生成AD-PHP1B的hESC模型
通过删除推定ICR,建立模拟AD-PHP1B遗传缺陷的细胞模型,用于研究印记控制机制。
使用CRISPR/Cas9在HUES62 hESC中分别杂合删除NESP-ICR和STX16-ICR,通过SNP分析确定缺失等位基因的亲本来源,获得母源和父源缺失的克隆。
The long-range interaction between two GNAS imprinting control regions delineates pseudohypoparathyroidism type 1B pathogenesis
包含hESC基因编辑模型、HCT116细胞模型、体外功能实验(荧光素酶报告基因、3C、CUT&RUN)及临床突变关联分析等多个独立证据层级,并进行功能验证。
人胚胎干细胞(HUES62) HCT116细胞系 AD-PHP1B患者来源的微缺失数据
NESP-ICR缺失的母源等位基因特异性(ΔMat)对A/B甲基化的影响 STX16-ICR缺失的等位基因特异性(ΔG,推定母源)对A/B甲基化的影响 DNMT1抑制剂GSK3484862处理后的A/B DMR去甲基化和再甲基化动力学 STX16-ICR中OCT4/SOX2结合基序的存在及其对增强子功能的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过删除推定ICR,建立模拟AD-PHP1B遗传缺陷的细胞模型,用于研究印记控制机制。
使用CRISPR/Cas9在HUES62 hESC中分别杂合删除NESP-ICR和STX16-ICR,通过SNP分析确定缺失等位基因的亲本来源,获得母源和父源缺失的克隆。
验证NESP-ICR在母源等位基因上对A/B DMR甲基化及转录沉默的必要性。
通过MSRE-qPCR和亚硫酸盐测序检测A/B DMR甲基化水平,通过RT-PCR测序分析A/B转录本的等位基因表达;并使用DNMT1抑制剂GSK3484862处理模拟植入后母源被动去甲基化过程,观察再甲基化能力。
确定STX16-ICR对A/B DMR甲基化和NESP55转录的作用,并分析其等位基因特异性。
类似地,通过MSRE-qPCR检测STX16-ICR缺失克隆的A/B甲基化,通过qRT-PCR检测NESP55及其他GNAS转录本水平,并使用DNMT1抑制剂处理评估再甲基化缺陷。
验证STX16-ICR是否作为增强子元件在hESC中激活NESP55启动子,并观察其等位基因特异性。
使用荧光素酶报告基因实验检测STX16-ICR对NESP55启动子活性的影响;通过3C实验检测STX16-ICR与NESP-ICR在染色质空间的接近程度,并通过SNP分析相互作用的等位基因偏向。
确定STX16-ICR增强子活性所必需的反式作用因子及其作用机制。
通过截短突变体确定关键增强子区域;通过敲除或突变OCT4/SOX2结合基序验证其功能;通过CUT&RUN qPCR检测OCT4和SOX2的结合;通过siRNA敲低OCT4/SOX2检测对NESP55表达的影响;并在缺乏OCT4/SOX2的体细胞系HCT116中检测增强子活性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR1 Plus培养基 | STEMCELL Technologies | -- |
| Cultrex干细胞级低生长因子基底膜提取物 | R&D Systems | -- | |
| 基因编辑 | Alt-R SpCas9-GFP V3 | IDT | -- |
| Alt-R sgRNA | IDT | -- | |
| Alt-R Cas9电穿孔增强子 | IDT | -- | |
| P3溶液及添加物 | Lonza | -- | |
| 细胞培养 | Accutase消化液 | STEMCELL Technologies | -- |
| 基因编辑 | 4D核转染仪 | Lonza | -- |
| 细胞分选 | FACS AriaII细胞分选仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞培养 | McCoy's 5A培养基 | Gibco, Thermo Fisher Scientific | -- |
| 基因编辑 | lentiCas9-Blast质粒 | Addgene | 52962 |
| pMD2.G质粒 | Addgene | 12259 | |
| psPAX2质粒 | Addgene | 12260 | |
| lentiGuide-Puro质粒 | Addgene | 52963 | |
| lentiGuide-Hygro-EGFP质粒 | Addgene | 99375 | |
| Lipofectamine RNAiMax转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 核酸提取 | DNeasy血液和组织提取试剂盒 | QIAGEN | -- |
| PCR | KOD One PCR预混液 | TOYOBO | -- |
| Sanger测序 | BigDye 3.1版循环测序试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| ABI 3730XL DNA分析仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 基因敲低 | 靶向OCT4的siRNA | Thermo Fisher Scientific | s10872 |
| 靶向SOX2的siRNA | Thermo Fisher Scientific | s13294 | |
| TransIT X2转染试剂 | Mirus Bio | -- | |
| RNA提取和逆转录 | RNeasy RNA提取试剂盒 | QIAGEN | -- |
| ProtoScript II逆转录酶 | New England BioLabs | -- | |
