肿瘤内在的PD-L1/NLRP3炎症小体信号通路驱动抗PD-1免疫治疗耐药

A tumor-intrinsic PD-L1/NLRP3 inflammasome signaling pathway drives resistance to anti-PD-1 immunotherapy

作者信息Balamayoora Theivanthiran, Kathy S Evans, Nicholas C DeVito, Michael Plebanek, Michael Sturdivant, Luke P Wachsmuth, April Ks Salama, Yubin Kang, David Hsu, Justin M Balko, Douglas B Johnson, Mark Starr, Andrew B Nixon, Alisha Holtzhausen, Brent A Hanks
PMID32017708
发布时间2020-05-01
DOI10.1172/JCI133055

实验完整度

包含体外细胞实验、自发性小鼠肿瘤模型、同系移植瘤模型、人黑色素瘤细胞系及临床标本等多个独立证据层级,并包含功能验证(基因沉默、药理学抑制)和机制验证(信号通路分析)。

主要模型

BRAFV600E PTEN–/– 自发性黑色素瘤小鼠模型 BRAFV600E PTEN–/– 黑色素瘤细胞系 Lewis 肺癌(LLC)细胞系 WM266 人黑色素瘤细胞系

重点核对

PMN-MDSC定义:live+CD45+CD11b+Ly6G+Ly6CintF4/80– 抗PD-1抗体(200 μg,i.p.,每3天一次)和IgG同型对照处理 NLRP3抑制剂MCC950剂量(10 mg/kg i.p.,每隔一天,体内;2.5-10 μM,体外) CXCR2抑制剂AZD5069剂量(100 mg/kg p.o.,每天两次)

摘要

对癌症免疫逃逸机制的深入了解可能会推动免疫治疗策略的创新性进展。然而,关于这些机制及其如何影响免疫治疗耐药,目前仍有许多未知。通过使用几种临床前肿瘤模型以及临床标本,我们确定了一种机制,即CD8+ T细胞在程序性细胞死亡1(PD-1)阻断下的激活诱导了程序性死亡配体1/NOD-、LRR-和pyrin结构域包含蛋白3(PD-L1/NLRP3)炎症小体信号级联反应,最终导致粒细胞性髓源性抑制细胞(PMN-MDSCs)募集到肿瘤组织中,从而抑制由此产生的抗肿瘤免疫反应。NLRP3的遗传和药理学抑制可抑制PMN-MDSC肿瘤浸润,并显著增强抗PD-1抗体免疫治疗的疗效。因此,该通路代表了抗PD-1检查点抑制剂免疫治疗的肿瘤内在适应性耐药机制,是未来转化研究的一个有希望的靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
抗PD-1免疫治疗耐药的肿瘤内在机制是什么?
核心机制
CD8+ T细胞激活通过PD-1/PD-L1相互作用触发肿瘤细胞PD-L1信号,抑制STAT3,激活PKR依赖的NLRP3炎症小体,促进HSP70释放,进而通过TLR4-Wnt5a-YAP信号通路上调CXCR2配体(如CXCL5),招募PMN-MDSC至肿瘤组织,介导适应性免疫耐药。
主要证据
利用BRAFV600E PTEN–/–黑色素瘤模型、LLC模型及临床标本,通过RNA-Seq、qRT-PCR、Western blot、流式细胞术、IHC、ELISA及细胞共培养等实验证实该通路。
研究意义
该通路为抗PD-1免疫治疗提供了新的联合治疗靶点(如NLRP3抑制剂)和潜在生物标志物(如血浆HSP70水平),并可能参与免疫相关不良事件。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定抗PD-1治疗诱导的PMN-MDSC募集

确认抗PD-1治疗后肿瘤内PMN-MDSC的积累及其与免疫治疗耐药的相关性。

使用自发性BRAFV600E PTEN–/–黑色素瘤模型,经抗PD-1抗体或IgG同型对照治疗后,通过RNA-Seq、qRT-PCR、Gr-1 IHC和多参数流式细胞术检测PMN-MDSC浸润及CXCR2配体表达。

