抗LAG-3和抗PD-1联合治疗黑色素瘤患者的单细胞特征分析

Single-cell characterization of anti-LAG-3 and anti-PD-1 combination treatment in patients with melanoma

作者信息Jani Huuhtanen, Henna Kasanen, Katriina Peltola, Tapio Lönnberg, Virpi Glumoff, Oscar Brück, Olli Dufva, Karita Peltonen, Johanna Vikkula, Emmi Jokinen, Mette Ilander, Moon Hee Lee, Siru Mäkelä, Marta Nyakas, Bin Li, Micaela Hernberg, Petri Bono, Harri Lähdesmäki, Anna Kreutzman, Satu Mustjoki
PMID36719749
发布时间2023-03-15
DOI10.1172/JCI164809

实验完整度

包含至少两个独立证据层级:体外模型(K562细胞刺激、Treg抑制试验)、患者样本(外周血、血清),并包含功能验证(脱颗粒、细胞因子分泌)和机制验证(RNA velocity、CellPhoneDB等),符合高等级标准。

主要模型

转移性黑色素瘤患者外周血样本 K562细胞系 Tregs与效应T细胞共培养模型 scRNA+TCRαβ-Seq数据队列

重点核对

患者免疫治疗状态(IO naive vs. IO refractory) 应答状态(CR/PR vs. SD/PD) 治疗时间点(基线、1个月、3个月) CMV血清状态 LAG-3、PD-1等免疫检查点表达

摘要

背景 Relatlimab联合nivolumab(抗淋巴细胞活化基因3加抗程序性死亡1 [抗LAG-3+抗PD-1])已被FDA批准作为III/IV期黑色素瘤的一线治疗,但其对免疫系统的详细影响尚不清楚。 方法 我们评估了在一项I期试验中接受抗LAG-3+抗PD-1治疗的40例免疫治疗初治或既往免疫治疗难治的转移性黑色素瘤患者的血液样本,使用单细胞RNA和T细胞受体测序(scRNA+TCRαβ-Seq)结合其他多组学分析。 结果 LAG3表达最高见于NK细胞、Tregs和CD8+ T细胞,这些细胞群在治疗期间发生了最显著的变化。适应性NK细胞在应答者中富集,并在治疗期间经历深刻的转录组变化,形成活跃表型。LAG3+ Tregs扩增,但根据转录组图谱,它们在治疗期间变得代谢沉默。最后,在应答患者中观察到更高的基线TCR克隆性,其扩增的CD8+ T细胞克隆获得了更强的细胞毒性和NK样表型。 结论 抗LAG-3+抗PD-1治疗除影响CD8+ T细胞外,对NK细胞和Tregs也有深远影响。 试验注册 ClinicalTrials.gov (NCT01968109) 资助 芬兰癌症基金会、Sigrid Juselius基金会、Signe和Ane Gyllenberg基金会、Relander基金会、芬兰大学卫生研究国家资助、赫尔辛基生命科学研究所研究员基金、芬兰科学院(拨款号314442、311081、335432和335436)以及BMS的研究者发起的资助。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
抗LAG-3+抗PD-1联合治疗对转移性黑色素瘤患者免疫系统的详细影响是什么?
核心机制
抗LAG-3+抗PD-1治疗通过增强适应性NK细胞的细胞毒性和细胞因子产生,扩增并改变CD8+T细胞克隆的表型,同时使Tregs代谢沉默并降低其抑制功能,从而发挥抗肿瘤作用。
主要证据
通过scRNA+TCRαβ-Seq、流式细胞术、TCRβ-Seq、血清蛋白组学及体外功能实验,发现应答者中适应性NK细胞富集并激活,CD8+T细胞克隆扩增并获得NK样细胞毒性表型,Tregs扩增但代谢沉默且抑制功能降低。
研究意义
该研究揭示了抗LAG-3+抗PD-1治疗除CD8+T细胞外还影响NK细胞和Tregs,为免疫检查点治疗机制提供了新见解,并可能指导未来联合治疗策略的优化。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者队列与样本采集

