异土木香内酯通过靶向硒蛋白TXNRD1诱导AML焦亡并增强α-PD-1疗效

Isoalantolactone induces AML pyroptosis and potentiates α-PD-1 efficacy by targeting selenoprotein TXNRD1

作者信息Xiaoxuan Yu, Yanyu Zhou, Shibo Sun, Lu Tang, Wan Zhang, Jianqiang Xu, Wukun Liu
PMID42039266
发布时间2026-04
DOI10.1016/j.apsb.2025.12.040

实验完整度

包含体外细胞实验、多种动物模型(PDX、同种移植瘤、CDX)以及临床样本分析,并通过CETSA、ITC、LC-MS/MS和位点突变进行了靶点验证和机制验证。

主要模型

THP-1人AML细胞系 C1498小鼠AML细胞系 患者来源的原代AML细胞 NOD/SCID小鼠PDX模型 C57BL/6小鼠同种移植瘤模型 C57BL/6小鼠CDX模型

重点核对

IAL对TXNRD1的抑制活性及不可逆结合 IAL与TXNRD1 Sec498残基的共价结合 TXNRD1敲低对THP-1细胞增殖的影响 IA联合抗PD-1治疗在C57BL/6小鼠中的疗效 IAL处理对AML细胞PD-L1表达的影响

摘要

AML的抑制性微环境限制了抗PD-1的疗效,使得诱导焦亡成为重塑该微环境的关键策略。本文鉴定出天然小分子异土木香内酯(IAL)可抑制胞质硫氧还蛋白还原酶1(TXNRD1)并触发AML细胞焦亡,从而增强抗PD-1抗体疗法的疗效。机制上,IAL的α,β-不饱和羰基通过Michael加成反应共价结合TXNRD1第498位硒代半胱氨酸残基(Sec498)。临床样本分析显示,TXNRD1在AML中过表达,并与不良预后相关。此外,我们发现有报道TXNRD抑制剂金诺芬(auranofin)对AML具有良好的疗效。抑制TXNRD1可激活转录因子过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ),进而上调caspase-3的转录,随后增加gasdermin E的切割,通过非经典途径诱导AML细胞焦亡。此外,增强的caspase-3活性促进poly ADP-ribose polymerase 1(PARP-1)的切割并上调PD-L1表达,从而增加对抗PD-1单克隆抗体的敏感性。总之,本研究强调了一种通过靶向TXNRD1诱导焦亡并改善免疫抑制微环境来增强AML抗PD-1单克隆抗体治疗的潜在方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
异土木香内酯(IAL)能否通过靶向TXNRD1诱导AML细胞焦亡,并增强抗PD-1疗法的疗效?
核心机制
IAL通过Michael加成反应共价结合TXNRD1的Sec498残基,抑制其活性,进而激活PPARγ,上调caspase-3转录,增强GSDME切割,通过非经典途径诱导AML细胞焦亡;同时,caspase-3活性增强促进PARP-1切割并上调PD-L1表达,从而增强对抗PD-1抗体的敏感性。
主要证据
通过ITC、CETSA、LC-MS/MS和位点突变实验证实IAL直接靶向TXNRD1 Sec498;体外实验显示IAL诱导THP-1细胞焦亡并上调PD-L1;在PDX、同种移植瘤和CDX模型中,IAL抑制肿瘤生长、延长生存期,并增强抗PD-1疗效,伴随CD4+和CD8+ T细胞增加及MDSC减少。
研究意义
本研究揭示了通过靶向TXNRD1诱导焦亡以重塑免疫抑制微环境,从而增强AML抗PD-1单克隆抗体疗效的潜在策略,并确立了IAL作为TXNRD1抑制的先导分子模板。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外药效评估

评估IAL对AML细胞的细胞毒性作用及其与氧化应激的关系

使用THP-1细胞,通过CCK-8 assay检测IAL处理后细胞活力和IC50值;使用DCFH-DA探针检测IAL处理后ROS水平;使用NAC预处理验证ROS的介导作用。

