检测TSP1在动脉粥样硬化动脉中的表达
验证TSP1表达是否在动脉粥样硬化动脉中升高及其定位。
收集非动脉粥样硬化小鼠和动脉粥样硬化小鼠(Apoe−/−,Western diet 12周)的主动脉组织,通过Western blot和免疫染色检测TSP1表达,并用ORO染色确认病变。
CD47 Activation by Thrombospondin-1 in Lymphatic Endothelial Cells Suppresses Lymphangiogenesis and Promotes Atherosclerosis
文献包含Western blot、免疫染色、细胞功能实验(增殖、迁移、管形成)、Matrigel plug体内模型及LEC特异性基因敲除小鼠动脉粥样硬化模型等多层次验证,并进行了机制研究。
人皮肤淋巴内皮细胞(HLEC) 人主动脉内皮细胞(HAoEC) 小鼠原代肺淋巴内皮细胞 小鼠动脉粥样硬化模型(AAV8-PCSK9注射+Western diet) 小鼠Matrigel plug淋巴管生成模型
TSP1浓度及处理时间(11 nM和22 nM,4小时或16小时) VEGF-C浓度及刺激时间(100 ng/mL,15分钟) CD47 siRNA敲低效率及处理时间(48小时) 小鼠品系及基因型(C57BL/6J,Cd47f/fLyve-1 Cre+/−) AAV8-PCSK9注射剂量(1×10^11 viral genomes,IP)及Western diet喂养周期(16周)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证TSP1表达是否在动脉粥样硬化动脉中升高及其定位。
收集非动脉粥样硬化小鼠和动脉粥样硬化小鼠(Apoe−/−,Western diet 12周)的主动脉组织,通过Western blot和免疫染色检测TSP1表达,并用ORO染色确认病变。
确定TSP1是否抑制LEC的增殖、迁移和管形成。
使用人原代LEC,通过WST-1增殖实验、Ki67免疫染色、伤口愈合迁移实验和Matrigel管形成实验,评估TSP1(11或22 nM)对VEGF-C(100 ng/mL)诱导的LEC功能的影响。
在体内模型中确认TSP1抑制淋巴管生成。
采用Matrigel plug实验,将含有VEGF-C或VEGF-C+TSP1的Matrigel皮下注射到野生型小鼠,10天后取出,免疫染色LYVE-1评估淋巴管密度。
确定CD47是否是介导TSP1抗淋巴管生成作用的主要受体。
使用siRNA敲低LEC中的CD47,检测TSP1处理后LEC的增殖、迁移和管形成变化;同时使用CD47阻断抗体进行Matrigel plug实验,检测LYVE-1阳性面积。
阐明TSP1通过CD47抑制淋巴管生成的分子机制。
处理LEC后,通过Western blot检测AKT、eNOS、ERK1/2磷酸化,以及p53、p21、VEGFR3和epsin 1蛋白水平;检测NO产生和ROS水平。
验证LEC中的CD47是否在体内促进动脉粥样硬化形成。
利用Cd47ΔLEC小鼠(Cd47f/fLyve-1 Cre+/−)与对照Cd47WT小鼠,注射AAV8-PCSK9并Western diet喂养16周,分析主动脉及主动脉根部动脉粥样硬化病变面积,并检测淋巴管密度、巨噬细胞极化及代谢参数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 内皮细胞生长培养基MV 2 | PromoCell GmbH | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 2型胶原酶 | -- | -- | |
| 基因沉默 | CD47 siRNA | Horizon Discovery | M-019505-01-0005 |
| 非靶向对照siRNA | Horizon Discovery | D-001210-01-05 | |
| TransIT-TKO转染试剂 | Mirus Bio LLC | -- | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| 硝酸纤维素膜 | Li-Cor Biosciences | -- | |
| Intercept封闭缓冲液 | Li-Cor Biosciences | -- | |
| TSP1一抗 | Proteintech | 18304-1-AP | |
| Vinculin抗体 | Sigma-Aldrich, Inc. | V4505 | |
| GAPDH抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-365062 | |
| pAKT (Ser473)抗体 | Cell Signaling Technology | 4060S | |
| 总AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 2920S | |
| peNOS (Ser1177)抗体 | Cell Signaling Technology | 9571S | |
| 总eNOS抗体 | Cell Signaling Technology | 5880S | |
| pERK1/2 (Thr202/Tyr204)抗体 | Cell Signaling Technology | 9101S | |
| 总ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4695S | |
| CD47抗体 | Novus Biologicals, LLC | NBP2-31106 | |
| CD47抗体 | Abcam | ab175388 | |
| VEGFR3抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-321 | |
