外处理
处理浓度(60 μM)、处理时长(3天)、与RANKL共处理
阅读提示:Methods 2.16、Results 3.4
micro-CT参数
扫描电压(80 kV)、层厚(10 μm)、电流(313 μA),ROI定义(从次级骨化中心消失平面起向上100层),测量参数(BMD、BV/TV、Tb.N、Tb.Sp、Tb.Th、SMI)
阅读提示:Methods 2.10
三点弯曲测试参数
跨距(10 mm)、加载速度(2 mm/min)、载荷-位移曲线记录
阅读提示:Methods 2.11
ELISA检测
检测血浆ACP5和CTX-1,试剂盒来源(biorbyt和Meimian)
阅读提示:Methods 2.12
临床样本入选标准
年龄50-75岁,绝经≥2年,缺乏运动(近3个月中等强度运动<2小时/周),排除服用抗骨质疏松药物等
阅读提示:Methods 2.2