C. elegans正向遗传筛选
鉴定能够拯救BRCA2缺陷线虫胚胎致死性的基因突变。
对超过100,000条Cebrc-2突变体线虫进行EMS诱变,筛选出6株存活株,通过全基因组测序鉴定Ceubxn-2突变。
PP2A inhibition causes synthetic lethality in BRCA2-mutated prostate cancer models via spindle assembly checkpoint reactivation
涉及多种证据层级:C. elegans正向遗传筛选、多种人细胞系功能验证、体内异种移植瘤模型、患者样本分析及机制研究。
C. elegans brc-2突变体 HeLa细胞系 LNCaP细胞系 VC-8细胞系 PC3M-2B4细胞系 小鼠异种移植瘤模型 前列腺癌患者样本
筛选规模:超过100,000只线虫进行EMS诱变筛选 细胞系:HeLa、LNCaP、MCF10A等用于功能验证 siRNA/sgRNA介导的基因敲低或敲除 试剂浓度:AURKBi(barasertib)10 nM、VCPi(NMS-873)10 μM、PP2Ai(LB100)10 μM等 动物模型:BALB/c裸鼠,VC-8和PC3M-2B4细胞异种移植,LB100给药剂量2 mg/kg
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定能够拯救BRCA2缺陷线虫胚胎致死性的基因突变。
对超过100,000条Cebrc-2突变体线虫进行EMS诱变,筛选出6株存活株,通过全基因组测序鉴定Ceubxn-2突变。
验证NSFL1C缺失对BRCA2缺陷细胞存活和恶性转化的影响。
在HeLa、HCT116、U2OS等细胞中构建BRCA2/NSFL1C双敲除细胞,进行克隆形成、竞争生长和软琼脂集落形成实验。
排除NSFL1C缺失通过恢复BRCA2的DNA修复功能来拯救细胞。
检测DNA损伤标志物γH2AX、HR效率(DR-GFP)、复制叉稳定性(DNA fiber)等。
探究NSFL1C缺失是否通过抑制SAC激活促进BRCA2缺陷细胞有丝分裂完成。
使用活细胞成像观察有丝分裂进程,免疫共沉淀检测BubR1-CDC20相互作用,流式检测H3Ser10p水平。
验证NSFL1C缺失是否恢复BRCA2缺陷细胞中不稳定的着丝粒-微管连接。
通过冷稳定微管实验、着丝粒间距测量、γH2AX foci分析等。
阐明NSFL1C调控AURKB稳定性及着丝粒定位的分子机制。
通过TAP-MS鉴定相互作用蛋白,泛素化实验,突变体分析,以及VCP和USP9X的调控。
验证BRCA2缺陷肿瘤中NSFL1C/AURKB表达降低及预后关联。
分析cBioPortal数据库,免疫组化检测前列腺癌患者样本中NSFL1C和AURKB表达。
评估PP2A抑制剂对BRCA2缺陷肿瘤的治疗效果及与PARP抑制剂的协同作用。
使用VC-8和PC3M-2B4细胞异种移植瘤模型,单药或联合治疗,监测肿瘤生长。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| C. elegans培养 | 线虫生长培养基 | -- | -- |
| C. elegans RNAi | 异丙基硫代半乳糖苷 | MilliporeSigma | I6758 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | C11995500BT |
| RPMI 1640培养基 | Macgene | CM10040 | |
| F12培养基 | Macgene | CM10092 | |
| 青霉素/链霉素 | Macgene | CC004 | |
| 表皮生长因子 | Macgene | CC102 | |
| 氢化可的松 | Macgene | CC103 | |
| 霍乱毒素 | Macgene | CC104 | |
| 胰岛素 | Macgene | CC101 | |
| 细胞同步化 | 诺考达唑 | TargetMol | T2802 |
| 胸苷 | TargetMol | TWP2911 | |
| 竞争生长实验 | G418遗传霉素 | Yeasen | 60220ES03 |
| 杀稻瘟菌素 | Yeasen | 60218ES10 | |
| 12孔Nest板 | Nest | 712001 | |
| 软琼脂集落形成实验 | 琼脂 | MilliporeSigma | A5431 |
| 结晶紫 | MilliporeSigma | C0775 | |
| 显微镜(SOPTOP, XD-T) | SOPTOP | XD-T | |
| 数码相机(TOUPCAM, E3ISPM12000KPA) | TOUPCAM | E3ISPM12000KPA | |
| HR效率实验 | I-SceI限制性内切酶 | -- | -- |
| 串联亲和纯化 | 链霉亲和素-琼脂糖珠 | GE Healthcare Life Science | 17511301 |
| S蛋白琼脂糖 | Merck Millipore | 69704 | |
| 药物治疗 | Barasertib(AZD1152) | -- | -- |
| NMS-873 | -- | -- | |
| LB100 | -- | -- | |
| 奥拉帕尼 | -- | -- | |
| 动物实验 | 高浓度基质胶 | Corning | 354248 |
| D-荧光素 | PerkinElmer | 122799 | |
| IVIS Spectrum CT成像系统 | PerkinElmer | -- | |
| 数据分析 | FlowJo v10 | FlowJo | -- |
| 统计分析 | Prism 8 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| C. elegans筛选与培养 | EMS浓度50 mM,处理时间4小时;线虫株N2、brc-2(tm1086)、ubxn-2(tm5019)等;培养温度20°C 阅读提示:Methods中的C. elegans maintenance and strains、Forward genetic screenings |
| 细胞培养与同步化 | 细胞系来源:HEK293T、HeLa等;培养基类型:DMEM、RPMI 1640、F12;添加剂:10% FBS、1%青霉素/链霉素等;同步化方法:诺考达唑(100-200 ng/mL)12小时、双胸苷阻断(2 mM) 阅读提示:Methods中的Cell culture and synchronization |
| 基因敲低/敲除 | siRNA序列(文中未列出);sgRNA序列(文中未列出);转染方法(文中未明确说明);敲低效率通过免疫印迹验证 阅读提示:Methods中的Cell culture and synchronization、Competitive growth assays |
| 药物处理 | AURKBi(barasertib)浓度10 nM;VCPi(NMS-873)浓度10 μM;PP2Ai(LB100)浓度10 μM(体外)、2 mg/kg(体内);PARPi(olaparib)浓度(体外)和剂量(体内)文中未明确说明;处理时间:多数24小时 阅读提示:Methods中的Colony formation assay、Mouse models and xenografts |
| 体内异种移植瘤模型 | 小鼠品系:BALB/c裸鼠(5周龄雌性);细胞接种数量:5×10^7(VC-8)或1×10^7(PC3M-2B4);基质胶比例:1:1;给药方案:LB100(2 mg/kg,腹腔注射,每2天),olaparib剂量未明确;肿瘤测量:每2天用卡尺 阅读提示:Methods中的Mouse models and xenografts |