H3K56乳酸化促进II型胶原合成以调节创伤后骨关节炎中的软骨细胞代谢

H3K56 lactylation promotes collagen II synthesis to modulate chondrocyte metabolism in posttraumatic osteoarthritis

作者信息Zicai Dong, Di Liu, Guangyun Hu, Zeyu Yang, Qin Shu, Qijie Dai, Hao Tang, Chuan Yang, Chunrong Zhao, Xiaoshan Gong, Rujie Wang, Weikai Kong, Shiwu Dong
PMID41822785
发布时间2025-11-06
DOI10.1093/burnst/tkaf073

实验完整度

高

研究包含体外原代软骨细胞实验(抑制剂、敲低/过表达、ChIP-qPCR、Co-IP)和体内ACLT小鼠模型(组织学、micro-CT、免疫组化),并涉及组学(RNA-seq、质谱)分析,包含功能验证和机制验证。

主要模型

原代小鼠软骨细胞 前交叉韧带横断(ACLT)诱导的创伤后骨关节炎小鼠模型 原代小鼠心肌细胞

重点核对

原代软骨细胞分离自5日龄雌性C57BL/6J小鼠的膝关节软骨 ACLT手术在8周龄雌性C57BL/6J小鼠上进行,实验组和假手术组各5只 αKG体内给药方式为饮水,剂量为0.25%和0.75% 体外实验中,αKG处理浓度为1 mM和2 mM,TBHP处理浓度为20 μM HIF 1α敲低和过表达均通过转染实现,转染时间为48小时

摘要

背景:细胞内糖酵解乳酸的积累是软骨细胞的一个标志性特征。组蛋白乳酸化是一种由乳酸介导的翻译后修饰,在调节软骨细胞的生理功能中发挥关键作用,并参与创伤后骨关节炎的发病机制。本研究旨在探讨糖酵解乳酸依赖的组蛋白H3赖氨酸56乳酸化(H3K56la)在调节软骨细胞II型胶原合成中的作用。此外,通过结合实验室和动物实验方法,该研究试图为创伤后骨关节炎管理的潜在治疗策略提供新见解。方法:在体外实验中,研究人员首先进行了抑制和诱导软骨细胞组蛋白乳酸化的测定,随后测量了缺氧诱导因子1α(HIF 1α)和II型胶原α1链基因(Col2a1)表达水平的变化。接下来,我们评估了软骨细胞中HIF 1α敲低或过表达后细胞内乳酸化水平和Col2a1表达的变化。为了进一步阐明HIF 1α和Col2a1之间的调控关系,进行了染色质免疫沉淀测定以研究HIF 1α对Col2a1基因启动子的转录控制。此外,使用前交叉韧带横断手术建立了创伤后骨关节炎的小鼠模型。随后进行了体内和体外实验,以探索调节软骨细胞组蛋白乳酸化相关的软骨保护机制和治疗潜力。结果:软骨细胞中组蛋白乳酸化的诱导导致HIF 1α表达的显著上调。相反,HIF 1α的敲低导致H3K56乳酸化和Col2a1表达均显著减少。研究发现H3K56la和HIF 1α协同作用正向调节胶原合成,HIF 1α直接结合Col2a1基因的启动子区域以增强其转录。α-酮戊二酸处理改变了细胞氧化还原状态,并有助于增加H3K56la和Col2a1的表达。结论:糖酵解乳酸/H3K56la/HIF 1α调控轴通过促进HIF 1α与Col2a1基因启动子的结合,在软骨细胞II型胶原合成中发挥正向调节作用。激活该分子通路有望成为治疗创伤后骨关节炎的新型治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
糖酵解乳酸依赖的组蛋白H3K56乳酸化(H3K56la)如何调节软骨细胞中II型胶原的合成,以及这种调节在创伤后骨关节炎中的治疗潜力?
核心机制
糖酵解乳酸/H3K56la/HIF 1α正向调控轴:细胞内乳酸水平升高促进H3K56乳酸化,H3K56la与HIF 1α协同作用,HIF 1α直接结合Col2a1基因启动子增强其转录,从而促进II型胶原合成。αKG通过改变细胞氧化还原状态(增加NADH和NADPH)促进乳酸流入细胞,激活此通路。
主要证据
体外实验:原代软骨细胞中,乳酸处理上调HIF 1α和Col2a1表达;HIF 1α敲低降低H3K56la和Col2a1表达,过表达则增加;ChIP-qPCR证实HIF 1α结合Col2a1启动子。体内实验:ACLT小鼠模型中,αKG治疗(饮水0.25%和0.75%)恢复了H3K56la和HIF 1α表达,减轻了骨赘形成、软骨下骨硬化、软骨侵蚀和OARSI评分。
研究意义
激活糖酵解乳酸/H3K56la/HIF 1α通路可能代表一种治疗创伤后骨关节炎的新治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证软骨细胞中糖酵解乳酸依赖的组蛋白乳酸化

确认软骨细胞中乳酸水平与组蛋白乳酸化的关系,并鉴定乳酸化修饰位点。

使用糖酵解抑制剂2-DG和LDHA抑制剂(oxamate, FX-11)处理原代软骨细胞,检测细胞内乳酸水平和乳酸化水平;添加外源性乳酸验证对乳酸化的影响;通过HPLC-MS鉴定乳酸化位点;通过pull-down实验验证H3K56la的存在。