获取治疗前后外周血样本,用于多组学分析。

纳入40例转移性黑色素瘤患者,分为IO naive和IO refractory两组,在基线和治疗后1、3个月采集外周血,分离PBMC和血浆。

2

单细胞转录组和TCR测序分析

描绘治疗前后外周血免疫细胞的转录组和TCR克隆动态。

对18份PB样本进行scRNA+TCRαβ-Seq,鉴定24个细胞簇,分析LAG3表达和细胞丰度变化。

3

流式细胞术免疫表型分析

验证单细胞结果并追踪治疗前后免疫细胞亚群变化。

使用6组表面标志物对PB样本进行流式细胞术分析,检测LAG3+细胞群变化。

4

血清蛋白组学分析

评估治疗引起的全身性细胞因子环境变化。

使用Olink Proseek Multiplex Inflammation panel检测78种血清蛋白。

5

TCRβ链测序分析

评估T细胞克隆性和克隆动态。

对34例患者的86份样本进行TCRβ-Seq,分析克隆性和多样性。

6

体外功能验证

验证治疗对NK细胞脱颗粒、细胞因子分泌和T细胞增殖的影响。

使用K562细胞刺激NK细胞检测脱颗粒和细胞因子;使用CD3/CD28 beads刺激T细胞检测增殖;Treg抑制试验评估Treg功能。

7

泛癌分析

验证黑色素瘤中LAG3表达水平并与其他癌症比较。

整合131个肿瘤样本的scRNA-Seq数据,进行注释和LAG3表达分析。

8

机制预测和通路分析

预测细胞间相互作用和信号通路变化。

使用CellPhoneDB预测配体-受体相互作用,进行通路富集分析,并利用RNA velocity分析转录动态。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Chromium控制器10X Genomics--
Chromium单细胞5'文库和凝胶珠试剂盒10X Genomics--
Chromium单细胞人T细胞V(D)J富集试剂盒10X Genomics--
Illumina NovaSeqIllumina--
Illumina HiSeq 2500Illumina--
Ficoll-PaqueGE Healthcare--
BD FACS VerseBD--
FlowJo----
Proseek多重炎症检测组合Olink Bioscience--
K562细胞系----
抗CD107a-FITC抗体BD555800
抗CD107b-FITC抗体BD555804
钙离子载体MilliporeSigmaC9275-1MG
PMACell Signaling Technology4174S
EasySep人T细胞分离试剂盒STEMCELL Technologies--
CellTrace Violet细胞增殖试剂盒Thermo Fisher Scientific--
Gibco Dynabeads人T细胞活化CD3/CD28试剂盒Thermo Fisher Scientific--
Cytofix/Cytoperm试剂盒BD554714
BD FACSAria IIIBD--
ImmunoSEQ检测Adaptive Biotechnologies--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者队列与样本
患者免疫治疗状态(IO naive vs. IO refractory)、应答状态、治疗剂量、样本时间点
阅读提示:Methods: Patients and samples; Table 1
单细胞测序
测序平台、文库制备试剂盒、细胞加载数、测序深度、质量控制阈值、批次校正方法、聚类参数
阅读提示:Methods: scRNA-Seq and analysis
流式细胞术
抗体克隆号、荧光素、panel组成、检测仪器、分析软件版本
阅读提示:Methods: Immunophenotyping with flow cytometry
血清蛋白分析
检测panel、样本量、归一化方法
阅读提示:Methods: Serum protein analysis
TCRβ测序
测序深度、最小样本深度、多样性指标、克隆性定义
阅读提示:Methods: TCRβ-Seq and analysis
体外功能实验
NK细胞实验的刺激条件(K562比例、时间)、T细胞增殖实验的刺激条件(beads比例、时间)、Treg抑制实验的共培养比例和时间
阅读提示:Methods: NK cytokine secretion and CD107a/b degranulation assay; Treg proliferation and suppression test