建立衰老模型并评估ICC/ICC-SC及胃功能
验证ICC和ICC-SC在衰老过程中的减少以及与胃功能障碍的关联。
使用klotho小鼠(50-70天龄)和自然衰老小鼠(18-24月龄),通过流式细胞术(KIT、CD34、CD44标记)检测ICC和ICC-SC频率,通过免疫印迹检测KIT和γ-H2A.X蛋白水平,并通过离体胃灌注实验测量胃顺应性。
Wnt-induced, TRP53-mediated Cell Cycle Arrest of Precursors Underlies Interstitial Cell of Cajal Depletion During Aging
包含体外ICC-SC细胞模型(Wnt3a、nutlin 3a处理)、体内动物模型(klotho、APCΔ468、自然衰老小鼠)及人类样本验证,并进行了功能验证(细胞周期、克隆形成、胃顺应性)和机制验证(ERK-CDKN1B-CCND1通路)。
小鼠胃ICC-SC细胞系(D2211B、2xSCS2F10、2xSCS70) klotho小鼠(α-Klotho低表达) 自然衰老小鼠(18-24月龄) APCΔ468小鼠(Wnt信号过度活跃) 人类胃平滑肌样本(19-51岁)
ICC和ICC-SC的鉴定:KIT、CD34、CD44表面标志物组合(KIT+CD44+CD34−为ICC;KITlowCD44+CD34+为ICC-SC) 药物处理条件:Wnt3a(30 ng/mL,8-15天)、nutlin 3a(10-30 μmol/L,48-72小时)、selumetinib(剂量依赖,72小时) 体内增殖标记:EdU(50 mg/kg体重,腹腔注射,持续2周) 细胞周期分析:PI染色流式细胞术(10或30 μmol/L nutlin 3a处理72小时) 基因操作:Ctnnb1过表达(2xSCS2F10细胞)和siRNA介导的Ctnnb1和Cdkn1b敲低
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ICC和ICC-SC在衰老过程中的减少以及与胃功能障碍的关联。
使用klotho小鼠(50-70天龄)和自然衰老小鼠(18-24月龄),通过流式细胞术(KIT、CD34、CD44标记)检测ICC和ICC-SC频率,通过免疫印迹检测KIT和γ-H2A.X蛋白水平,并通过离体胃灌注实验测量胃顺应性。
确定Wnt信号通路在ICC细胞中是否活跃,并在衰老的胃肌中是否被过度激活。
对ICC-SC细胞系(2xSCS2F10、D2211B、2xSCS70)、纯化的ICC和人类胃ICC进行转录组分析(RNA-seq、微阵列),使用MetaCore和GSEA分析Wnt信号通路富集;通过免疫组化检测CTNNB1表达,通过免疫印迹检测CTNNB1磷酸化(Ser33/37/Thr41)和核内CTNNB1水平。
证明长期过度激活的Wnt信号能抑制ICC-SC的增殖。
体外用重组Wnt3a(30 ng/mL)处理D2211B细胞,监测细胞计数和Ki-67标记;体内检测klotho小鼠和WT小鼠ICC-SC中EdU的掺入;分析APCΔ468小鼠中ICC-SC和ICC的频率。
确定TRP53是否在衰老过程中上调,并验证TRP53的激活是否会导致ICC-SC生长抑制。
通过免疫印迹和免疫组织化学检测TRP53蛋白水平;通过RT-qPCR检测TRP53靶基因(Sesn2、Sesn3、Cdkn1a)的表达;用nutlin 3a(MDM2抑制剂)处理D2211B细胞,检测TRP53、γ-H2A.X蛋白以及靶基因mRNA水平,并通过MTS实验测定细胞活力。
阐明TRP53激活后导致细胞周期阻滞的具体分子事件。
对nutlin 3a处理D2211B细胞进行RNA-seq和GSEA分析(衰老、自噬、DREAM复合物、凋亡相关基因集);通过免疫印迹验证凋亡(CL.CASP3)、自噬(LC3B-II)标志物;通过BrdU掺入、Ki-67免疫荧光、PCNA蛋白检测细胞增殖;通过PI染色流式细胞术分析细胞周期;通过克隆形成实验评估细胞克隆形成能力。
确定TRP53是否通过调节ERK信号通路及其下游靶标来抑制ICC-SC增殖。
在nutlin 3a处理的D2211B细胞中通过免疫印迹检测ERK1/2磷酸化、CCND1和CDKN1B蛋白水平;在klotho小鼠、老年小鼠和人类胃组织样品中检测相同分子变化;使用selumetinib(MEK1/2抑制剂)处理ICC-SC,检测ERK磷酸化、CCND1、CDKN1B的变化以及细胞活力;通过siRNA敲低Cdkn1b,评估对nutlin 3a诱导的生长抑制的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与处理 | 重组小鼠Wnt3a | Calbiochem (EMD Millipore) | -- |
| Nutlin 3a | Cayman Chemical | -- | |
| Nutlin 3b | Cayman Chemical | -- | |
| 司美替尼(AZD6244) | Selleckchem | -- | |
| 二甲基亚砜(DMSO) | Sigma-Aldrich | -- | |
| 星形孢菌素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 免疫印迹 | 抗GAPDH抗体 | Imgenex | IMG-3073 |
| 抗ANO1抗体 | Abcam | Ab53512 | |
| 抗CDKN1B抗体 | BD | 57/Kip1/p27 | |
| 抗裂解型caspase 3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| 抗CTNNB1抗体 | BD | 14/Beta-catenin | |
| 抗CCND1抗体 | Cell Signaling Technology | 2922 | |
| 抗C-MYC抗体 | Cell Signaling Technology | 5605 | |
| 抗ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 3A7 | |
| 抗ETV1抗体 | Abcam | Ab81086 | |
| 抗KLF4抗体 | R&D Systems | AF3158 | |
| 抗KIT抗体 | Dako | A4502 | |
| 抗PCNA抗体 | Cell Signaling Technology | 2586 | |
| 抗P-CTNNB1 (Ser33/37/Thr41)抗体 | Cell Signaling Technology | 9561 | |
