通过端粒和p53介导的脊髓细胞衰老实现雄性特异性的长期慢性疼痛

Long-term male-specific chronic pain via telomere- and p53‑mediated spinal cord cellular senescence

作者信息Arjun Muralidharan, Susana G Sotocinal, Noosha Yousefpour, Nur Akkurt, Lucas V Lima, Shannon Tansley, Marc Parisien, Chengyang Wang, Jean-Sebastien Austin, Boram Ham, Gabrielle Mgs Dutra, Philippe Rousseau, Sioui Maldonado-Bouchard, Teleri Clark, Sarah F Rosen, Mariam R Majeed, Olivia Silva, Rachel Nejade, Xinyu Li, Stephania Donayre Pimentel, Christopher S Nielsen, G Gregory Neely, Chantal Autexier, Luda Diatchenko, Alfredo Ribeiro-da-Silva, Jeffrey S Mogil
PMID35426375
发布时间2022-04-15
DOI10.1172/JCI151817

实验完整度

包含小鼠神经损伤模型、Terc突变小鼠、细胞衰老染色、qPCR、免疫组化、FOXO4-DRI药理学干预及UK Biobank人类遗传学分析,多层级功能与机制验证。

主要模型

C57BL/6小鼠SNI(腓肠神经 spared nerve injury)模型 Terc基因敲除小鼠(Terc+/–, Terc–/–) UK Biobank人类队列

重点核对

雄性小鼠SNI后4个月及14个月PBMC端粒长度显著缩短 FACS分选脊髓小胶质细胞中雄性特异性端粒缩短 FOXO4-DRI鞘内注射(10 μg, 每天一次, 连续5天)仅在雄性中逆转痛觉超敏 UK Biobank中TP53基因与慢性疼痛位点数的雄性特异性遗传关联 Terc–/–小鼠SNI后机械性异常性疼痛增强

摘要

具有实验性神经损伤的小鼠可以表现出持久的神经病理性疼痛行为。我们在此证明,在神经损伤后4个月及更晚,雄性而非雌性小鼠的脊髓中出现端粒长度减少和p53介导的细胞衰老,导致疼痛的维持并与寿命缩短相关。神经损伤增加了p53阳性脊髓神经元、星形胶质细胞和小胶质细胞的数量,但只有在小胶质细胞中这种增加是雄性特异性的,这与该细胞类型中端粒长度减少的强烈性别特异性相匹配,而小胶质细胞先前已被认为参与雄性特异性的疼痛处理。反复鞘内给予p53特异性衰老溶解肽可逆转疼痛超敏反应,但仅在雄性小鼠中且在损伤后数月才有效。对英国生物库数据的分析揭示了该通路在人类中的性别特异性相关性,表现为人类p53基因座(TP53)与慢性疼痛的雄性特异性遗传关联,以及慢性疼痛对死亡率的雄性特异性影响。我们的发现证明了至少雄性中存在一种维持疼痛行为的生物学机制,其发生时间远远晚于几乎所有现有临床前研究的时间跨度。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经损伤后维持慢性疼痛的长期机制是什么,以及是否具有性别特异性?
核心机制
神经损伤导致脊髓小胶质细胞端粒缩短,引发p53介导的细胞衰老,通过SASP因子维持疼痛;该机制具有雄性特异性。
主要证据
SNI后雄性小鼠脊髓中SA-β-gal阳性细胞增多,p53/p21/IL-1β/IL-6表达雄性特异性升高,FOXO4-DRI清除p53阳性衰老细胞可逆转雄性小鼠痛觉超敏,Terc缺失加重疼痛,UK Biobank显示男性TP53基因与慢性疼痛关联。
研究意义
揭示慢性疼痛维持的新机制,提示衰老溶解药物可能用于治疗慢性疼痛,尤其针对男性,并强调临床前疼痛研究应延长观察时间。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

神经损伤模型建立与行为学评估

建立长期神经病理性疼痛模型并确认痛觉超敏的持续性和性别差异。

对8周龄C57BL/6小鼠实施SNI手术,通过von Frey纤维丝测量机械性缩足阈值,评估术后各时间点疼痛行为,并比较雄性和雌性。

2

端粒长度和端粒酶活性检测

评估神经损伤对端粒长度和端粒酶活性的影响及其性别差异。

提取PBMC、FACS分选脊髓小胶质细胞和星形胶质细胞,采用实时定量PCR测量端粒长度,并检测端粒酶活性。

3

细胞衰老标志物检测

验证神经损伤后脊髓细胞是否发生衰老。

对脊髓切片进行SA-β-gal染色,定量分析背角阳性细胞;并通过qPCR检测衰老通路基因(Trp53, Cdkn1a, Cdkn2a, Rb1)和SASP因子(Il1b, Il6)表达。

4

细胞类型特异性p53表达分析

确定脊髓中哪些细胞类型发生p53介导的衰老。

通过免疫荧光双标(NeuN/Nissl、GFAP、Iba1)检测p53在神经元、星形胶质细胞和小胶质细胞中的表达,并量化阳性细胞比例。

5

药理清除衰老细胞干预

验证p53阳性衰老细胞在维持慢性疼痛中的因果作用。

在SNI后9个月或2周,鞘内注射FOXO4-DRI肽(10 μg)或溶剂,连续5天,观察疼痛行为变化和相关基因表达改变。

6

遗传学验证(Terc突变小鼠)

通过缩短端粒的遗传模型验证端粒缩短与疼痛敏感性之间的因果关系。

对Terc+/+, +/–, –/–小鼠实施SNI或假手术,评估痛觉超敏和寿命。

7

人类遗传关联分析(UK Biobank)