| epsin 1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-55556 | |
| p53抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-126 | |
| p21抗体 | Cell Signaling Technology | 2947 | |
| IRDye标记二抗 | Li-Cor Biosciences | -- | |
| Odyssey CLx/DLx红外成像系统 | Li-Cor Biosciences | -- | |
| 免疫组织化学 | 柠檬酸盐缓冲液 | -- | -- |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 山羊血清 | -- | -- | |
| SMA抗体 | Abcam | ab7817 | |
| CD68抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA5-13324 | |
| LYVE-1抗体 | Abcam | ab14917 | |
| CD11c抗体 | Thermo Fisher Scientific | 53-0114-80 | |
| CD45抗体 | Cell Signaling Technology | 70257S | |
| CD34抗体 | Abcam | ab81289 | |
| iNOS抗体 | Abcam | ab3523 | |
| Arg1抗体 | Sigma-Aldrich | AV45673 | |
| podoplanin抗体 | R&D Systems | AF3244 | |
| CD31抗体 | Abcam | ab28364 | |
| CD3e抗体 | Thermo Fisher Scientific | 53-0031-80 | |
| CD47抗体 | Novus Biologicals | NBP2-31106 | |
| CD47抗体 | R&D Systems | AF1866 | |
| Alexa Fluor 488/594荧光二抗 | Life Technologies Corporation | A11008, A11032, A11037, A11001, A11055 | |
| DAPI | -- | -- | |
| Fluoromount-G封片剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Zeiss 710倒置共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 组织染色 | 伊红 | Fisher Healthcare | 22-220-104 |
| Masson三色染色试剂盒 | Richard Allan Scientific LLC | 22-110-648 | |
| 动脉粥样硬化分析 | 油红O | Sigma-Aldrich | -- |
| Amplex Red胆固醇检测试剂盒 | Molecular Probes | A12216 | |
| AAV8-hPCSK9-D374Y病毒载体 | Vigene Biosciences | -- | |
| 西方饮食 | Envigo | TD.88137 | |
| 动物实验 | Bruker Minispec活体小鼠分析仪LF90 | Bruker | -- |
| ReliOn Prime血糖监测系统 | ReliOn | -- | |
| 异氟烷 | -- | -- | |
| Olympus SZX16体视显微镜 | Olympus | -- | |
| Olympus BX43相差显微镜 | Olympus | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism 9 | -- | -- |
| 图像分析 | Image-Pro Plus | Media Cybernetics | -- |
| ImageJ | -- | -- | |
| Matrigel plug | Matrigel基质胶 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TSP1表达检测 | 小鼠品系、饮食方案、TSP1抗体、Western blot及免疫染色条件 阅读提示:Methods: Animals, Western Blot, Immunohistochemistry; Figure 1 legends |
| 体外淋巴管生成实验 | 细胞来源、培养条件、TSP1和VEGF-C浓度、处理时间、实验方法(WST-1、迁移、管形成) 阅读提示:Methods: Cell Culture and Gene Silencing; Figure 2 legends |
| 体内Matrigel plug实验 | 小鼠品系、性别、TSP1浓度、Matrigel体积、注射途径、分析时间 阅读提示:Methods: Animals; Figure 2G-2H legends |
| 信号通路实验 | TSP1预处理时间、VEGF-C刺激时间、抗体、磷酸化检测条件 阅读提示:Methods: Western Blot; Figure 4 legends |
| 小鼠动脉粥样硬化模型 | 小鼠基因型、AAV8-PCSK9剂量、Western diet喂养时间、血脂及血糖检测方法 阅读提示:Methods: Animals, Atherosclerotic Lesion Analysis; Figure 5 legends |
| 淋巴管密度分析 | 组织切片位置、LYVE-1抗体、定量方法 阅读提示:Methods: Immunohistochemistry; Figure 6 legends |