TNFR2/14-3-3ε信号复合物在炎症和自身免疫中指导巨噬细胞可塑性

TNFR2/14-3-3ε signaling complex instructs macrophage plasticity in inflammation and autoimmunity

作者信息Wenyu Fu, Wenhuo Hu, Young-Su Yi, Aubryanna Hettinghouse, Guodong Sun, Yufei Bi, Wenjun He, Lei Zhang, Guanmin Gao, Jody Liu, Kazuhito Toyo-Oka, Guozhi Xiao, David B Solit, Png Loke, Chuan-Ju Liu
PMID34185706
发布时间2021-08-16
DOI10.1172/JCI144016

实验完整度

包含体外细胞实验(BMDM、Raw264.7)、基因敲除小鼠模型(全身和髓系特异性14-3-3ε敲除)、CIA关节炎模型、转录组测序及机制验证(信号通路和转录因子活性),功能验证和机制验证明确。

主要模型

骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) Raw264.7巨噬细胞系 胶原诱导关节炎(CIA)小鼠模型 14-3-3ε基因敲除小鼠

重点核对

BMDM极化条件:100 ng/mL LPS + 20 ng/mL IFN-γ(M1)或20 ng/mL IL-4(M2),处理18小时 TNFR2激动剂:0.5 μg/mL PGRN或2.5 μg/mL TY010 PI3K抑制剂wortmannin(100 nM)和mTOR抑制剂rapamycin(100 nM)预处理1小时 CIA模型:10周龄小鼠,鸡II型胶原(100 mg)与CFA(含4 mg/mL热灭活分枝杆菌)等体积乳化,皮内注射0.1 mL,第19天加强免疫 PGRN治疗剂量:5 mg/kg体重,腹腔注射,第20天开始隔天一次

摘要

TNFR1和TNFR2因在炎症和自身免疫发病机制中的主导作用而受到广泛关注。TNFR1已被广泛研究,主要介导炎症。TNFR2的研究则少得多,尽管新出现的证据表明TNFR2在各种疾病和条件下发挥抗炎和免疫调节作用。在此,我们报道TNFR2调节巨噬细胞极化,这是一个由 largely unidentified 细胞内调节因子控制的高度动态过程。利用生化共纯化和质谱方法,我们在巨噬细胞中响应颗粒蛋白前体(progranulin)刺激时分离出信号分子14-3-3ε作为TNFR2复合物的组分。此外,14-3-3ε对于TNFR2信号介导的巨噬细胞极化和转换的调节至关重要。14-3-3ε的全球性和髓系特异性缺失均导致炎症性关节炎加重,并抵消了progranulin介导的TNFR2激活对炎症和自身免疫的保护作用。TNFR2/14-3-3ε通过PI3K/Akt/mTOR信号通路限制NF-κB激活,同时刺激C/EBPβ激活,从而指导巨噬细胞可塑性。总的来说,本研究将14-3-3ε确定为TNFR2受体复合物的一个先前未被认识的重要组分,并为TNFR2信号传导提供了新的见解,特别是其在巨噬细胞极化中的作用,对激活TNFR2/14-3-3ε抗炎通路的各种炎症和自身免疫疾病具有治疗意义。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TNFR2信号如何调控巨噬细胞极化及其在炎症和自身免疫中的作用,特别是其胞内信号转导机制。
核心机制
TNFR2/14-3-3ε复合物通过激活PI3K/Akt/mTOR通路,限制NF-κB激活并同时刺激C/EBPβ激活,从而指导巨噬细胞向抗炎M2表型极化并抑制促炎M1表型。
主要证据
在BMDMs和Raw264.7细胞中,14-3-3ε缺失或敲除导致M1极化增强和M2极化减弱,并消除PGRN/TNFR2激动剂的作用;全身性或髓系特异性14-3-3ε敲除小鼠的CIA炎症加重,PGRN的保护作用丧失;RNA-seq和GSEA分析显示炎症通路上调,PI3K/Akt/mTOR通路受损;免疫印迹和DNA结合实验证实14-3-3ε缺失增强NF-κB活性并抑制C/EBPβ活性。
研究意义
该研究确定14-3-3ε是TNFR2复合物的关键组分,为TNFR2信号传导提供新见解,并提示靶向TNFR2/14-3-3ε抗炎通路可能成为治疗炎症性关节炎及其他炎症和自身免疫疾病的新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外巨噬细胞极化实验

