UBC9缺陷增强前列腺癌中免疫刺激性巨噬细胞活化及随后的抗肿瘤T细胞反应

UBC9 deficiency enhances immunostimulatory macrophage activation and subsequent antitumor T cell response in prostate cancer

作者信息Jun Xiao, Fei Sun, Ya-Nan Wang, Bo Liu, Peng Zhou, Fa-Xi Wang, Hai-Feng Zhou, Yue Ge, Tian-Tian Yue, Jia-Hui Luo, Chun-Liang Yang, Shan-Jie Rong, Ze-Zhong Xiong, Sheng Ma, Qi Zhang, Yang Xun, Chun-Guang Yang, Yang Luan, Shao-Gang Wang, Cong-Yi Wang, Zhi-Hua Wang
PMID36626227
发布时间2023-02-15
DOI10.1172/JCI158352

实验完整度

包含患者样本及TCGA数据库分析、巨噬细胞特异性Ubc9敲除小鼠模型、BMDM体外功能实验、STAT4 SUMOylation机制验证及体内联合治疗实验等多个独立证据层级。

主要模型

巨噬细胞特异性Ubc9敲除小鼠(LyzM-Cre+Ubc9fl/fl) RM-1小鼠前列腺癌皮下移植瘤模型 B16-OVA黑色素瘤模型 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)

重点核对

UBC9抑制剂2-D08的给药剂量(10 mg/kg,每3天一次,瘤内注射)及处理时间(2周) 巨噬细胞条件性Ubc9敲除小鼠(LyzM-Cre+Ubc9fl/fl)的构建及对照组(LyzM-Cre−Ubc9fl/fl)的选择 STAT4 K350R突变对STAT4 SUMO化、核转位、稳定性及巨噬细胞活化的影响 2-D08与抗PD-1抗体联合治疗的给药方案(抗PD-1 250 μg/只,每3天一次,腹腔注射) CD8+ T细胞耗竭实验(抗CD8抗体200 μg/只,腹腔注射)对Ubc9缺失抗肿瘤效应的影响

摘要

肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)在前列腺癌(PCa)中的作用以及不同巨噬细胞活化状态背后的调控机制仍知之甚少。在此,我们报道,与野生型同窝小鼠相比,巨噬细胞特异性Ubc9缺陷小鼠的前列腺癌生长受到显著抑制,这种效应部分归因于增强的CD8+ T细胞反应。生化和分子分析揭示,信号转导与转录激活因子4(STAT4)是UBC9介导的SUMO化修饰的关键靶点,其中赖氨酸残基350(K350)是主要修饰位点。STAT4的位点定向突变(K350R)增强了其核转位和稳定性,从而促进巨噬细胞的促炎活化。重要的是,给予UBC9抑制剂2-D08可促进TAMs的抗肿瘤作用,并增加CD8+ T细胞上PD-1的表达,支持其与免疫检查点阻断疗法联合使用时具有协同抗肿瘤功效。总之,我们的结果表明,消除UBC9可通过促进STAT4介导的巨噬细胞活化以及巨噬细胞与CD8+ T细胞的串扰来逆转TAMs的免疫抑制表型,这为阻止肿瘤发生的病理过程提供了有价值的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
UBC9及其介导的SUMO化修饰是否调控肿瘤相关巨噬细胞的极化与功能,并影响前列腺癌进展及CD8+ T细胞抗肿瘤免疫反应。
核心机制
UBC9介导STAT4在K350位点的SUMO化修饰,促进STAT4的泛素化依赖性降解,抑制STAT4的核转位和转录活性,从而抑制巨噬细胞M1极化,削弱其抗原呈递能力并限制CD8+ T细胞活化。
主要证据
巨噬细胞特异性Ubc9敲除或UBC9抑制剂2-D08处理可抑制前列腺癌生长,增加CD86+ TAMs比例和MHC I表达,并增强肿瘤浸润CD8+ T细胞的活化;STAT4 K350R突变可抵抗SUMO化,增强STAT4稳定性并促进巨噬细胞M1极化及CD8+ T细胞活化。
研究意义
该研究揭示了UBC9通过TAMs调节前列腺癌进展的新机制,并提出UBC9抑制剂联合PD-1阻断可能成为治疗前列腺癌的有效策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床相关性分析