探讨人类中慢性疼痛、衰老通路基因和寿命的关联。

利用UK Biobank数据,分析慢性疼痛位点数与寿命的关系,并进行性别分层的GWAS关联分析,聚焦衰老相关基因(TP53, CDKN1A, CDKN2A, RB1, IL1B, IL6)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Stoelting触觉测试感觉评估套件Stoelting2-9号纤维,对应0.015-1.3 g
Histopaque 1083分离液Sigma-Aldrich--
DNeasy血液和组织试剂盒Qiagen--
NanoDrop分光光度计Thermo Fisher Scientific--
IV型胶原酶Gibco--
脱氧核糖核酸酶IThermo Fisher Scientific--
Percoll分离液Sigma-Aldrich--
FACS缓冲液(0.4% BSA/PBS)----
FACSAria III流式细胞分选仪BD Biosciences--
FACSAria Fusion流式细胞分选仪BD Biosciences--
Qiagen DNA微量试剂盒Qiagen56304
Zymogen DNA清洁和浓缩器Zymogen ResearchD4033
绝对定量PCR SYBR Green预混液Thermo Fisher ScientificAB1322
QuantStudio 3实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher Scientific--
QuantStudio 7实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher Scientific--
HinfI限制性内切酶New England Biolabs--
RsaI限制性内切酶New England Biolabs--
TeloTAGGG PCR ELISA试剂盒Roche11854666910
衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒Cell Signaling Technology9860
冰冻切片机Leica--
蔡司AxioImager M2显微镜Zeiss--
RNAlater溶液Ambion--
TRIzol试剂Ambion15596026
RNeasy Plus Universal微量试剂盒Qiagen73404
TaqMan逆转录试剂盒Thermo Fisher Scientific/InvitrogenN8080234
TaqMan Fast Universal PCR预混液(2×)Thermo Fisher Scientific4352042
GAPDH对照试剂Thermo Fisher Scientific4308313
抗p53抗体Abcamab16665
抗Iba1抗体Synaptic Systems234 004
抗GFAP抗体Cell Signaling Technology3670
抗NeuN抗体MilliporeABN90P
抗活化caspase-3抗体St. John's LaboratorySTJ97448
Neurotrace荧光Nissl染料InvitrogenN21479
Prolong Gold抗淬灭封片剂Invitrogen--
蔡司AxioImager M2显微镜Zeiss--
蔡司LSM 880共聚焦显微镜Zeiss--
FOXO4-DRI肽Life Technologies--
米诺环素盐酸盐Sigma-Aldrich--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
神经损伤模型
手术方式:SNI(保留腓肠神经)或CCI;小鼠品系:C57BL/6J;年龄:8周(或2、10、20个月);麻醉:异氟烷/氧气;术后时间点:4个月及以后。
阅读提示:Methods: Mice, Algesiometry
行为学测试
测试方法:von Frey纤维丝(Stoelting套件2-9号,0.015-1.3g);使用up-down法;测试前适应至少2小时;测试部位:足底;每爪测量2-3次取均值;实验者盲法。
阅读提示:Methods: Algesiometry
端粒长度测量
PBMC分离:Histopaque 1083;DNA提取:DNeasy试剂盒;qPCR条件:50°C 2min, 95°C 15min, 30次循环(94°C 15s, 57°C 10s, 72°C 15s);标准品:合成寡核苷酸(TTAGGG重复14次,400pg;36B4标准品170pg);使用Absolute QPCR SYBR Green Mix。
阅读提示:Methods: Telomere length analysis, Real-time qPCR assay
小胶质细胞分离
脊髓组织:L4-L5段;酶解:胶原酶IV (2 mg/mL)和DNase I (1 μL) 37°C 45min;Percoll梯度(30%);FACS分选:CD11b+CD45lo(小胶质细胞),ACSA2(星形胶质细胞);使用FACSAria III或Fusion。
阅读提示:Methods: Isolation of mouse microglia and astrocytes
SA-β-gal染色
切片厚度:20 μm;固定:4% PFA 2h;染色液pH 6.0;37°C孵育24h;使用Cell Signaling Technology试剂盒(9860)。
阅读提示:Methods: SA-β-gal staining
qPCR基因表达
组织:脊髓同侧背角L4/L5;RNA提取:TRIzol和RNeasy Plus;TaqMan探针(Trp53, Cdkn1a, Cdkn2a, Rb1, Il1b, Il6, Gapdh);内参:Gapdh;ΔΔCt法;3个技术重复。
阅读提示:Methods: Real-time qPCR analysis of senescence and SASP markers
免疫组化
切片厚度:25 μm(游离漂浮);抗原修复:柠檬酸缓冲液pH 6.0 90°C 30min;封闭:10%正常驴或山羊血清;一抗:p53 (1:100), Iba1 (1:500), GFAP (1:1000), NeuN (1:1000), cleaved caspase-3 (1:100);二抗:Alexa Fluor 488/568/647 (1:800)。
阅读提示:Methods: Immunohistochemistry
FOXO4-DRI干预
剂量:10 μg/5 μL盐水;给药途径:鞘内注射;频率:每天一次×5天;时间点:SNI后9个月或2周;再次注射:首轮结束后11天;行为学评估:每3天。
阅读提示:Methods: FOXO4-DRI
UK Biobank分析
表型:慢性疼痛位点数(0-8);统计:线性回归分析年龄与死亡时疼痛位点数的关系;基因关联:BOLT和MAGMA,基因水平P值;协变量:40个主成分,年龄,年龄^2,基因分型阵列,招募地点;MAF阈值>0.1%,INFO>0.8,HWE P>10^-12。
阅读提示:Methods: UK Biobank