疼痛患者干细胞来源的感觉神经元的自发活动源于一个功能性亚类

Spontaneous activity in pain patient stem cell-derived sensory neurons arises from one functional subclass

作者信息Esther Eberhardt, Barbara Namer, Anika Neureiter, Jannis Körner, Ellen Jørum, Ingo Kurth, Beate Winner, Angelika Lampert
PMID41428412
期刊Pain
发布时间2026-04-01
DOI10.1097/j.pain.0000000000003865

实验完整度

包含患者C纤维微神经图、iSNs膜片钳、MEA记录、免疫荧光染色等多个独立实验层级,并进行了功能亚型划分和自发活动机制验证。

主要模型

患者来源的iPSC分化的感觉神经元(iSNs) 健康供体来源的iPSC分化的感觉神经元(iSNs) 患者C纤维(微神经图记录)

重点核对

iSNs分化天数至少60天 膜片钳记录中细胞外液TTX浓度500 nM MEA记录中采样率12.5 kHz/通道 微神经图记录中C纤维分类标准 患者SCN3B基因变异(β3 L10P)

摘要

外周感觉神经纤维的自发活动是神经病理性疼痛的主要驱动因素之一。它可以在患者的C纤维的微神经图记录以及人和啮齿动物的离体背根神经节的膜片钳记录中进行评估。在人类C纤维的微神经图中,一个独特的神经元亚群,即所谓的机械不敏感(CMi)或睡眠伤害感受器,在神经病理性疼痛期间表现出自发活动。先前研究表明,来自患者来源的诱导多能干细胞的感觉神经元(iSNs)可用于在体外模拟这种增加的自发活动,表明这种方法产生了疾病相关的细胞类型。人类C纤维自发活动的起源尚未完全了解。衍生的感觉神经元提供了研究患者来源的单细胞功能的独特可能性,从而有助于识别C纤维自发活动潜在机制。在这里,我们通过膜片钳记录,从健康供体和一名患有神经病理性疼痛综合征遗传性红斑性肢痛症的患者中识别出4种不同的iSNs功能亚型。与同一患者的微神经图记录类似,自发活动仅限于一个功能性亚群,该亚群表现为强直性放电行为,并且似乎特别容易发展为神经元过度兴奋。我们证明自发活动与动作电位产生的电压阈值降低和膜电位自发去极化波动增加相关。我们的发现揭示,只有强直性放电的iSNs功能亚类表现出自发活动,并表明这些神经元可能与疼痛患者微神经图记录中发现的病理活跃的CMi纤维有关。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
患者来源的iSNs中自发活动是否仅限于特定的功能性亚类,其电生理机制是什么?
核心机制
自发活动与动作电位电压阈值降低和自发去极化波动(SFs)增大相关,这些波动可能触发动作电位。
主要证据
通过膜片钳记录发现,自发活动仅出现在强直性放电的iSNs亚类中,与健康对照相比,患者来源的强直性iSNs具有更低的基强度和更超极化的电压阈值,且SFs幅度更大。
研究意义
研究结果提示强直性放电的iSNs亚类可能与病理活跃的CMi纤维相关,有助于理解神经病理性疼痛的机制,并为个性化疼痛治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者C纤维微神经图记录

评估患者C纤维的自发活动和神经病理性改变

对患者的腓总神经进行微神经图记录,分类C纤维并检测自发活动和传导特性。

2

iPSC分化及iSNs鉴定

获得患者和健康对照的感觉神经元用于电生理研究

通过小分子方案将hiPSCs分化为感觉神经元,利用外周蛋白和SST染色鉴定神经元身份,并记录TTXr电流。

3

iSNs电生理记录及功能亚型分类

识别iSNs的功能性亚型并分析其电生理特性

通过全细胞膜片钳记录,根据放电模式将iSNs分为强直、时相、中间和高阈值多放电亚型。

4

MEA记录评估网络自发活动

在群体水平比较患者和对照iSNs的自发活动

使用MEA系统记录iSNs的自发放电,统计活动电极数和放电频率。

5

免疫荧光染色验证神经元亚型

检测iSNs中SST和Peripherin表达,评估CMi相关标记

对iSNs进行Peripherin和SST免疫荧光染色,定量SST阳性细胞比例。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化

产品清单

实验环节名称品牌货号
CytoTune-iPS 2.0仙台病毒重编程试剂盒Thermo Fischer Scientific--
mTeSR1培养基Stemcell Technologies--
基质胶Corning--
SB-431542Miltenyi Biotech--
LDN-193189Miltenyi Biotech--
SU-5402Tocris Bioscience--
DAPTTocris Bioscience--
Chir-99021Tocris Bioscience--
Y27632Tocris Bioscience--
AccutaseThermo Fischer Scientific--
DMEM-F12培养基Invitrogen/Thermo Fischer Scientific--
敲除血清替代物Thermo Fischer Scientific--
B27添加剂Thermo Fischer Scientific--
N2添加剂Thermo Fischer Scientific--
抗坏血酸Sigma-Aldrich--
β-神经生长因子R&D systems--
脑源性神经营养因子PeproTech--
胶质细胞源性神经营养因子PeproTech--
人神经营养因子3PeproTech--
阿糖胞苷Sigma-Aldrich--
层粘连蛋白Thermo Fischer Scientific--
EPC 10 USB放大器HEKA electronics--
Maestro 768通道MEA系统Axion BioSystems--
钨电极Frederick Haer--
恒流刺激器DS7ADigitimer--
抗Oct3/4抗体Santa Cruz Biotechnologysc-9081
抗SOX2抗体Cell Signaling Technology4900
抗Nanog抗体Cell Signaling Technology4903
抗Lin28A抗体Cell Signaling Technology5930
抗外周蛋白抗体Santa Cruz Biotechnologysc-377093
抗SST抗体Synaptic Systems366017

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
iSNs分化
分化方案、培养天数(至少60天)、神经营养因子添加
阅读提示:Methods 2.2
膜片钳记录
记录温度(室温)、电极电阻(2.0-3.5 MΩ)、细胞外液成分、电流刺激参数
阅读提示:Methods 2.3.1
MEA记录
采样率、滤波器设置、检测阈值(6×SDs)、记录时长(2分钟)
阅读提示:Methods 2.3.2
微神经图记录
神经束、刺激参数、C纤维分类标准
阅读提示:Methods 2.3.3
免疫荧光染色
抗体稀释度、孵育时间、成像系统
阅读提示:Methods 2.4