评估UBC9表达与前列腺癌患者预后及巨噬细胞活化状态的相关性。

利用TCGA数据库及临床样本,分析UBC9表达水平与肿瘤分期、Gleason评分、生化复发及转移生存率的关系;通过CIBERSORT和GSEA分析免疫细胞浸润及通路富集;通过免疫荧光检测UBC9和CD68在肿瘤组织中的共表达。

2

体内UBC9抑制实验

验证抑制UBC9是否影响前列腺癌肿瘤生长及肿瘤微环境中的免疫细胞。

通过RM-1皮下移植瘤模型,给予UBC9抑制剂2-D08或溶剂对照,监测肿瘤生长;分析肿瘤内免疫细胞亚群、巨噬细胞活化标志物及CD8+ T细胞状态。

3

巨噬细胞特异性Ubc9敲除小鼠模型验证

确定巨噬细胞中Ubc9缺失对前列腺癌生长及CD8+ T细胞反应的影响。

构建LyzM-Cre+Ubc9fl/fl(Ubc9–/–)小鼠及对照,皮下接种RM-1细胞,监测肿瘤生长;分析肿瘤内TAMs表型、浸润CD8+ T细胞数量及活化状态;通过免疫荧光观察TAMs与CD8+ T细胞的相互作用。

4

体外巨噬细胞功能实验

验证Ubc9缺失或抑制对巨噬细胞M1极化和抗原呈递能力的影响。

分离并诱导WT和Ubc9–/– BMDMs,给予LPS刺激,检测CD86、MHC I及炎性细胞因子表达;通过流式细胞术、qPCR和ELISA评估M1标志物和细胞因子分泌。

5

抗原特异性CD8+ T细胞激活实验

评估Ubc9缺陷巨噬细胞激活抗原特异性CD8+ T细胞的能力。

采用B16-OVA肿瘤模型,将OVA脉冲的WT或Ubc9–/–巨噬细胞过继转移至肿瘤旁,监测肿瘤生长并分析CD8+ T细胞浸润和活化;体外将OVA脉冲的巨噬细胞与OT-I CD8+ T细胞共培养,检测T细胞增殖和细胞因子产生。

6

机制研究:STAT4 SUMO化

阐明UBC9介导的STAT4 SUMO化修饰对巨噬细胞M1极化的调控机制。

通过RNA-Seq分析TAMs中差异表达基因,鉴定JAK/STAT通路;通过免疫沉淀验证STAT4的SUMO化及修饰位点;构建STAT4 K350R突变体,检测其对STAT4核转位、稳定性、泛素化水平及巨噬细胞M1极化和CD8+ T细胞激活的影响。