2

验证Wnt5a在PMN-MDSC募集中的作用

确定Wnt5a是否通过上调CXCR2配体介导PMN-MDSC募集。

通过TCGA数据分析WNT5A与CXCL2/CXCL5/CXCR2的相关性;Western blot检测Wnt5a、YAP、CXCL5表达;体外用重组Wnt5a处理黑色素瘤细胞系;体内用Wnt5a敲低的肿瘤模型观察PMN-MDSC浸润和肿瘤生长。

3

阐明HSP70/TLR4自分泌信号对Wnt5a的诱导

探究抗PD-1治疗后Wnt5a上调的上游机制。

通过LC-MS/MS分泌组学分析鉴定HSP70释放;ELISA检测血浆HSP70;qRT-PCR检测TLR表达;体外用重组HSP70处理肿瘤细胞,并用TLR4抑制剂或基因沉默验证其依赖性。

4

证明CD8+ T细胞激活NLRP3炎症小体并促进HSP70释放

验证CD8+ T细胞激活是否依赖NLRP3炎症小体诱导HSP70释放。

将OT-1 CD8+ T细胞与表达OVA的BRAFV600E PTEN–/–黑色素瘤细胞共培养,检测HSP70分泌和Wnt5a表达;使用NLRP3抑制剂或基因沉默验证;并检测ATP刺激下的HSP70释放。

5

揭示PD-L1依赖的NLRP3激活机制

确定PD-L1如何激活NLRP3炎症小体。

用IFN-γ和抗PD-L1抗体处理肿瘤细胞,检测caspase-1 cleavage、ASC聚合、PKR磷酸化及STAT3水平;通过基因沉默PD-L1或STAT3组成性激活验证信号通路。

