两个GNAS印记控制区之间的长程相互作用阐明了假性甲状旁腺功能减退症1B型的发病机制

The long-range interaction between two GNAS imprinting control regions delineates pseudohypoparathyroidism type 1B pathogenesis

作者信息Yorihiro Iwasaki, Cagri Aksu, Monica Reyes, Birol Ay, Qing He, Murat Bastepe
PMID36853809
发布时间2023-04-17
DOI10.1172/JCI167953

实验完整度

包含hESC基因编辑模型、HCT116细胞模型、体外功能实验(荧光素酶报告基因、3C、CUT&RUN)及临床突变关联分析等多个独立证据层级,并进行功能验证。

主要模型

人胚胎干细胞(HUES62) HCT116细胞系 AD-PHP1B患者来源的微缺失数据

重点核对

NESP-ICR缺失的母源等位基因特异性(ΔMat)对A/B甲基化的影响 STX16-ICR缺失的等位基因特异性(ΔG,推定母源)对A/B甲基化的影响 DNMT1抑制剂GSK3484862处理后的A/B DMR去甲基化和再甲基化动力学 STX16-ICR中OCT4/SOX2结合基序的存在及其对增强子功能的影响

摘要

GNAS是编码刺激性G蛋白α亚基的印记基因,其遗传缺陷可导致多种疾病。GNAS印记异常导致假性甲状旁腺功能减退症1B型(PHP1B),这是哺乳动物终末器官激素抵抗的原型。母源甲基化的GNAS A/B区域低甲基化是PHP1B患者中唯一共同的缺陷。在常染色体显性(AD)PHP1B家系中,A/B低甲基化与母源微缺失相关,这些微缺失位于GNAS NESP55差异甲基化区域或位于其上游约170 kb的STX16基因。关于这些微缺失的因果关系,功能证据很少。此外,连接A/B甲基化与推定印记控制区(ICRs)NESP-ICR和STX16-ICR的机制仍然未知。在这里,我们通过使用CRISPR/Cas9引入ICR缺失,生成了AD-PHP1B的人胚胎干细胞模型。利用该模型,我们证明NESP-ICR是母源等位基因上A/B甲基化和转录沉默所必需的。我们还发现STX16-ICR是NESP55转录的长程增强子,NESP55转录始于母源NESP-ICR。此外,我们证明STX16-ICR是胚胎阶段特异性的增强子,其功能由多能性因子的直接结合所启用。我们的发现揭示了一种必需的GNAS印记控制机制,并增进了对PHP1B发病机制的分子理解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在人类细胞中,STX16-ICR和NESP-ICR这两个推定印记控制区如何调控GNAS A/B区域的甲基化,从而导致PHP1B的发病?
核心机制
母源NESP-ICR是维持A/B DMR甲基化和转录沉默所必需的;STX16-ICR作为胚胎期特异性的长程增强子,通过结合多能性因子OCT4和SOX2,在母源等位基因上增强NESP55的转录,进而调控A/B DMR的甲基化。
主要证据
在hESC模型中,母源NESP-ICR或STX16-ICR缺失导致A/B DMR低甲基化及再甲基化失败;3C实验显示STX16-ICR与NESP-ICR存在母源偏向的相互作用;荧光素酶报告实验证明STX16-ICR具有增强子活性且依赖OCT4/SOX2结合位点。
研究意义
本研究首次提供了AD-PHP1B中微缺失致病性的功能证据,揭示了一种必需的GNAS印记控制机制,并为在植入后关键窗口期纠正A/B DMR低甲基化的潜在治疗策略提供了理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

生成AD-PHP1B的hESC模型

通过删除推定ICR,建立模拟AD-PHP1B遗传缺陷的细胞模型,用于研究印记控制机制。

使用CRISPR/Cas9在HUES62 hESC中分别杂合删除NESP-ICR和STX16-ICR,通过SNP分析确定缺失等位基因的亲本来源,获得母源和父源缺失的克隆。

2

评估NESP-ICR缺失对A/B甲基化及表达的影响

验证NESP-ICR在母源等位基因上对A/B DMR甲基化及转录沉默的必要性。

通过MSRE-qPCR和亚硫酸盐测序检测A/B DMR甲基化水平,通过RT-PCR测序分析A/B转录本的等位基因表达;并使用DNMT1抑制剂GSK3484862处理模拟植入后母源被动去甲基化过程,观察再甲基化能力。

3

评估STX16-ICR缺失对A/B甲基化及NESP55转录的影响

确定STX16-ICR对A/B DMR甲基化和NESP55转录的作用,并分析其等位基因特异性。

类似地,通过MSRE-qPCR检测STX16-ICR缺失克隆的A/B甲基化,通过qRT-PCR检测NESP55及其他GNAS转录本水平,并使用DNMT1抑制剂处理评估再甲基化缺陷。

4

证明STX16-ICR是NESP55启动子的长程增强子

验证STX16-ICR是否作为增强子元件在hESC中激活NESP55启动子,并观察其等位基因特异性。

使用荧光素酶报告基因实验检测STX16-ICR对NESP55启动子活性的影响;通过3C实验检测STX16-ICR与NESP-ICR在染色质空间的接近程度,并通过SNP分析相互作用的等位基因偏向。

