药物筛选与靶点验证
筛选能够结合TOPBP1 BRCT 7-8并阻断其蛋白相互作用的小分子化合物
使用NanoBiT系统筛选2579种FDA批准的药物,通过BLI验证候选药物与BRCT 7-8的结合,并通过分子对接和突变体实验确认金诺芬的作用位点。
Auranofin attenuates TOPBP1-mediated ATR replication stress response and improves chemotherapeutic response in breast tumor models
包含体外药物筛选、BLI、分子对接、细胞功能实验、DNA纤维实验、类器官样LLPS实验及多种小鼠肿瘤模型的体内验证。
HeLa细胞系 U2OS细胞系 MDA-MB-231乳腺肿瘤细胞系 BT-549乳腺癌细胞系 E0771小鼠乳腺癌细胞系 MMTV-PyMT小鼠乳腺肿瘤模型 MDA-MB-231异种移植瘤模型 E0771异种移植瘤模型
药物处理浓度:金诺芬2 μM,PMX464 10 μM,piperlongumine 10 μM,NAC 50 μM 处理时间:金诺芬处理2小时,camptothecin挑战1小时 DNA纤维实验标记条件:IdU 25 μM 30分钟,CldU 200 μM 30分钟,HU 2 mM 2小时 动物模型药物剂量:rucaparib 25 mg/kg,金诺芬 5 mg/kg或1 mg/kg,每2天一次 统计学方法:单因素方差分析或双因素方差分析,P < 0.01视为显著
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选能够结合TOPBP1 BRCT 7-8并阻断其蛋白相互作用的小分子化合物
使用NanoBiT系统筛选2579种FDA批准的药物,通过BLI验证候选药物与BRCT 7-8的结合,并通过分子对接和突变体实验确认金诺芬的作用位点。
验证金诺芬在细胞内是否破坏TOPBP1与PHF8和FANCJ的相互作用
通过免疫共沉淀(Co-IP)检测TOPBP1与PHF8、FANCJ的结合,并使用不同浓度的金诺芬处理,同时比较其他TrxR抑制剂和抗氧化剂的影响。
评估金诺芬是否通过破坏TOPBP1功能抑制ATR激活并影响复制叉完整性
通过免疫印迹检测CHK1和RPA2磷酸化,通过DNA纤维实验分析复制叉停滞和恢复,并使用F1411A突变细胞和ROS清除剂验证其特异性。
验证金诺芬是否破坏TOPBP1的液-液相分离(LLPS)
通过体外相分离实验、LacO-LacI系统、光遗传学实验和细胞内源TOPBP1凝聚体分析,研究金诺芬对TOPBP1 LLPS的影响。
验证金诺芬是否通过影响TOPBP1-FANCJ相互作用而抑制RPA加载
通过免疫荧光检测RPA2和RPA2 pS33 foci,通过iPOND和SIRF实验分析RPA与新生DNA的关联,并通过DNA纤维实验评估复制叉稳定性。
验证金诺芬是否增强乳腺癌细胞对化疗药物的敏感性
通过细胞存活实验分析金诺芬单独或与camptothecin或rucaparib联用对多种乳腺癌细胞的影响,并验证其依赖性。
验证金诺芬与rucaparib联合用药在体内的抗乳腺肿瘤效果
使用MDA-MB-231和E0771异种移植瘤模型及MMTV-PyMT小鼠模型,评估联合用药对肿瘤生长的影响,并检测毒性和机制。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物筛选 | Nano-Glo活细胞检测系统 | Promega | N2012 |
| 生物层干涉法 | Octet RED96 | ForteBio | -- |
| EZ-Link NHS-生物素 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞培养 | Lipofectamine RNAi MAX | Invitrogen | -- |
| TRIzol试剂 | Invitrogen | -- | |
| RT-qPCR | Power SYBR Green PCR预混液 | Roche | -- |
| 免疫荧光 | keyFluor 647-叠氮化物 | Keygen Technologies | -- |
| DNA纤维实验 | 抗BrdU抗体 | -- | -- |
| iPOND | 链霉亲和素-MyOne T1磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 邻位连接检测 | Duolink原位检测试剂 | Sigma-Aldrich | DUO92101 |
| 试剂 | 金诺芬 | -- | -- |
| 鲁卡帕尼 | -- | -- | |
| 喜树碱 | -- | -- | |
| N-乙酰半胱氨酸 | -- | -- | |
| 羟基脲 | -- | -- | |
| 钙黄绿素-AM | -- | -- | |
| mirin | -- | -- | |
| 1,6-己二醇 | -- | -- | |
| 实验耗材 | 96孔板 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 药物筛选 | HeLa细胞稳定表达LgBiT-BRCT 7-8和SmBiT-PHF8/C或SmBiT-FANCJ/C;药物处理浓度10 μM,时间4小时;对照为DMSO。 阅读提示:Methods: NanoBiT assays; Figure 1 legend |
| 生物层干涉法 | 重组BRCT 7-8蛋白浓度1 μM;金诺芬浓度梯度;缓冲液含0.1% BSA, 0.02% Tween-20, 1% DMSO。 阅读提示:Methods: BLI; Figure 1 legend |
| 验证TOPBP1相互作用 | 细胞系(HeLa或MDA-MB-231);金诺芬浓度2 μM,处理时间2小时;免疫共沉淀抗体(抗FLAG、抗PHF8、抗FANCJ)。 阅读提示:Results: Auranofin disrupts the interaction of TOPBP1 with PHF8 and FANCJ; Figure 2 legend |
| ATR活性检测 | 细胞系(U2OS或MDA-MB-231);金诺芬处理浓度;camptothecin挑战时间和浓度;检测CHK1和RPA2磷酸化。 阅读提示:Results: Auranofin impairs TOPBP1 recruitment and ATR activation; Figure 3 legend |
| DNA纤维实验 | 细胞系(HeLa或U2OS);IdU和CldU标记浓度和时间;HU处理时间;金诺芬浓度;分析参数(如fork length、restart比例)。 阅读提示:Methods: DNA fiber assay; Results: Auranofin impairs TOPBP1 recruitment and ATR activation; Figure 3 legend |
| 相分离实验 | 重组蛋白浓度10 μM;缓冲液成分(20 mM Tris-HCl pH 7.0, 1 mM DTT, 10% PEG-8000);金诺芬浓度2 μM处理;显微镜观察条件。 阅读提示:Methods: In vitro phase separation assay; Results: Auranofin dissolves TOPBP1 liquid-liquid condensate; Figure 4 legend |
| 细胞活力实验 | 细胞系(MDA-MB-231, BT-549, HMEC);金诺芬浓度梯度;camptothecin和rucaparib浓度;处理时间;NAC处理条件。 阅读提示:Results: Auranofin confers vulnerability of breast cancer cells to chemotherapeutics; Figure 6 legend |
| 动物实验 | 小鼠品系(NOD/SCID, C57BL/6J, PyMT);细胞接种数量和途径;药物剂量(rucaparib 25 mg/kg, auranofin 5或1 mg/kg每2天);给药方式(腹腔注射);NAC饮用水浓度(1 g/L)。 阅读提示:Methods: Mouse tumor models; Results: Breast tumors are synthetically susceptible to the action of auranofin and rucaparib; Figure 7 legend |