2

建立糖酵解乳酸/H3K56la/HIF 1α正向调控轴与胶原合成的关系

探究H3K56la和HIF 1α对Col2a1表达的调控作用及其相互作用。

对乳酸处理的软骨细胞进行RNA-seq分析,检测HIF 1α和Col2a1表达变化;使用CBP/P300抑制剂验证乳酸化对HIF 1α和Col2a1表达的影响;通过siRNA敲低和质粒过表达HIF 1α,检测H3K56la水平、Col2a1表达、细胞内乳酸和丙酮酸水平;用FX-11抑制LDHA验证其对经HIF 1α过表达诱导的乳酸化和Col2a1表达的影响;通过Co-IP检测HIF 1α和LDHA的结合;通过ChIP-qPCR验证HIF 1α与Col2a1启动子的结合。

3

评估αKG对软骨细胞氧化还原状态和细胞活力的影响

确定αKG是否能改变软骨细胞的氧化还原状态并保护细胞免受氧化应激损伤。

用不同浓度的αKG和TBHP处理软骨细胞,进行CCK8细胞活力测定;ELISA检测乙酰辅酶A、琥珀酰辅酶A、αKG脱氢酶和ATP水平;检测NAD/NADH和NADP/NADPH比率;用DCFH-DA探针检测ROS水平;通过流式细胞术分析细胞凋亡;通过透射电镜观察线粒体形态。

4

评估αKG在体内对ACLT诱导的创伤后骨关节炎的治疗效果

验证αKG治疗是否通过调节H3K56la/HIF 1α轴缓解小鼠创伤后骨关节炎的病理变化。

对8周龄雌性C57BL/6J小鼠进行ACLT手术建立PTOA模型,术后通过饮水给予αKG(0.25%和0.75%)治疗4周。通过micro-CT分析骨赘和软骨下骨结构;通过免疫荧光检测HIF 1α和H3K56la表达;通过免疫组化检测Col2a1, Aggrecan, MMP13和ADAMTS5表达;通过HE、番红O和甲苯胺蓝染色评估软骨组织学变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
胰蛋白酶----
IV型胶原酶----
细胞计数试剂盒-8 (CCK-8)----
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒SolarbioCA1020
无EDTA胰蛋白酶BeyotimeC0205
CytoFLEX流式细胞仪Beckman Coulter--
切片机LeicaRM2125
玻片扫描仪OlympusVS200
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
核蛋白提取试剂SolarbioR0050
Col2a1抗体BeyotimeAF6528
ADAMTS5抗体Biossbs-3573R
Aggrecan抗体BeyotimeAF6126
MMP13抗体BeyotimeAF7479
β-actin抗体BeyotimeAF0003
Histone H3抗体BeyotimeAF0009
Histone H4抗体BeyotimeAF2581
泛赖氨酸乳酸化抗体PTMPTM-1401
泛赖氨酸乙酰化抗体PTMPTM-101
H3K56la抗体PTMPTM-1421RM
HIF 1α抗体CST36169
HIF 1α抗体BeyotimeAF7087
HIF 1α抗体Huabio--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher--
LV003-HIF 1α质粒----
乳酸检测试剂盒BioVisionK627
PrimeScript™ RT Master Mix反转录试剂Takara--
SYBR Premix Ex Taq™ PCR试剂Takara--
ATP检测试剂盒BeyotimeS0027
NAD/NADH检测试剂盒BeyotimeS0175
NADP/NADPH检测试剂盒BeyotimeS0179
DCFH-DA荧光探针BeyotimeS0033S
透射电子显微镜HitachiHT7800
α-酮戊二酸----
2-脱氧-D-葡萄糖----
草氨酸----
FX-11----
CBP/P300-IN-3----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、年龄:8周龄雌性C57BL/6J小鼠;ACLT手术操作;动物分组:假手术组和ACLT组各5只;饲养环境:温度和湿度控制。
阅读提示:Methods - Animal osteoarthritis model
原代细胞分离与培养
软骨细胞来源(5日龄雌性C57BL/6J小鼠关节软骨);消化条件和时间(0.25%胰蛋白酶60分钟,0.25%胶原酶IV 6小时);培养条件(DMEM+10%FBS,37°C,5% CO2)。
阅读提示:Methods - Isolation and culture of mouse chondrocytes and cardiomyocytes
细胞处理
αKG浓度(1mM和2mM);TBHP浓度(20μM用于诱导氧化应激);处理时间(αKG 24小时;TBHP 6小时);2-DG和乳酸处理方式。
阅读提示:Methods - Cell proliferation assay, Results - Addition of αKG altered the redox state in chondrocytes
分子生物学检测
HIF 1α siRNA和过表达质粒转染条件和时间(48小时);ChIP-qPCR中甲醛交联时间和条件;抗体使用信息;qPCR引物序列。
阅读提示:Methods - Si-RNA transfection and plasmid transfection, Chromatin immunoprecipitation (ChIP)-qPCR, qPCR analysis
体内给药
αKG给药方式(饮水)和剂量(0.25%和0.75%);治疗持续时间(4周)。
阅读提示:Methods - Animal osteoarthritis model, Results - αKG alleviated osteoarthritis by promoting H3K56 lactylation and HIF 1α expression