评估TNFR2信号对巨噬细胞极化和表型转换的调控作用

从WT和TNFR2敲除小鼠中分离BMDMs,用LPS/IFN-γ或IL-4极化至M1或M2,并在极化过程中加入PGRN或TY010。检测M1(Il6、Nos2)和M2(Arg1、Mgl1)标志基因表达及流式细胞术分析iNOS和PD-L2。还进行表型转换实验,先极化至M1或M2,再转换至相反表型。

2

鉴定TNFR2复合物组分

分离TNFR2激活后招募的胞内信号分子

将TNFR2胞内域克隆至PGEX-3X载体表达GST-TNFR2ICD,用谷胱甘肽琼脂糖珠亲和纯化,作为诱饵捕获PGRN处理后的Raw264.7细胞裂解液中的蛋白,通过质谱鉴定。

3

验证14-3-3ε与TNFR2的相互作用

确认14-3-3ε是TNFR2复合物的功能组分

在14-3-3ε敲除的Raw264.7细胞和14-3-3εLysM BMDMs中进行免疫共沉淀,检测TNFR2与14-3-3ε的结合。同时用免疫荧光染色观察共定位。

4

评估14-3-3ε对巨噬细胞极化的影响

确定14-3-3ε是否是TNFR2调控巨噬细胞极化的必需介质

使用14-3-3εfl/fl和14-3-3εLysM BMDMs以及14-3-3ε敲除的Raw264.7细胞,进行极化实验,检测M1和M2标志基因表达,并观察PGRN的效应是否丧失。在14-3-3ε敲除细胞中重新表达Flag-14-3-3ε,验证功能恢复。

5

体内CIA模型验证

评估14-3-3ε在体内炎症和自身免疫中的作用及其对TNFR2激动剂保护效应的影响

在14-3-3ε全局敲除和髓系特异性敲除小鼠上建立CIA模型,用PGRN治疗。评估临床评分、发病率、组织学炎症和骨侵蚀,并用流式细胞术分析关节中巨噬细胞和T细胞亚群,ELISA检测血清细胞因子。

