DBR1敲低与过表达细胞系建立
验证DBR1表达水平对RNA套索积累和PKR激活的影响
在BJ、HEK293T、THP-1细胞中通过shRNA敲低DBR1或过表达DBR1,并通过RT-qPCR检测套索水平、Western blot检测蛋白表达。
Human DBR1 deficiency impairs stress granule-dependent PKR antiviral immunity
包括体外细胞实验(shRNA敲低、过表达、突变体)、患者细胞、小鼠模型(Dbr1Y17H/Y17H)及体内病毒感染实验,并包含机制验证(PKR、G3BP)和功能验证。
BJ人成纤维细胞 HEK293T细胞 患者SV40-永生化成纤维细胞 Dbr1Y17H/Y17H小鼠
DBR1敲低或患者突变导致的RNA套索水平升高(ID1、DKK1 lariat) PKR磷酸化及下游ISR基因(CHOP、ATF4)表达的变化 G3BP1/2蛋白表达水平,特别是在Dbr1Y17H/Y17H细胞和脑组织中 病毒感染(VSV、HSV-1)后的病毒复制水平及PKR激活状态 PKR敲除对DBR1抗病毒活性的消除作用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证DBR1表达水平对RNA套索积累和PKR激活的影响
在BJ、HEK293T、THP-1细胞中通过shRNA敲低DBR1或过表达DBR1,并通过RT-qPCR检测套索水平、Western blot检测蛋白表达。
评估DBR1对PKR激活和下游ISR通路的影响
用polyI:C转染或VSV/HSV-1感染细胞,检测PKR磷酸化、eIF2α磷酸化及ISR基因表达。
验证患者来源的DBR1突变体是否影响PKR激活
在HEK293T细胞中过表达患者突变体(L13G, Y17H, I120T, R197X),或用患者细胞系,检测polyI:C或病毒刺激后的PKR磷酸化。
确定DBR1的抗病毒作用是否依赖于PKR
在PKR+/+和PKR-/- BJ细胞中过表达DBR1或敲低DBR1,感染VSV/HSV-1,比较病毒复制水平。
验证RNA套索积累是否抑制PKR激活
从shDBR1细胞提取总RNA转染HEK293T细胞,检测病毒易感性和PKR磷酸化;构建套索表达质粒并在细胞中过表达。
探究DBR1缺失如何影响应激颗粒形成及G3BP蛋白稳定性
通过免疫荧光检测SG形成,用MG132/CQ处理检测G3BP降解途径,免疫沉淀和质谱分析G3BP相互作用。
评估DBR1在小鼠抗病毒免疫中的作用
生成Dbr1Y17H/Y17H小鼠,通过尾静脉注射VSV或HSV-1,观察存活率、病毒载量和PKR激活。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | 文中未明确说明 | -- |
| 1640培养基 | 文中未明确说明 | -- | |
| 胎牛血清 | 文中未明确说明 | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Biosharp | -- | |
| 细胞转染 | 聚肌苷酸-聚胞苷酸 | 文中未明确说明 | -- |
| 质粒构建 | ClonExpressII一步克隆试剂盒 | Vazyme | C112-01 |
| Mut Express II快速突变试剂盒V2 | Vazyme | C214-01/02 | |
| cDNA合成 | HiScript III第一链cDNA合成试剂盒(+gDNA wiper) | Vazyme | R323 |
| RNA提取 | RNA Isolator总RNA提取试剂 | Vazyme | R401-0 |
| RT-qPCR | ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q421-02 |
| C1000 Touch PCR CFX384 Touch实时荧光定量PCR检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解缓冲液 | Invent | IN-WB001 |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| 抗体 | 抗DBR1抗体 | Proteintech | 16019-1-AP |
| 抗G3BP1抗体 | Proteintech | 13057-2-AP | |
| 抗G3BP2抗体 | Proteintech | 16276-1-AP | |
| 抗PKR抗体 | Abways | CY5271 | |
| 抗磷酸化PKR (T446)抗体 | Abcam | ab32036 | |
| 抗磷酸化PKR (T446)抗体 | Abways | CY5271 | |
| 抗CHOP抗体 | AFFINITY | AF6277 | |
| 抗ATF4抗体 | AFFINITY | DF6008 | |
| 抗磷酸化eIF2α抗体 | ABclonal | A0764 | |
| 抗eIF2α抗体 | AFFINITY | AF6087 | |
| 抗Vinculin抗体 | BOSTER | A01207-1 | |
| 抗微管蛋白抗体 | Proteintech | 66031-1-Ig | |
| 免疫印迹成像 | Amersham Typhoon生物分子成像仪 | GE Healthcare | -- |
| ChemiScope 6200化学发光成像系统 | CLINX | -- | |
| 流式细胞术 | CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman | -- |
| 显微镜 | Leica STELLARIS STED显微镜 | Leica | -- |
| ZEISS LSM980带Airyscan共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 流式细胞术 | 流式透化缓冲液(10X) | Invitrogen | 00-8333-56 |
| 细胞转染 | 聚乙烯亚胺 | 文中未明确说明 | -- |
| 药物处理 | MG132 | 文中未明确说明 | -- |
| 巴佛洛霉素A1 | 文中未明确说明 | -- | |
| 氯喹 | 文中未明确说明 | -- | |
| 细胞培养 | 嘌呤霉素 | 文中未明确说明 | -- |
| 转染试剂 | 脂质体转染试剂(未明确) | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源和培养条件:BJ, HEK293T, THP-1, HeLa等细胞系,培养于DMEM或1640培养基,添加10% FBS和1%青霉素-链霉素;细胞系是否经支原体检测,结果阴性。 阅读提示:Methods - Cell culture |
| 病毒刺激 | 病毒株和感染剂量:VSV MOI 0.1,HSV-1 MOI 0.5;感染时间24小时或指定时间点;病毒是否表达GFP(VSV-GFP, HSV-1-GFP)。 阅读提示:Methods - Viral infection and chemical stimulation of the cells; Figure legends |
| PKR激活检测 | polyI:C剂量(1 µg/ml),转染方式,刺激时间(0h, 2h, 4h等);检测p-PKR、p-eIF2α、ISR基因(CHOP, ATF4)表达。 阅读提示:Methods - Preparation of cell extracts and western blotting; Figure legends |
| 蛋白质印迹 | 抗体信息:抗DBR1 (Proteintech 16019-1-AP), 抗G3BP1 (Proteintech 13057-2-AP), 抗G3BP2 (Proteintech 16276-1-AP), 抗PKR (Abways CY5271), 抗p-PKR (Abcam ab32036), 抗CHOP (AFFINITY AF6277), 抗ATF4 (AFFINITY DF6008), 抗p-eIF2α (ABclonal A0764), 抗eIF2α (AFFINITY AF6087), 抗VCL (BOSTER A01207-1), 抗tubulin (Proteintech 66031-1-Ig)。 阅读提示:Methods - Preparation of cell extracts and western blotting; Table S2 |
| 应激颗粒检测 | G3BP1/2免疫荧光染色条件(固定4% PFA,透化0.1% Triton X-100或100 µM digitonin);SG刺激物(polyI:C, VSV, HSV-1, SA 500 µM);SG量化方法。 阅读提示:Methods - Immunofluorescence microscopy; Figure 5 legend |