评估谷氨酰胺剥夺对PDAC细胞表型的影响
确定谷氨酰胺剥夺是否诱导PDAC细胞发生EMT并增强迁移侵袭能力。
将KPC和AsPC-1细胞在无谷氨酰胺或低谷氨酰胺培养基中培养,通过RNA-seq分析转录组变化,用qPCR和Western blot检测EMT标志物,并通过Transwell实验评估迁移和侵袭。
Glutamine depletion regulates Slug to promote EMT and metastasis in pancreatic cancer
包含体外细胞实验、体内异位/原位肿瘤模型及转移模型,结合转录组学、功能验证和机制研究,证据层级多样。
KPC小鼠PDAC细胞系 EKPC小鼠PDAC细胞系 人PDAC细胞系AsPC-1、779E KPC原位同系小鼠模型
PDAC细胞系(KPC、AsPC-1等)在无谷氨酰胺培养基中培养24小时 谷氨酰胺浓度梯度(0-4 mM)处理 MEK/ERK抑制剂(Trametinib、SCH772984)和ISRIB处理 shRNA敲低Slug或ATF4的稳定细胞系 体内DON处理(10 mg/kg,隔天注射)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定谷氨酰胺剥夺是否诱导PDAC细胞发生EMT并增强迁移侵袭能力。
将KPC和AsPC-1细胞在无谷氨酰胺或低谷氨酰胺培养基中培养,通过RNA-seq分析转录组变化,用qPCR和Western blot检测EMT标志物,并通过Transwell实验评估迁移和侵袭。
阐明谷氨酰胺剥夺如何上调Slug表达。
检测EMT-TF表达,使用MEK/ERK抑制剂(Trametinib、SCH772984)和ISRIB处理,敲低ATF4,观察Slug表达变化。
确定体内谷氨酰胺剥夺是否诱导Slug表达。
使用谷氨酰胺类似物DON处理荷瘤小鼠,通过免疫组化和qPCR检测肿瘤中Slug表达,并分析Slug与代谢应激标志物ASNS的共定位。
确定Slug是否介导谷氨酰胺剥夺诱导的EMT和细胞生存。
构建Slug敲低的KPC细胞系,在谷氨酰胺剥夺条件下检测EMT标志物、迁移能力和细胞生存/凋亡。
确定Slug是否在体内调控PDAC转移。
通过尾静脉注射实验性转移模型和原位同系模型,评估Slug敲低对肺转移的影响,并分析人PDAC数据集中SLUG表达与患者生存的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Corning | -- |
| DMEM培养基 | Corning | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | 6-重氮-5-氧代-L-正亮氨酸 | Sigma-Aldrich | -- |
| ISRIB | Sigma-Aldrich | -- | |
| 衣霉素 | MP Biomedicals | -- | |
| SCH772984 | CHEMIETEK | -- | |
| 曲美替尼 | Selleckchem | -- | |
| 细胞培养 | α-酮戊二酸 | -- | -- |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 透析胎牛血清 | -- | -- | |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞培养 | psPAX2包装质粒 | -- | -- |
| pMD2.G包膜质粒 | -- | -- | |
| pLKO.1慢病毒载体 | Dharmacon | -- | |
| 组织样本处理 | 基质胶 | -- | -- |
| 免疫组化 | Vectastain Elite ABC HRP试剂盒 | Vector Labs | -- |
| DAB HRP底物试剂盒 | Vector Labs | -- | |
| ASNS抗体 | ProteinTech | 14681-1-AP | |
| SESN2抗体 | ProteinTech | 10795-1-AP | |
| Slug抗体 | Cell Signaling Technologies | 9585 | |
| cleaved caspase 3抗体 | Cell Signaling Technologies | 9664 | |
| KI-67抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA5-14520 | |
| 免疫印迹 | E-钙黏蛋白抗体 | Cell Signaling Technologies | 3195 |
| Snail抗体 | Cell Signaling Technologies | 3879 | |
| Zeb1抗体 | Sigma-Aldrich | HPA027524 | |
| ATF4抗体 | Cell Signaling Technologies | 11815 | |
| 磷酸化ERK抗体 | Cell Signaling Technologies | 4370 | |
| ERK抗体 | Cell Signaling Technologies | 4695 | |
| 磷酸化eIF2α抗体 | Cell Signaling Technologies | 9721 | |
| eIF2α抗体 | Cell Signaling Technologies | 9722 | |
| α-微管蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | T6074 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A1978 | |
| NewBlot IR剥离缓冲液 | LI-COR | -- | |
| RNA提取 | PureLink RNA小提试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| cDNA合成 | 高容量cDNA反转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RT-qPCR | SYBR Premix Taq II预混液 | Takara | -- |
| LightCycler 96实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| RNA-seq | QIAseq UPX 3'转录组试剂盒 | Qiagen | -- |
| NextSeq 500测序仪 | Illumina | -- | |
| Mid输出V2.5试剂盒 | Illumina | -- | |
| 蛋白浓度测定 | DC蛋白测定试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| 蛋白印迹 | Mini凝胶槽和Mini转印模块 | Life Technologies | -- |
| Odyssey CLx成像系统 | LI-COR | -- | |
| 细胞增殖 | Syto60染料 | Molecular Probes | S11342 |
| 凋亡检测 | Hoechst 33342染料 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞成像 | EVOS FL细胞成像系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 代谢物提取 | 组织研磨仪 | Qiagen | -- |
| 5毫米不锈钢珠 | Qiagen | -- | |
| 迁移/侵袭实验 | Transwell对照小室 | BD Biocoat | -- |
| 基质胶侵袭小室 | BD Biocoat | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养及谷氨酰胺剥夺 | 细胞系来源(KPC、AsPC-1、EKPC、779E),培养条件(RPMI或DMEM添加10%FBS),谷氨酰胺剥夺培养基(无谷氨酰胺、10%透析FBS),剥夺时间(通常24小时) 阅读提示:Materials and methods - Cells and cell culture conditions |
| Slug表达调控 | 谷氨酰胺浓度梯度、抑制剂处理浓度和时间(DON、ISRIB、Tunicamycin、SCH772984、Trametinib)、shRNA敲低效率 阅读提示:Materials and methods - Cells and cell culture conditions, Figure 2, Figure S2 |
| 体内实验 | 动物品系(C57BL/6J、NU/J)、细胞注入数量(皮下500,000、原位12,500、尾静脉200,000)、DON剂量和频率(10 mg/kg隔天)、肿瘤生长监测时间 阅读提示:Materials and methods - In vivo studies, Figure 3, Figure 5 |
| 迁移/侵袭实验 | 谷氨酰胺剥夺预培养条件(时间、浓度)、Transwell孔径(8 µm)、细胞数量、染色方法 阅读提示:Materials and methods - Migration and invasion assays, Figure 1 |