糖尿病模型建立与miR-181c-5p抑制
建立糖尿病动物模型并验证miR-181c-5p的敲低效果
使用链脲佐菌素诱导糖尿病小鼠,并通过肌内或皮内注射anti–miR-181c-5p抑制miR-181c-5p,确认组织中的下调。
Inhibition of miR-181c-5p Rescues Diabetes-Impaired Angiogenesis in Ischemia and Wound Healing
包含两种体内手术模型(后肢缺血和伤口愈合)、体外内皮细胞功能及机制实验、转录组测序和荧光素酶报告基因验证,具有多层次功能与机制验证。
链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠后肢缺血模型 糖尿病小鼠伤口愈合模型 人冠状动脉内皮细胞(HCAECs)高糖培养
anti–miR-181c-5p抑制剂的剂量(50 µg,肌内或皮内注射) 糖尿病诱导的链脲佐菌素剂量(165 µg/g)和血糖阈值(>15 mmol/L) 高糖处理浓度(25 mmol/L)和时长(48小时) 内皮细胞管形成和迁移实验的细胞接种密度及时间 Western blot检测的蛋白磷酸化位点(ERK2 Thr202/Tyr204等)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立糖尿病动物模型并验证miR-181c-5p的敲低效果
使用链脲佐菌素诱导糖尿病小鼠,并通过肌内或皮内注射anti–miR-181c-5p抑制miR-181c-5p,确认组织中的下调。
评估miR-181c-5p抑制对糖尿病受损血管生成和愈合的影响
在后肢缺血模型中通过激光多普勒成像监测血流再灌注,并量化毛细血管和小动脉密度;在伤口模型测量伤口闭合率和血管密度。
在高糖条件下验证miR-181c-5p抑制对内皮功能的影响并初步探索机制
用anti–miR-181c-5p转染HCAECs,进行成管、迁移和线粒体生物合成测定,并检测相关蛋白表达。
鉴定miR-181c-5p抑制后变化的基因和信号通路,并验证直接靶点
对处理后的HCAECs进行RNA测序,分析差异表达基因和通路,并在体内验证候选基因。用荧光素酶报告基因检测miR-181c-5p对3'UTR的直接结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| miRNA抑制 | miRCURY LNA miRNA Power抑制剂 | QIAGEN | 339204 YCI0201911-FZB |
| miRNA抑制(对照) | 非靶向对照抑制剂 | QIAGEN | 339204 YCI0201588-FZB |
| 后肢缺血模型 | 激光多普勒成像仪 | Moor Instruments | moorLDI2-IR |
| 免疫荧光 | CD31抗体 | Abcam | ab28364 |
| α-SMA抗体 | Sigma-Aldrich | F3777 | |
| 层粘连蛋白抗体 | Millipore | MAB1905 | |
| TUNEL原位细胞死亡检测试剂盒 | Merck | 1684795910 | |
| 蔡司AxioScan.Z1数字切片扫描仪 | Carl Zeiss AG | -- | |
| 免疫组织化学 | CD31抗体 | Abcam | ab28364 |
| α-SMA抗体 | Sigma-Aldrich | A5691 | |
| NanoZoomer 2.0-HT切片扫描仪 | Hamamatsu Photonics | -- | |
| 细胞培养 | 人冠状动脉内皮细胞 | Cell Applications | -- |
| MesoEndo培养基 | Cell Applications | -- | |
| 蛋白表达 | VEGFA重组蛋白 | R&D Systems | RDS293VE010 |
| 磷酸化ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 总ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9102 | |
| VEGFA抗体 | Abcam | ab46154 | |
| 磷酸化VEGFR2抗体 | Cell Signaling Technology | 2478 | |
| 总VEGFR2抗体 | Cell Signaling Technology | 2479 | |
| 磷酸化eNOS抗体 | BD Biosciences | 612393 | |
| 总eNOS抗体 | BD Biosciences | 610297 | |
| α-微管蛋白抗体 | Abcam | ab40742 | |
| 成管实验 | 基质胶 | Corning | -- |
| 迁移实验 | Transwell Boyden小室 | Corning | -- |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| DAPI染色液 | -- | -- | |
| 线粒体生物合成 | MitoBiogenesis细胞内ELISA试剂盒 | Abcam | ab110217 |
| RNA测序 | KAPA mRNA HyperPrep试剂盒 | Roche | KK8581 |
| Illumina HiSeq X10测序仪 | Illumina | -- | |
| bcl2fastq软件 | Illumina | -- | |
| 荧光素酶报告基因实验 | HEK293细胞 | -- | -- |
| pEZX-MT05荧光素酶载体 | GeneCopoeia | HmiT162768-MT05, HmiT159281-MT05, HmiT148551-MT05, HmiT167809-MT05 | |
| miRvana miRNA模拟物 | Thermo Fisher Scientific | 4464066 | |
| 阴性对照模拟物 | Thermo Fisher Scientific | 4464076 | |
| Secrete-Pair双荧光素酶检测试剂盒 | GeneCopoeia | LF032 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、糖尿病诱导剂量、血糖阈值、禁食血糖监测 阅读提示:Methods'Animals'部分 |
| miRNA抑制 | 抑制剂名称、剂量、注射方式、注射时间点 阅读提示:Methods'miR-181c-5p Inhibition'部分 |
| 后肢缺血模型 | 手术细节(结扎动脉)、缺血监测时间点、组织采集时间点 阅读提示:Methods'Hindlimb Ischemia Model'部分 |
| 伤口愈合模型 | 伤口大小、固定方法、剂量、监测频率 阅读提示:Methods'WH Model'部分 |
| 细胞治疗 | 细胞类型、代数、转染浓度和时间、葡萄糖浓度和处理时长 阅读提示:Methods'Cell Culture'部分 |
| 体外功能实验 | 成管和迁移实验的细胞密度、基质胶和血清处理 阅读提示:Methods'Matrigel Tubulogenesis Assay'和'Boyden Chamber Migration Assay'部分 |
| 分子机制实验 | Western blot抗体信息、qPCR引物序列、荧光素酶报告基因载体 阅读提示:Methods'Protein Expression'和'3′ Untranslated Region Luciferase Reporter Assay'部分 |