7

联合治疗评估

评估UBC9抑制剂2-D08与抗PD-1抗体联合治疗前列腺癌的疗效及对CD8+ T细胞反应的影响。

在RM-1肿瘤模型中,分别给予DMSO、2-D08、抗PD-1抗体或两者联合治疗,监测肿瘤生长;分析肿瘤内CD4+和CD8+ T细胞比例及IFN-γ+ CD8+ T细胞频率。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Sigma-Aldrich--
胎牛血清Gibco--
青霉素/链霉素Beyotime--
巨噬细胞集落刺激因子PeproTech315-02-250
脂多糖PeproTechL4130
白细胞介素-12----
卵清蛋白多肽257-264Sigma-AldrichS7951
抗STAT4抗体Cell Signaling Technology2653S
抗FLAG抗体Cell Signaling Technology2368
抗泛素抗体Cell Signaling Technology3936s
抗UBC9抗体Abcamab75854
抗CD68抗体Proteintech66231-2-Ig
抗SUMO1抗体Youke Group--
抗CD45.2抗体BioLegend109837
抗F4/80抗体BioLegend123108
抗CD11b抗体BioLegend101208
抗CD86抗体BioLegend105014
抗MHC I抗体BioLegend116418
抗MHC II抗体BioLegend107606
抗CD4抗体BioLegend100406
抗CD8抗体BioLegend140416
抗PD-1抗体BioLegend135210
抗IFN-γ抗体BioLegend505810
抗TNF-α抗体BioLegend506327
抗颗粒酶B抗体BioLegend372204
抗Ki67抗体BioLegend151210
Dynabeads蛋白G磁珠Invitrogen1004d
N-乙基马来酰亚胺Sigma-Aldrich23030.0
Percoll分离液Solarbio Life Science Co.65455-52-9
CCK-8试剂盒Biosharp Life Science Co.BS350B
抗PD-1抗体Bio X Cell Co.BE0146
抗CD8抗体Bio X Cell Co.BE0004
2-D08MCE BiotechnologyHY-114166
TAK-981MCE BiotechnologyHY-111789
MG-132MCE BiotechnologyHY-13259
Stat4-WT腺病毒Dianjun Biotech Co. Ltd.--
Stat4-K350R腺病毒Dianjun Biotech Co. Ltd.--
Ubc9过表达腺病毒Dianjun Biotech Co. Ltd.--
Trizol试剂Takara--
SYBR Green PCR预混液Applied Biosystems--
RIPA裂解液Servicebio--
蛋白酶抑制剂混合物Roche--
ELISA试剂盒eBioscience--
肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec--
LSRFortessa流式细胞仪BD Biosciences--
FV1000共聚焦显微镜Olympus--
Stat4 siRNADianjun Biotech Co. Ltd.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
Ubc9fl/fl小鼠与LyzM-Cre转基因小鼠的杂交方案;对照组采用LyzM-Cre−Ubc9fl/fl小鼠;小鼠周龄(8-12周龄)和性别(雄性)。
阅读提示:Methods - Mouse model
肿瘤接种
RM-1细胞接种数量(1×10^6)、接种部位(右侧后腿皮下)、肿瘤测量时间间隔(每3天)。
阅读提示:Methods - Xenograft tumor model
UBC9抑制剂处理
2-D08剂量(10 mg/kg)、给药途径(瘤内注射)、给药频率(每3天)、治疗周期(2周)。
阅读提示:Methods - Xenograft tumor model
CD8+ T细胞耗竭
抗CD8抗体剂量(200 μg/只)、给药途径(腹腔注射)、首次给药时间(肿瘤接种前3天)、重复频率(每3天)。
阅读提示:Methods - Xenograft tumor model
联合治疗
抗PD-1抗体剂量(250 μg/只)、给药途径(腹腔注射)、给药频率(每3天)、首次给药时间(肿瘤接种后第3天)、与2-D08联合方案。
阅读提示:Methods - Xenograft tumor model
巨噬细胞过继转移
BMDMs分化条件(M-CSF 20 ng/mL,7天)、LPS刺激浓度(50 ng/mL)、OVA脉冲浓度(10 μg/mL)、过继转移细胞数量(5×10^5)、转移时间(第3天和第10天)。
阅读提示:Methods - Xenograft tumor model
BMDMs体外刺激
LPS刺激浓度(50 ng/mL)、2-D08预处理浓度、IL-12刺激浓度(10 ng/mL)、刺激时间。
阅读提示:Methods - Cell culture
STAT4 K350R突变体实验
Stat4 siRNA靶向序列(3'-UTR)、腺病毒转导条件、CHX处理时间、MG-132处理浓度(20 μM)和时间(6小时)。
阅读提示:Methods - In vitro SUMOylation assay, STAT4 stability analysis
体外共培养
巨噬细胞与CD8+ T细胞共培养比例(1:5)、共培养时间(3-5天)、OVA脉冲时间(4小时)、抗CD3抗体浓度(1 μg/mL)。
阅读提示:Methods - CD8+ T cell coculture assays
流式细胞术分析
细胞表面染色和胞内染色流程、抗体孵育条件(冰上避光30分钟)、使用仪器(LSRFortessa)和分析软件(FlowJo)。
阅读提示:Methods - Flow cytometry analysis
RT-qPCR分析
RNA提取方法(Trizol)、cDNA合成试剂盒、SYBR Green PCR master mix、内参基因(β-actin)、相对定量方法(2−ΔΔCt)。
阅读提示:Methods - RNA extraction and quantitative real-time PCR analysis
Western blot分析
细胞裂解液成分(RIPA buffer)、蛋白酶抑制剂、一抗和二抗孵育条件、ECL显色、ImageJ软件分析灰度值。
阅读提示:Methods - Western blot analysis