2

焦亡表型鉴定

验证IAL是否会诱导AML细胞发生焦亡,并初步探究其分子途径

通过光学显微镜和扫描电子显微镜观察细胞形态变化;通过Western blot检测cleaved-caspase-3和GSDME-NT的表达水平。

3

靶点鉴定与验证

确定IAL的直接分子靶点及其结合方式

通过ITC测定IAL与TXNRD1的结合亲和力;通过CETSA验证细胞内结合;通过DTNB还原实验测定酶活性;通过脱盐实验验证不可逆性;通过LC-MS/MS鉴定结合位点;通过点突变验证Sec498的关键作用。

4

作用机制解析

探究TXNRD1抑制后诱导焦亡的下游信号通路

通过RNA-seq分析AF处理后的转录组变化;通过Western blot检测PPARα、PPARβ、PPARγ的表达;通过免疫荧光检测PPARγ的核转位;使用GW9662抑制PPARγ验证其介导作用。

5

体内疗效评估

评估IAL在体内对AML的治疗效果及其对免疫微环境的影响

建立PDX、同种移植瘤和CDX小鼠模型,分别给予IAL、AF、DOX或联合抗PD-1抗体处理,监测肿瘤负荷、生存期、脾重,并通过流式细胞术和IHC分析免疫细胞变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
异土木香内酯Shanghai yuanye Bio-Technology Co., Ltd.--
FITC标记的抗人CD45抗体Thermo Fisher ScientificMHCD4501
TXNRD1活性检测试剂盒Solarbio Corp.--
ROS检测试剂盒 (DCFH-DA)Solarbio Corp.3130
RPMI-1640培养基GIBCO--
胎牛血清Life-iLab--
淋巴细胞-单核细胞分离液Jingmei--
Hyper传感器变体----
金诺芬----
多柔比星----
抗PD-1抗体----
Trizol™试剂Yeasen--
RIPA裂解液ThermoFisher89901
BCA蛋白定量试剂盒ThermoFisher23227
增强化学发光检测系统YEASEN36222ES60
GAPDH抗体CSTD16H11
Caspase-3抗体AbclonalA11319
cleaved-Caspase-3抗体abcamab198447
PPARα抗体AbclonalA6697
PPARβ抗体Biorbytorb1089300
PPARγ抗体AbclonalA0270
GSDME抗体Abcamab215191
PD-L1抗体AbclonalA19135
N-乙酰-L-半胱氨酸----
DTNB----
NADPH----
谷胱甘肽----
Hypersil GOLD™ C18色谱柱ThermoFisher Scientific--
UPLC-Q-Exactive Orbitrap质谱仪Thermo Fisher--
NAP-5™脱盐柱Cytiva--
二硫苏糖醇----
蛋白酶抑制剂----
Triton X-100----
牛血清白蛋白----
CD4抗体----
CD8抗体----
Gr-1抗体----
HRP标记的二抗----
植物血凝素-P----
Jurkat-T细胞----
Leica SP8共聚焦激光扫描显微镜Leica--
Leica DMi8Leica--
SpectraMax ABS酶标仪Molecular Devices--
NANO ITC----
FlowJo----
Prism 8GraphPad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外细胞实验
细胞系:THP-1和C1498;培养条件:RPMI-1640培养基,10% FBS,100 U/mL青霉素-链霉素,37°C,5% CO2
阅读提示:看2.2节,细胞培养条件需严格按照描述进行。
靶点验证实验
IAL与TXNRD1结合的Kd值:8.392 × 10^-8 mol/L
阅读提示:看3.3节,需要精准的ITC实验数据。
体外药效实验
IAL对THP-1细胞的IC50值:17.56 ± 3.14 μmol/L
阅读提示:看3.1节,确保使用同样的处理时间(24小时)和检测方法(CCK-8)。
体内动物模型
PDX模型:NOD/SCID小鼠,1×10^7原代AML细胞/只,尾静脉注射;同种移植瘤模型:C57BL/6小鼠,5×10^6 Luc-C1498细胞/只,尾静脉注射;CDX模型:C57BL/6小鼠,5×10^6 C1498细胞/只,皮下接种
阅读提示:看2.4节,需严格按照描述建立模型。
体内给药方案
IAL剂量:30 mg/kg;AF剂量:5 mg/kg;DOX剂量:1.25 mg/kg;给药方式:腹腔注射,隔天一次,两周
阅读提示:看2.4节,确保给药剂量和方式一致。