5

鉴定STX16-ICR增强子功能所需的多能性因子

确定STX16-ICR增强子活性所必需的反式作用因子及其作用机制。

通过截短突变体确定关键增强子区域;通过敲除或突变OCT4/SOX2结合基序验证其功能;通过CUT&RUN qPCR检测OCT4和SOX2的结合;通过siRNA敲低OCT4/SOX2检测对NESP55表达的影响;并在缺乏OCT4/SOX2的体细胞系HCT116中检测增强子活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
mTeSR1 Plus培养基STEMCELL Technologies--
Cultrex干细胞级低生长因子基底膜提取物R&D Systems--
Alt-R SpCas9-GFP V3IDT--
Alt-R sgRNAIDT--
Alt-R Cas9电穿孔增强子IDT--
P3溶液及添加物Lonza--
Accutase消化液STEMCELL Technologies--
4D核转染仪Lonza--
FACS AriaII细胞分选仪BD Biosciences--
McCoy's 5A培养基Gibco, Thermo Fisher Scientific--
lentiCas9-Blast质粒Addgene52962
pMD2.G质粒Addgene12259
psPAX2质粒Addgene12260
lentiGuide-Puro质粒Addgene52963
lentiGuide-Hygro-EGFP质粒Addgene99375
Lipofectamine RNAiMax转染试剂Thermo Fisher Scientific--
DNeasy血液和组织提取试剂盒QIAGEN--
KOD One PCR预混液TOYOBO--
BigDye 3.1版循环测序试剂盒Thermo Fisher Scientific--
ABI 3730XL DNA分析仪Thermo Fisher Scientific--
靶向OCT4的siRNAThermo Fisher Scientifics10872
靶向SOX2的siRNAThermo Fisher Scientifics13294
TransIT X2转染试剂Mirus Bio--
RNeasy RNA提取试剂盒QIAGEN--
ProtoScript II逆转录酶New England BioLabs--
KOD SYBR qPCR预混液TOYOBO--
QuantStudio 3实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific--
GSK3484862MedChemExpress--
HpaII限制性内切酶New England BioLabs--
EZ DNA甲基化金标准试剂盒ZYMO RESEARCH--
QIAquick PCR纯化试剂盒QIAGEN--
pGL4.10萤火虫荧光素酶载体Promega--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
Dual-Glo荧光素酶检测系统Promega--
ENVISION多功能酶标仪PerkinElmer--
HindIII-HF限制性内切酶New England BioLabs--
T4连接酶New England BioLabs--
CUT&RUN检测试剂盒Cell Signaling Technology--
抗OCT4抗体Cell Signaling Technology2750
抗SOX2抗体Cell Signaling Technology23064
正常兔IgGCell Signaling Technology66362
NANOG启动子引物Cell Signaling Technology95064
α卫星引物Cell Signaling Technology4486
RIPA裂解缓冲液Thermo Fisher Scientific--
抗β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology5346
GraphPad Prism 9GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与基因编辑
hESC细胞系HUES62及培养条件;HCT116细胞系及培养条件;CRISPR/Cas9基因编辑方法,包括gRNA序列、电穿孔程序、克隆筛选方法;等位基因特异性SNP(rs3787497和rs2296524)
阅读提示:Methods: Cell culture and genome editing; Figure 2A 和 Figure 3A
A/B甲基化检测
MSRE-qPCR检测A/B DMR的UP和DOWN区域的方法,包括使用的限制性内切酶HpaII、DNA用量、qPCR条件;基线甲基化水平;DNMT1抑制剂GSK3484862的浓度(2 μM)、处理时间(2天)及再甲基化观察时间点(第23天)
阅读提示:Methods: DNMT1 inhibition and MSRE-qPCR; Figure 2, C-D 和 F-K; Figure 3, B-C 和 E-J
转录本表达分析
RT-PCR和qRT-PCR检测GNAS各转录本(NESP55、A/B、Gsα、XLαs、exon H)的方法,包括引物序列、内参基因(ACTB)、等位基因表达分析使用的SNP(rs7121)
阅读提示:Methods: Genomic DNA preparation, PCR, Sanger sequencing, knockdown, and qRT-PCR; Figure 2E; Figure 3, D 和 K
荧光素酶报告基因实验
报告基因构建体的具体区域(NESP55启动子、STX16-ICR、截短突变体TR1-TR4、OCT4/SOX2基序突变体)、转染方法(Lipofectamine 3000)、检测时间(72小时)、标准化方法(Renilla荧光素酶)
阅读提示:Methods: Luciferase assay; Figure 4, B-C; Figure 5, A-C 和 H
3C实验及等位基因分析
3C实验的关键步骤,包括细胞交联(1%甲醛)、染色质消化(HindIII)、连接条件、PCR引物(#1、#2、#3);用于等位基因偏向分析的SNP(rs3787497)及其测序方法
阅读提示:Methods: 3C assay and parental determination of interacting allele; Figure 4, D-F
CUT&RUN qPCR
CUT&RUN实验使用的抗体(OCT4、SOX2、IgG)、细胞数量、qPCR引物及对照(NANOG启动子和αSatellite)
阅读提示:Methods: CUT&RUN qPCR; Figure 5, D-E
基因敲低实验
siRNA序列(siOCT4 s10872、siSOX2 s13294)、转染试剂(TransIT X2)、处理时间(72小时)、下游检测(qRT-PCR)
阅读提示:Methods: Genomic DNA preparation, PCR, Sanger sequencing, knockdown, and qRT-PCR; Figure 5F
统计分析
统计方法(1-sample t test、1-way ANOVA with Tukey's post hoc test、χ2 test)、多重比较校正(Bonferroni)、P值阈值(<0.05)、数据展示方式(mean ± SEM)
阅读提示:Methods: Statistics