Tr1细胞在肾小球肾炎中产生并抑制效应Th17细胞

Tr1 Cells Emerge and Suppress Effector Th17 Cells in Glomerulonephritis

作者信息Shiwa Soukou-Wargalla, Christoph Kilian, Lis N Velasquez, Andres Machicote, Philine Letz, Huu Ban Tran, Saskia Domanig, Franziska Bertram, Friederike Stumme, Tanja Bedke, Anastasios Giannou, Jan Kempski, Morsal Sabihi, Ning Song, Hans-Joachim Paust, Alina Borchers, Laura Garcia Perez, Penelope Pelczar, Beibei Liu, Can Ergen, Babett Steglich, Franziska Muscate, Tobias B Huber, Ulf Panzer, Nicola Gagliani, Christian F Krebs, Samuel Huber
PMID37850963
期刊J Immunol
发布时间2023-12-01
DOI10.4049/jimmunol.2300305

实验完整度

包含小鼠模型、细胞实验、单细胞测序、体外抑制实验和体内转移实验等多个证据层级,明确进行了功能验证和机制验证。

主要模型

小鼠新月体肾小球肾炎模型(nephrotoxic nephritis) Rag1−/−小鼠体内转移模型 Foxp3mRFP IL-10eGFP报告小鼠 ANCA相关GN患者肾活检样本

重点核对

GN诱导:8-12周龄雄性小鼠腹腔注射抗肾小球基底膜抗血清 体内实验:1×10^5 Th17细胞单独或与2.5×10^3 Foxp3+ Treg或5×10^5 Tr1细胞转移至Rag1−/−小鼠,24小时后诱导cGN 体外抑制实验:1.5×10^4 responder细胞与7.5×10^4 APCs,加入1×10^4 Treg或Tr1细胞,培养96小时 anti-CD3治疗:在第8和10天注射15 μg anti-CD3抗体,4小时后分析

摘要

调节性T细胞1型(Tr1)细胞定义为具有调节功能、缺乏Foxp3并高表达IL-10、CD49b和LAG-3,已知其能在肠道中抑制Th1和Th17细胞。Th1和Th17细胞也是新月体肾小球肾炎(GN)的主要驱动因素,这是最严重的肾脏自身免疫性疾病。然而,Tr1细胞是否在肾脏炎症中产生,以及它们在GN期间是否表现出调节功能,尚未被深入研究。为解决这些问题,我们使用了实验性新月体GN小鼠模型和双Foxp3mRFP IL-10eGFP报告小鼠。我们发现,在GN进展期间,Foxp3neg IL-10产生的CD4+ T细胞浸润肾脏。通过单细胞RNA测序,我们证明这些细胞表达Tr1细胞特征的核心转录因子。与此一致,Tr1细胞在体外表现出强的抑制活性,并在体内实验性新月体GN中具有保护作用。最后,我们还鉴定了抗中性粒细胞胞质自身抗体相关GN患者肾脏中的Tr1细胞,并定义了它们的转录谱。Tr1细胞目前已被用于几种免疫介导的炎症性疾病,例如T细胞疗法。因此,我们的研究为基于Tr1细胞的实验性GN疗法提供了概念验证。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Tr1细胞是否在肾小球肾炎中产生并发挥调节功能,以及能否作为基于T细胞的治疗靶点?
核心机制
Tr1细胞通过高表达IL-10和抑制性受体,抑制效应Th17细胞介导的肾脏炎症。
主要证据
小鼠实验性新月体GN模型和Fate+报告小鼠显示Foxp3neg IL-10+ CD4+ T细胞浸润;单细胞RNA测序鉴定Tr1细胞转录特征;体外抑制实验显示其抑制CD4+ T细胞增殖;体内转移实验显示Tr1细胞抑制Th17细胞介导的GN并提高生存率。
研究意义
为基于Tr1细胞的T细胞疗法用于肾小球肾炎患者提供了概念验证。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

分析GN中产生IL-10的T细胞群体

评估在实验性新月体GN进展过程中IL-10产生CD4+ T细胞的浸润情况。

在Fate+报告小鼠中诱导cGN,通过流式细胞术和免疫组化分析IL-10+ Foxp3+和Foxp3neg细胞的比例及新月体形成。

2

anti-CD3抗体处理促进IL-10产生T细胞

确定anti-CD3抗体处理是否能扩增肾脏中Foxp3neg IL-10产生CD4+ T细胞。

诱导cGN后,在第8和10天腹腔注射anti-CD3抗体或PBS,4小时后分析肾脏IL-10+细胞数量和亚群。

3

单细胞RNA测序鉴定Tr1细胞转录特征

无监督表征Foxp3neg IL-10产生CD4+ T细胞的转录组,鉴定Tr1细胞。

从对照或anti-CD3处理的小鼠肾脏中分选Foxp3neg IL-10+ CD4+ T细胞,进行10×单细胞RNA测序,并进行聚类和Tr1评分分析。

4

通过流式细胞术鉴定Tr1细胞表面标记

验证肾脏中表达CIR(CD49b、LAG-3、TIGIT、TIM-3)的Foxp3neg IL-10+细胞的存在。

诱导cGN后,用anti-CD3或PBS处理,通过流式细胞术分析Foxp3neg IL-10+细胞中抑制性受体的共表达。

5

体外抑制实验验证Tr1细胞功能

评估肾脏来源的Foxp3neg IL-10产生CD4+ T细胞的免疫抑制能力。

从肾脏中分选Foxp3neg IL-10+细胞或Foxp3+ Tregs,与CellTrace Violet标记的responder细胞共培养,检测增殖抑制情况。

6

体内转移实验验证Tr1细胞保护作用

评估体外分化的Tr1细胞是否能抑制Th17细胞介导的实验性GN。

将Th17细胞单独或与Tr1细胞或Foxp3+ Tregs共同转移至Rag1−/−小鼠,24小时后诱导cGN,10天后评估存活率和新月体形成。

7

人类ANCA相关GN中Tr1细胞的鉴定

验证人类ANCA相关GN肾脏中是否存在Tr1细胞。

从已有单细胞RNA测序数据中分析ANCA GN患者肾活检CD4+ T细胞,鉴定表达CIR的Foxp3neg细胞。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证机制链路

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
实验性新月体GN诱导
小鼠品系、年龄、性别;抗肾小球基底膜血清的剂量和注射方式
阅读提示:Materials and Methods中"Induction of experimental crescentic GN"
anti-CD3治疗
抗体剂量、注射时间点和频率;注射后分析时间
阅读提示:Materials and Methods中"Anti-CD3 specific Ab mouse model"
Th17和Tr1细胞分化
细胞因子浓度(TGF-β、IL-6、IL-23、IL-27等);抗体浓度(anti-CD3、anti-CD28、anti-IFN-γ、anti-IL-4);培养时间;APC数量和照射剂量;起始细胞数量和纯度
阅读提示:Materials and Methods中"T-cell differentiation and in vivo transfer model"
体内转移实验
细胞转移数量和比例;转移与GN诱导的时间间隔;小鼠品系(Rag1−/−)
阅读提示:Materials and Methods中"T-cell differentiation and in vivo transfer model"
肾脏白细胞分离
胶原酶D浓度、DNase I浓度、消化时间和温度;Percoll梯度条件
阅读提示:Materials and Methods中"Isolation of lymphocytes from different organs"