体外休眠模型建立与表征
通过血清剥夺和高密度接种诱导前列腺癌细胞休眠,并验证其休眠特征。
在无血清高糖DMEM中以91,000 cells/cm²密度培养RM1和22Rv1细胞,观察休眠簇形成,并通过流式细胞术检测Ki-67、EdU掺入、DiD膜标记和细胞周期分析,证实细胞周期阻滞和存活。
PRDM16 Regulates Prostate Cancer Cell Dormancy and Prevents Bone Metastatic Outgrowth
包含体外细胞休眠模型、RNA-seq、遗传学操作(siRNA/过表达)、体内IIA接种小鼠模型、临床样本数据关联分析以及ChIP-qPCR机制验证,证据层级丰富,功能与机制验证明确。
RM1小鼠前列腺癌细胞系 22Rv1人前列腺癌细胞系 LAPC4人前列腺癌细胞系 C57BL/6J小鼠原位及骨转移模型
休眠诱导条件:91,000 cells/cm²接种于无血清高糖DMEM(4.5 g/L葡萄糖),观察12-36小时形成簇 IIA接种剂量:每只小鼠5×10^4个细胞(50 μL体积),经左侧髂总动脉注射 PRDM16过表达载体:Lenti ORF Prdm16-Myc-DDK (MR222596L3V),RM1细胞MOI=5,22Rv1细胞MOI=1 siRNA敲低:Dharmacon SMARTPool(小鼠L-041318-01-0005;人L-007043-02-0005),使用Lipofectamine转染 体内终点定义:第13天(IIA研究)或出现肢体瘫痪/生物发光达1×10^6 RLU
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过血清剥夺和高密度接种诱导前列腺癌细胞休眠,并验证其休眠特征。
在无血清高糖DMEM中以91,000 cells/cm²密度培养RM1和22Rv1细胞,观察休眠簇形成,并通过流式细胞术检测Ki-67、EdU掺入、DiD膜标记和细胞周期分析,证实细胞周期阻滞和存活。
鉴定在休眠诱导过程中普遍上调的候选基因。
对RM1、22Rv1和LAPC4细胞的活跃、休眠和苏醒状态进行RNA-seq,通过PCA和DESeq2分析差异表达基因,并结合转录因子活性推断识别PRDM16上调。
验证PRDM16表达与体内骨转移休眠的相关性及PRDM16的功能作用。
建立原位肿瘤自发转移模型和实验性骨转移模型(IIA接种),通过生物发光成像和组织学染色评估肿瘤生长和休眠状态,并在遗传操作后观察骨转移爆发情况。
证明PRDM16对休眠表型的关键作用。
通过siRNA敲低和内源性过表达,检测休眠簇形成效率、细胞存活(CC3、BCL-2等)和细胞周期变化。
验证PRDM16是否直接结合RB1启动子区域并调控其表达。
利用ChIP-qPCR分析PRDM16在RB1启动子区的结合,并通过免疫印迹和免疫荧光检测RB1及pRB1(S249/Th252)水平。
评估PRDM16表达与前列腺癌患者复发和骨髓DTC特性的相关性。
分析GSE25136数据集(患者复发状态)和GSE48995数据集(NED骨髓DTC转录谱),通过Spearman相关分析PRDM16与E2F程序的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | 11875-093 |
| DMEM培养基 | Gibco | 11995-073 | |
| 胎牛血清 | Peak | PK-FBS1 | |
| 抗生素-抗真菌剂(100×) | Gibco | 15140-122 | |
| 胰蛋白酶-EDTA(0.25%) | Gibco | 25200-056 | |
| 磷酸盐缓冲液(pH 7.4) | Gibco | 70011-044 | |
| 休眠诱导 | Vybrant DiD染料 | Invitrogen | V22889 |
| Click-iT Plus EdU试剂盒 | Invitrogen | C10632 | |
| Zombie NIR活/死细胞染料 | BioLegend | 423105 | |
| DAPI | Thermo Fisher Scientific | 62247 | |
| 细胞周期分析 | Ki-67抗体 | BD Biosciences | 563755 |
| 细胞培养 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白提取 | Halt蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Thermo Fisher Scientific | 78444 |
| 亚细胞蛋白分级分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 78840 | |
| 药物处理 | 骨形态发生蛋白7 | R&D Systems | 5666-BP-010/CF; |
| 头蛋白 | R&D Systems | 1967-NG-025/CF; | |
| SB203580 | Selleck Chemicals | s1076 | |
| 转染 | Lipofectamine转染试剂 | Invitrogen | 13778-075 |
| Opti-MEM培养基 | Gibco | 31985-070 | |
| RNA提取 | RNeasy纯化试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| DNase处理 | Qiagen | 79254 | |
| TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596 | |
| 逆转录 | 高容量cDNA逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | 4368813 |
| qPCR | SYBR Green预混液 | Thermo Fisher Scientific | 4364346 |
| RNA-seq | NuGEN通用RNA-seq文库制备试剂盒(含NuQuant) | NuGEN Technologies | -- |
| Kapa文库定量试剂盒 | Roche | -- | |
| Illumina NextSeq 2000测序仪 | Illumina | -- | |
| Qubit荧光计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Agilent TapeStation 4200 | Agilent | -- | |
| 流式细胞术 | BD LSR II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞活力检测 | MTS试剂 | Promega | G5421 |
| 动物实验 | Matrigel基质胶 | Corning | 354230 |
| D-荧光素 | GoldBio | LUCK-1G | |
| IVIS 200成像系统 | PerkinElmer | -- | |
| 组织处理 | 抗原修复液Citra Plus | BioGenex | HK080-9K |
| 免疫荧光 | 山羊血清 | Vector Labs | S-1000-20 |
| 含DAPI的VECTASHIELD抗淬灭封片剂 | Vector Labs | H1200-10 | |
| Cell-Tak细胞黏附剂 | Thermo Fisher Scientific | CB-40240 | |
| HistoGel凝胶 | Epredia | HG-4000-012 | |
| ChIP | ChIP-IT高灵敏度试剂盒 | Active Motif | 53040 |
| DDK抗体 | OriGene | TA50011-30 | |
| Protein G琼脂糖珠 | -- | -- | |
| ChIP过滤柱 | Active Motif | 53037 | |
| DNA检测 | Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | BP151-100 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外休眠诱导 | 细胞接种密度(91,000 cells/cm²)、血清剥夺条件(无血清高糖DMEM)、簇形成时间(12-36小时) 阅读提示:见“Dormancy assessment”部分,图1 |
| PRDM16敲低实验 | siRNA序列(SMARTPool)、转染条件(细胞数、Lipofectamine用量、孵育时间)、敲低效率验证 阅读提示:见“Cell lines, reagents, and animals”部分及补充图S4A |
| PRDM16过表达实验 | 过表达载体(Lenti ORF)、感染复数(MOI)、筛选方法(bulk及单克隆) 阅读提示:见“Cell lines, reagents, and animals”部分及补充图S4H |
| 体内骨转移模型 | 注射细胞数(IIA 5×10^4,胫骨1×10^5,原位1×10^6)、注射体积、麻醉剂(未提)、终点定义 阅读提示:见“In vivo studies”部分及图3、图5 |
| ChIP-qPCR | 染色质交联条件(37%甲醛8分钟)、超声参数(25%振幅,30秒on/off,总10分钟)、抗体用量(4 μg/10 μg染色质) 阅读提示:见“ChIP”部分及图6C、D |