6

评估NLRP3抑制对免疫治疗疗效的影响

验证抑制NLRP3是否可以增强抗PD-1免疫治疗的效果。

在自发性黑色素瘤模型中,使用NLRP3基因敲低或MCC950抑制剂与抗PD-1抗体联合治疗,检测肿瘤生长、免疫细胞浸润及信号通路蛋白表达。

7

验证信号通路在人黑色素瘤中的相关性

确认该信号通路在人类黑色素瘤中是否存在。

用WM266人黑色素瘤细胞系进行体外实验;分析TCGA-SKCM数据库中的基因表达相关性;对接受抗PD-1治疗的患者肿瘤和血浆样本进行RNA-Seq和ELISA分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Invitrogen, Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清----
L-谷氨酰胺----
青霉素----
重组Wnt5aR&D Systems, Bio-Techne645-WN-010
干扰素-γBioAbChem42-IFNg
抗PD-L1抗体Bio X CellBE0101
热休克蛋白70EnzoADI-ESP-502-D
HSP70抑制剂(VER155008)Thermo Fisher Scientific--
CLI-095(TLR4抑制剂)Invivogentlrl-cli95
MCC950(NLRP3抑制剂)Invivogeninh-mcc
三磷酸腺苷Invivogentlrl-atpl
维替泊芬(YAP抑制剂)R&D Systems, Bio-Techne530510
XAV939(β-连环蛋白抑制剂)MilliporeSigmaX3004-5MG
2-氨基嘌呤(PKR抑制剂)Invivogentlrl-apr
达卡巴嗪MilliporeSigmaD2390
抗β-肌动蛋白抗体Santa Cruz Biotechnologysc-47778
抗NLRP3抗体Cell Signaling Technology15101S
抗ASC抗体Santa Cruz Biotechnologysc-514414
抗caspase-1 p20抗体AdipogenAG-20B-0042-C100
抗HSP70抗体Santa Cruz Biotechnologysc-66048
抗CXCL5抗体R&D SystemsAF433
抗YAP/TAZ抗体Cell Signaling Technology8418S
抗Wnt5a抗体Santa Cruz Biotechnologysc-365370
抗GAPDH抗体Santa Cruz Biotechnologysc-32233
抗PKR抗体Santa Cruz Biotechnologysc-6282
抗磷酸化PKR (Thr446)抗体Abcamab32036
抗STAT3抗体Santa Cruz Biotechnologysc-8019
抗磷酸化STAT3抗体Cell Signaling Technology9131
抗纽蛋白抗体Invitrogen, Pierce, Thermo Fisher Scientific700062
抗小鼠CD8a抗体Bio X CellBE0004-1
InVivoMAb抗小鼠PD-1抗体Bio X CellBE0146
RNeasy Plus微型试剂盒QIAGEN74134
iScript逆转录预混液Bio-Rad1708841
SsoAdvanced通用SYBR Green预混液Bio-Rad1725271
SsoAdvanced通用探针预混液Bio-Rad1725281
小鼠CXCL5 ELISA试剂盒R&D Systems--
小鼠HSP70 ELISA试剂盒R&D SystemsDYC1663-2
人HSP70 DuoSet检测试剂盒R&D SystemsDY1663
小鼠IL-1β ELISA试剂盒BioLegend432601
CellTrace紫Thermo Fisher ScientificC34571
抗小鼠CD11b抗体(PE)BD Pharmingen558091
抗小鼠Ly6G抗体(FITC)BD Pharmingen553127
抗小鼠F4/80抗体(APC)BD Pharmingen560408
抗小鼠Ly6C抗体(PE-Cy7)BD Pharmingen560593
抗小鼠CD45抗体(PerCP-Cy5.5)BD Pharmingen551163
抗小鼠CD8a抗体(BV510)BD Pharmingen563068
抗人CD33抗体(BV510)BD Pharmingen563257
FACSCanto II流式细胞仪BD--
LSR II流式细胞仪BD--
PVDF膜Bio-Rad--
化学发光底物Thermo Fisher Scientific--
ChemiDoc XRSplus成像系统Bio-Rad--
DSS(双琥珀酰亚胺辛二酸酯)Thermo Fisher Scientific21655
Illumina HiSeq 4000测序仪Illumina--
AZD5069(CXCR2抑制剂)AstraZeneca--
4-羟基他莫昔芬MilliporeSigmaH6278
gentleMACS组织解离器Miltenyi Biotec--
IV型胶原酶MilliporeSigma--
透明质酸酶MilliporeSigma--
脱氧核糖核酸酶MilliporeSigma--
红细胞裂解液MilliporeSigma--
CD8磁珠Miltenyi Biotec130-104-075
SIINFEKL肽New England PeptideBP10-915
白细胞介素-2----
嘌呤霉素MilliporeSigmaP8833
G418----
重组IL-1βBioLegend575102
脂多糖MilliporeSigmaL4391
MPLA(TLR4激动剂)EnzoALX-581-205-C100
shRNA慢病毒载体MilliporeSigma--
pMD2.G包膜载体----
psPAX2包装载体----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
抗PD-1治疗模型
肿瘤模型类型(自发性或移植瘤)、药物剂量、给药途径、给药频率、治疗时间点
阅读提示:Methods: In vivo animal studies; Autochthonous tumor studies; Syngeneic transplant tumor studies
PMN-MDSC检测
组织消化方法、抗体克隆、荧光标记、流式细胞术门控策略、细胞计数方法
阅读提示:Methods: Murine cell isolation; Flow cytometric analysis
细胞共培养
OT-1 CD8+ T细胞激活条件(IL-2浓度、SIINFEKL浓度、培养时间)、共培养比例、处理时间
阅读提示:Methods: In vitro tumor-killing assays
NLRP3抑制
MCC950浓度、给药方式(体内i.p.或体外处理)、作用时间
阅读提示:Methods: Cell lines and culture conditions; Autochthonous tumor studies
基因沉默
shRNA序列、载体、筛选方法(如嘌呤霉素浓度)、沉默效率验证
阅读提示:Methods: Cell lines and culture conditions