| qPCR | KOD SYBR qPCR预混液 | TOYOBO | -- |
| QuantStudio 3实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 药物处理 | GSK3484862 | MedChemExpress | -- |
| 甲基化分析 | HpaII限制性内切酶 | New England BioLabs | -- |
| EZ DNA甲基化金标准试剂盒 | ZYMO RESEARCH | -- | |
| PCR纯化 | QIAquick PCR纯化试剂盒 | QIAGEN | -- |
| 荧光素酶报告基因实验 | pGL4.10萤火虫荧光素酶载体 | Promega | -- |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Dual-Glo荧光素酶检测系统 | Promega | -- | |
| ENVISION多功能酶标仪 | PerkinElmer | -- | |
| 3C实验 | HindIII-HF限制性内切酶 | New England BioLabs | -- |
| T4连接酶 | New England BioLabs | -- | |
| CUT&RUN | CUT&RUN检测试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- |
| 抗OCT4抗体 | Cell Signaling Technology | 2750 | |
| 抗SOX2抗体 | Cell Signaling Technology | 23064 | |
| 正常兔IgG | Cell Signaling Technology | 66362 | |
| NANOG启动子引物 | Cell Signaling Technology | 95064 | |
| α卫星引物 | Cell Signaling Technology | 4486 | |
| Western blotting | RIPA裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 抗β-微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 5346 | |
| 数据分析与统计 | GraphPad Prism 9 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与基因编辑 | hESC细胞系HUES62及培养条件;HCT116细胞系及培养条件;CRISPR/Cas9基因编辑方法,包括gRNA序列、电穿孔程序、克隆筛选方法;等位基因特异性SNP(rs3787497和rs2296524) 阅读提示:Methods: Cell culture and genome editing; Figure 2A 和 Figure 3A |
| A/B甲基化检测 | MSRE-qPCR检测A/B DMR的UP和DOWN区域的方法,包括使用的限制性内切酶HpaII、DNA用量、qPCR条件;基线甲基化水平;DNMT1抑制剂GSK3484862的浓度(2 μM)、处理时间(2天)及再甲基化观察时间点(第23天) 阅读提示:Methods: DNMT1 inhibition and MSRE-qPCR; Figure 2, C-D 和 F-K; Figure 3, B-C 和 E-J |
| 转录本表达分析 | RT-PCR和qRT-PCR检测GNAS各转录本(NESP55、A/B、Gsα、XLαs、exon H)的方法,包括引物序列、内参基因(ACTB)、等位基因表达分析使用的SNP(rs7121) 阅读提示:Methods: Genomic DNA preparation, PCR, Sanger sequencing, knockdown, and qRT-PCR; Figure 2E; Figure 3, D 和 K |
| 荧光素酶报告基因实验 | 报告基因构建体的具体区域(NESP55启动子、STX16-ICR、截短突变体TR1-TR4、OCT4/SOX2基序突变体)、转染方法(Lipofectamine 3000)、检测时间(72小时)、标准化方法(Renilla荧光素酶) 阅读提示:Methods: Luciferase assay; Figure 4, B-C; Figure 5, A-C 和 H |
| 3C实验及等位基因分析 | 3C实验的关键步骤,包括细胞交联(1%甲醛)、染色质消化(HindIII)、连接条件、PCR引物(#1、#2、#3);用于等位基因偏向分析的SNP(rs3787497)及其测序方法 阅读提示:Methods: 3C assay and parental determination of interacting allele; Figure 4, D-F |
| CUT&RUN qPCR | CUT&RUN实验使用的抗体(OCT4、SOX2、IgG)、细胞数量、qPCR引物及对照(NANOG启动子和αSatellite) 阅读提示:Methods: CUT&RUN qPCR; Figure 5, D-E |
| 基因敲低实验 | siRNA序列(siOCT4 s10872、siSOX2 s13294)、转染试剂(TransIT X2)、处理时间(72小时)、下游检测(qRT-PCR) 阅读提示:Methods: Genomic DNA preparation, PCR, Sanger sequencing, knockdown, and qRT-PCR; Figure 5F |
| 统计分析 | 统计方法(1-sample t test、1-way ANOVA with Tukey's post hoc test、χ2 test)、多重比较校正(Bonferroni)、P值阈值(<0.05)、数据展示方式(mean ± SEM) 阅读提示:Methods: Statistics |