6

转录组测序及生物信息学分析

揭示14-3-3ε缺失对巨噬细胞转录组的影响及参与的信号通路

从14-3-3εfl/fl和14-3-3εLysM小鼠BMDMs提取RNA进行RNA-seq,分析差异表达基因,GSEA富集分析,并用TFactS预测转录因子。

7

信号通路机制验证

验证PI3K/Akt/mTOR、NF-κB和C/EBPβ在14-3-3ε调控巨噬细胞极化中的作用

通过免疫印迹检测Akt、p-Akt、IκKα/β、p-IκKα/β、p65、p-p65、C/EBPβ、p-C/EBPβ,并检测NF-κB p65和C/EBPβ的DNA结合活性。使用PI3K抑制剂wortmannin和mTOR抑制剂rapamycin处理BMDMs,观察对极化的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基----
胎牛血清----
巨噬细胞集落刺激因子Biolegend--
脂多糖Sigma-Aldrich--
干扰素-γPeprotech--
白细胞介素-4Peprotech--
颗粒蛋白前体----
TY010(TNFR2激动剂抗体)----
渥曼青霉素Sigma-Aldrich--
雷帕霉素Sigma-Aldrich--
核因子κB受体活化因子配体R&D--
肿瘤坏死因子-α----
鸡II型胶原Chondrex--
完全弗氏佐剂Chondrex--
抗髓过氧化物酶抗体InvitrogenPA5-16672
Vectastain Elite ABC试剂盒Vector--
胶原酶D----
分散酶II----
脱氧核糖核酸酶I----
抗CD4-FITC抗体eBioscience--
抗CD25-APC抗体eBioscience--
抗IL-17-eFluor450抗体eBioscience--
抗IL-4-PE抗体eBioscience--
抗IFN-γ-APC-Cy7抗体eBioscience--
抗Foxp3-生物素抗体eBioscience--
抗CD11b-FITC抗体eBioscience--
抗CD45-eFluor450抗体eBioscience--
抗iNOS-APC抗体eBioscience--
抗CD206-PE抗体eBioscience--
抗CD4-PE-Cy5抗体eBioscience--
链霉亲和素-Qdot605Thermo Fisher Scientific--
Click-iT EdU试剂盒Invitrogen--
MagniSort小鼠F4/80阳性选择试剂盒Invitrogen--
lentiCRISPR V2载体Addgene--
psPAX2质粒Addgene--
pMD2.G质粒Addgene--
嘌呤霉素Gibco--
EasySep小鼠中性粒细胞富集试剂盒Stemcell Technologies--
RNeasy小型试剂盒Qiagen--
High-Capacity cDNA逆转录试剂盒Applied Biosystems--
SYBR Green荧光染料Applied Biosystems--
实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
TransAM转录因子检测试剂盒(NF-κB p65)Active Motif43296
TransAM转录因子检测试剂盒(C/EBPβ)Active Motif44196
抗Akt抗体Cell Signaling Technology9272
抗磷酸化Akt Thr308抗体Cell Signaling Technology4056
抗磷酸化Akt Ser473抗体Cell Signaling Technology4058
抗IκKα抗体Cell Signaling Technology2682
抗IκKβ抗体Cell Signaling Technology8943
抗磷酸化IκKα/β抗体Cell Signaling Technology2697
抗p65抗体Cell Signaling Technology4764
抗磷酸化p65抗体Cell Signaling Technology3033
抗C/EBPβ抗体Cell Signaling Technology3087
抗磷酸化C/EBPβ抗体Cell Signaling Technology3084
抗14-3-3ε抗体Santa Cruz Biotechnologysc-393177
抗PGRN抗体Santa Cruz Biotechnologysc-28928
抗TNFR2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7862
IL-6 ELISA试剂盒Invitrogen--
IL-1β ELISA试剂盒Invitrogen--
TNF-α ELISA试剂盒Invitrogen--
IL-17 ELISA试剂盒Invitrogen--
IL-10 ELISA试剂盒Invitrogen--
谷胱甘肽琼脂糖珠----
他莫昔芬Sigma-Aldrich--
葵花籽油Sigma-Aldrich--
胰蛋白酶----
软骨素酶ABCSigma-Aldrich--
透明质酸酶Sigma-Aldrich--
番红O----
TRAP染色试剂盒----
蔡司显微镜Zeiss--
ImageJ软件----
BD LSR Fortessa流式细胞仪Becton Dickinson--
Illumina HiSeq 4000测序仪Illumina--
硝酸纤维素膜Bio-Rad Laboratories--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外巨噬细胞极化
BMDM分化时间(7天)、极化刺激浓度和处理时间(LPS 100 ng/mL + IFN-γ 20 ng/mL或IL-4 20 ng/mL,18小时)、PGRN和TY010浓度
阅读提示:Methods: Isolation of BMDMs and differentiation of BMDMs; Figure 1 legends
基因敲除小鼠构建
14-3-3εfl/fl与LysM-Cre或Rosa26a-CreERT2的杂交方案、他莫昔芬诱导条件(150 mg/kg体重,腹腔注射,连续5天)
阅读提示:Methods: Mice; Results: 14-3-3ε is a component of the TNFR2 complex...
CIA模型诱导与治疗
胶原用量(100 mg)、CFA中分枝杆菌浓度(4 mg/mL)、注射体积(0.1 mL)、免疫途径(皮内)、加强免疫时间(第19天)、PGRN给药剂量(5 mg/kg)和频率(隔天一次)
阅读提示:Methods: CIA model; Figure 4 legend
信号通路抑制剂处理
wortmannin和rapamycin浓度(100 nM)、预处理时间(1小时)
阅读提示:Methods: Isolation of BMDMs...; Figure 8F legend
RNA-seq分析
生物重复数(3)、差异表达基因标准(倍数变化>2,FDR<0.05)、GSEA显著基因集筛选标准(FDR<0.25)
阅读提示:Methods: RNA-seq and bioinformatics analysis; Figure 8, A and B legends