临床队列与样本收集
收集并分析iCCA患者组织、血液样本,用于后续免疫组化和流式分析。
收集103例手术切除的iCCA患者的肿瘤、瘤周和远端无瘤组织以及外周血,进行IHC和流式细胞术分析;另收集21例晚期iCCA患者接受durvalumab-gemcitabine-cisplatin治疗前后的外周血。
Immunosuppressive contribution of tumour-infiltrating B cells in human intrahepatic cholangiocarcinoma and their role in chemoimmunotherapy outcome
研究包含患者样本(103例手术队列、21例免疫治疗队列)的组织学与流式分析,单细胞转录组与公共数据交互分析,原代细胞共培养功能实验,以及细胞因子阻断验证,多个独立证据层级(体外功能、患者样本、组学数据)并包含机制验证。
人肝内胆管癌组织样本(肿瘤、瘤周、无瘤肝组织) 原代人肝内胆管癌细胞系(原代细胞) 原代癌症相关成纤维细胞(CAFs) 健康供体外周血来源的初始B细胞
患者队列:治疗初治手术切除iCCA患者(n=103)用于IHC分析;19例用于多色流式;21例晚期iCCA接受durvalumab-gemcitabine-cisplatin治疗,按6个月疾病状态分为应答者(n=10)与非应答者(n=11) 关键处理:共培养实验使用来自iCCA组织的原代肿瘤细胞或CAFs与健康供体初始B细胞共培养6天,使用transwell系统和直接共培养 细胞因子阻断:使用TGF-βR1/2抑制剂LY2109761和IL-6R抗体托珠单抗(tocilizumab)处理共培养体系 检测指标:B细胞亚群(PhenoGraph聚类)、分化标志物(BAFFR、CD27等)、免疫球蛋白同型(IgM、IgG亚类等)、细胞因子表达(IL-10、TGF-β、IL-6等) 统计设计:Kaplan-Meier生存分析(DFS、OS、PFS)、Mann-Whitney U检验、ANOVA检验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
收集并分析iCCA患者组织、血液样本,用于后续免疫组化和流式分析。
收集103例手术切除的iCCA患者的肿瘤、瘤周和远端无瘤组织以及外周血,进行IHC和流式细胞术分析;另收集21例晚期iCCA患者接受durvalumab-gemcitabine-cisplatin治疗前后的外周血。
评估CD20+B细胞密度和TLS成熟状态与预后的关系。
对组织切片进行单染和双染IHC(CD3、CD20),按B细胞占TILs比例分为高(≥30%)和低(<30%)组;分类iTLS和mTLS并分析与DFS的关系。
鉴定肿瘤与瘤周B细胞的转录组差异和功能状态。
利用已有scRNA-seq数据(GSE171899)提取CD45+细胞中的B细胞(CD79A、MS4A1),进行亚聚类分析,鉴定4个B细胞簇;使用GSEA比较肿瘤与正常组织的通路富集。
系统描述iCCA不同组织部位和外周血中B细胞亚群的组成和表型。
使用包含15个B细胞亚群的Panel对19例患者的肿瘤(T)、瘤周(PT)、无瘤肝(NT)、肝内血(IHB)和外周血(PB)进行流式分析,通过PhenoGraph聚类识别亚群。
评估iCCA患者B细胞的功能状态,包括抗体产生和细胞因子表达。
用多重免疫分析测定血浆中免疫球蛋白同型水平(n=26 iCCA,n=10 HD);用RT-qPCR分析分选的肿瘤内和瘤周B细胞中细胞因子转录本(IL-10、TGF-β、IL-6等)。
预测B细胞与CAFs和肿瘤细胞之间的配体-受体相互作用。
使用CellPhoneDB分析公共scRNA-seq数据集(HRA000863),识别B细胞与其他细胞类型之间的相互作用,特别关注与CAFs的通信。
验证肿瘤细胞和CAFs对B细胞分化、活化表型的影响及其分子机制。
将从健康供体PB分选的初始B细胞(CD19+CD27−IgD+)与原代iCCA细胞或CAFs共培养(直接或transwell),6天后通过流式分析B细胞亚群和标志物,RT-qPCR检测细胞因子表达,ELISA检测上清细胞因子。
验证IL-6和TGF-β在B细胞功能障碍中的作用,并评估阻断是否能恢复B细胞功能。
在transwell共培养中,加入抗IL-6R(tocilizumab)和TGF-βR抑制剂(LY2109761)单独或联合处理,6天后检测B细胞分化标志物、细胞因子表达。
评估循环B细胞表型与克隆动态是否可预测晚期iCCA患者对化学免疫治疗的反应。
对21例接受durvalumab-gemcitabine-cisplatin治疗的患者,在基线及治疗期间多个时间点收集PBMC,进行流式分析B细胞亚群,通过BCR测序分析克隆型;评估BAFFR+ B细胞频率与生存期的关联。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 流式细胞术 | Zombie Aqua荧光染料 | BioLegend | -- |
| FACS-Symphony A5流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| BD补偿微球 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞培养 | 胎牛血清 | -- | -- |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 细胞因子阻断 | LY2109761 | -- | -- |
| 托珠单抗 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| IHC分析 | CD20+B细胞密度阈值:高≥30%,低<30%;成熟TLS(mTLS)定义:≥75%的TLS为成熟型;患者队列:n=103 阅读提示:Results 'Prognostic value of B cells and TLSs in iCCA' 及 Figure 1 图注 |
| scRNA-seq分析 | B细胞提取使用的marker基因(CD79A, MS4A1);分析样本:6例配对肿瘤与邻近非肿瘤组织;公共数据GSE171899 阅读提示:Results 'scRNA-seq reveals tumour-specific differences in gene expression by B-cell subpopulations' 及 Figure 2 图注 |
| 高维流式细胞术 | 抗体panel列表(在线补充表2);样本来源:肿瘤、瘤周、无瘤肝、肝内血和外周血(n=19);PhenoGraph聚类参数 阅读提示:Materials and methods 'Polychromatic flow cytometry'、Figure 3 图注及在线补充材料 |
| 体外共培养实验 | B细胞:健康供体外周血初始B细胞(CD19+CD27−IgD+)分选;效应细胞:原代iCCA细胞或CAFs;共培养时间:6天;共培养方式:直接和transwell;阻断剂:tocilizumab(IL-6R)和/或LY2109761(TGF-βR) 阅读提示:Results 'ICCA cells and CAFs affect B cell polarisation and activation state'、Figure 5E–I 及在线补充材料 |
| 免疫治疗队列分析 | 治疗:durvalumab-gemcitabine-cisplatin;患者分组:应答者(CR/PR/SD)vs 非应答者(PD)按6个月状态;流式时间点:基线及多个时间点;BCR测序:基线及C2D1,受试者n=8 阅读提示:Results 'Single-cell phenotypic profiling of circulating B cells in patients treated with ICIs' 及 Figure 6 图注 |