YTHDF2表达模式分析
检测YTHDF2在NK细胞中的基础表达及其对IL-15、MCMV感染和肿瘤进展的响应。
使用BioGPS数据库和GEO数据集分析m6A酶和阅读器的表达;通过qPCR和免疫印迹检测IL-15刺激、MCMV感染和B16F10肿瘤模型中的YTHDF2表达。
The RNA m6A reader YTHDF2 controls NK cell antitumor and antiviral immunity
包含细胞系体外实验、条件性敲除小鼠体内模型、多种功能验证(细胞毒性、细胞因子)及多组学机制验证(RNA-seq、m6A-seq、RIP-seq)。
小鼠NK细胞 B16F10黑色素瘤肺转移模型 MCMV感染模型 Rag2-/-Il2rg-/-小鼠过继转移模型
NK细胞特异性Ythdf2敲除(Ythdf2fl/fl Ncr1-iCre) B16F10细胞(105个)静脉注射建立转移模型 MCMV(2.5×10^4 PFU)腹腔注射感染 IL-15处理(体内2 μg/d,体外50 ng/ml) RNA-seq、m6A-seq和RIP-seq鉴定YTHDF2靶标
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测YTHDF2在NK细胞中的基础表达及其对IL-15、MCMV感染和肿瘤进展的响应。
使用BioGPS数据库和GEO数据集分析m6A酶和阅读器的表达;通过qPCR和免疫印迹检测IL-15刺激、MCMV感染和B16F10肿瘤模型中的YTHDF2表达。
验证YTHDF2在NK细胞抗肿瘤免疫中的必要性。
使用Ythdf2ΔNK小鼠(Ncr1-iCre)建立B16F10转移模型,分析肺转移结节、浸润NK细胞数量和功能分子表达;通过过继转移实验确认细胞内在作用。
验证YTHDF2在NK细胞抗病毒免疫中的必要性。
用MCMV感染Ythdf2WT和Ythdf2ΔNK小鼠,监测体重、病毒载量、NK细胞数量、增殖和效应分子表达。
研究YTHDF2在稳态下对NK细胞维持和成熟的作用。
分析Ythdf2ΔNK小鼠各器官NK细胞数量;通过抗CD45标记实验检测骨髓输出;通过CD11b/CD27标记分析成熟阶段;通过骨髓嵌合体实验验证细胞内在作用。
验证YTHDF2对NK细胞效应功能的直接作用。
检测Ythdf2ΔNK NK细胞的激活受体表达、细胞因子产生和细胞毒性。
确证YTHDF2是IL-15介导的NK细胞功能所必需的,并探索STAT5-YTHDF2正反馈环。
使用Stat5ΔNK小鼠和STAT5抑制剂验证STAT5调控YTHDF2;通过荧光素酶报告基因和ChIP-qPCR确证STAT5直接结合Ythdf2启动子;在Ythdf2ΔNK NK细胞中检测IL-15刺激下的增殖、凋亡、细胞周期和效应分子表达。
揭示YTHDF2调控NK细胞功能的分子机制。
对IL-2扩增的Ythdf2WT和Ythdf2ΔNK NK细胞进行RNA-seq、m6A-seq和RIP-seq,鉴定差异表达基因、m6A修饰和YTHDF2结合靶点;通过mRNA稳定性实验和siRNA敲低验证靶基因功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RNeasy Mini Kit | QIAGEN | -- |
| 反转录 | PrimeScript RT Reagent Kit with gDNA Eraser | Takara Bio | -- |
| qPCR | SYBR Green PCR Master Mix | Thermo Fisher Scientific | -- |
| QuantStudio 12K Flex实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 免疫印迹 | 抗METTL3抗体 | Proteintech | 15073-1-AP |
| 抗YTHDF2抗体 | MBL | RN123PW | |
| 流式细胞术 | CellTrace Violet | Invitrogen | -- |
| Foxp3/转录因子染色试剂盒 | eBioscience | -- | |
| Phosflow固定缓冲液I | BD Biosciences | -- | |
| Phosflow透化缓冲液III | BD Biosciences | -- | |
| MCMV感染 | DNeasy血液和组织试剂盒 | QIAGEN | -- |
| siRNA敲低 | Accell小鼠Tardbp siRNA | Dharmacon | E-040078-00-0005 |
| Accell递送培养基 | Dharmacon | -- | |
| 荧光素酶报告基因 | pGL4-Basic荧光素酶报告载体 | Promega | -- |
| pRL-TK海肾报告质粒 | Promega | -- | |
| 双荧光素酶系统 | Promega | -- | |
| ChIP | Pierce磁性ChIP试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 26157 |
| 细胞毒性实验 | EasySep小鼠NK细胞分离试剂盒 | STEMCELL Technologies | -- |
| m6A-seq | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Dynabeads mRNA纯化试剂盒 | Invitrogen | -- | |
| m6A抗体 | Synaptic | 202003 | |
| Magna MeRIP m6A试剂盒 | Merck Millipore | -- | |
| RNA Clean & Concentrator-5 | Zymo Research | -- | |
| KAPA RNA HyperPrep试剂盒 | Roche | -- | |
| RIP-seq | Protein A磁性微珠 | Invitrogen | 10001D |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型 | NK细胞特异性Ythdf2敲除小鼠(Ythdf2fl/fl Ncr1-iCre)的构建和验证;对照小鼠为同窝Cre阴性小鼠。 阅读提示:Materials and methods, Mice; Figure S1H-K |
| 肿瘤模型 | B16F10细胞(105个)静脉注射方式;14天后分析肺转移结节;肿瘤细胞系来源。 阅读提示:Materials and methods, Metastatic melanoma model; Figure 2 legend |
| 病毒感染模型 | MCMV(Smith株)剂量(2.5×10^4 PFU)和注射途径(腹腔);病毒载量检测方法。 阅读提示:Materials and methods, MCMV challenge; Figure 3 legend |
| IL-15处理 | 体内IL-15剂量(2 μg/d,腹腔注射,5天);体外IL-15浓度(50 ng/ml)和刺激时间。 阅读提示:Materials and methods, In vivo mouse treatment with IL-15; Figure 6 legend |
| 分子机制研究 | RNA-seq、m6A-seq和RIP-seq的样品制备(IL-2扩增NK细胞,50 million);差异表达基因筛选标准;m6A抗体和YTHDF2抗体信息。 阅读提示:Materials and methods, m6A-seq, YTHDF2 RIP-seq; Figure 7 legend |