| 抗P-ERK1/2 (202Y204 and T185/T187)抗体 | Cell Signaling Technology | 197G2 | |
| 抗TRP53抗体 | Cell Signaling Technology | 1C12 | |
| 流式细胞术 | 抗CD16/32抗体 | eBioscience | 93 |
| 抗CD11b抗体 | eBioscience | M1/70 | |
| 抗CD45抗体 | eBioscience | 30-F11 | |
| 抗F4/80抗体 | eBioscience | BM8 | |
| 抗CD44抗体 | BioLegend | IM7 | |
| 抗KIT抗体(APC) | eBioscience | ACK2 | |
| 抗CD34抗体 | eBioscience | RAM34 | |
| RNA-seq | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | -- |
| TruSeq链式总RNA LT(含Ribo-Zero人/小鼠/大鼠)Set A试剂盒 | Illumina | -- | |
| HiSeq 3000/4000 PE簇生成试剂盒 | Illumina | -- | |
| HiSeq 3000/4000 SBS试剂盒(150循环) | Illumina | -- | |
| RT-qPCR | SYBR GreenER qPCR SuperMix | Thermo Fisher Scientific | -- |
| CFX96实时荧光定量PCR检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 细胞增殖检测 | CellTiter 96 AQueous非放射性细胞增殖检测试剂盒(MTS) | Promega | -- |
| BrdU细胞增殖检测试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 衰老检测 | SA-β-gal染色试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- |
| 细胞周期分析 | Click-iT Plus EdU Alexa Fluor 488流式细胞术检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Click-iT EdU Alexa Fluor 647流式细胞术检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 克隆形成实验 | pGreenFire-p53-mCMV-EF1α-Puro转录报告系统 | System Biosciences | -- |
| 转染 | Cell Line Nucleofector Kit L | Lonza | -- |
| RNA干扰 | ON-TARGETplus SMARTpool siRNA | Dharmacon | -- |
| DharmaFECT1转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 胃顺应性测定 | Model 975紧凑型灌注泵 | Harvard Apparatus | -- |
| MP100A-CE压力传感器 | BIOPAC Systems | -- | |
| Transbridge 4M放大器 | World Precision Instruments | -- | |
| 免疫组织化学 | 抗裂解型caspase 3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 |
| 抗CTNNB1抗体 | BD | 14/Beta-catenin | |
| 抗γ-H2A.X (Ser139)抗体 | Cell Signaling Technology | 9718 | |
| 抗Ki-67抗体 | Cell Signaling Technology | D3B5 | |
| 抗KIT抗体 | Dako | A4502 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 动物品系:klotho小鼠、APCΔ468小鼠、C57BL/6和BALB/c小鼠;年龄:1-107周龄(ICC/ICC-SC计数)、50-70天龄(klotho)、5月龄(APCΔ468)、18-24月龄(自然衰老);性别:混合或雄性 阅读提示:Materials and Methods:Animal Experiments、Tissues and Cell Lines |
| 流式细胞术鉴定ICC和ICC-SC | 细胞表面标志物:CD45−、CD11b−、F4/80−(排除造血细胞),CD44+,KIT表达水平(ICC为KIT+,ICC-SC为KITlow),CD34表达(ICC为CD34−,ICC-SC为CD34+);抗体浓度和克隆号;使用的流式细胞仪型号和配置 阅读提示:Materials and Methods:Multiparameter Flow Cytometry、Table 7和Table 8 |
| 体外处理 | 细胞系:D2211B、2xSCS2F10;处理方式:Wnt3a(30 ng/mL)、nutlin 3a(10-30 μmol/L)、nutlin 3b(对照)、selumetinib(剂量依赖)、siRNA(25 nmol/L);处理时间:8-15天(Wnt3a)、48-72小时(nutlin)、72小时(selumetinib) 阅读提示:Materials and Methods:Transcriptome Analysis、Assay of Viable Cell Counts and Proliferation、Cell Cycle Analysis、Clonogenicity Assay |
| 细胞周期分析 | 细胞处理:nutlin 3a(10或30 μmol/L)处理72小时;染料:PI(50 μg/mL)和RNase A(20 mg/mL);孵育时间:45分钟;流式细胞仪:BD LSR II;分析软件:FlowJo 阅读提示:Materials and Methods:Cell Cycle Analysis、Table 8 |
| 分子机制验证(ERK通路) | 蛋白检测:P-ERK1/2(202Y204和T185/T187)、CCND1、CDKN1B;处理:nutlin 3a(30 μmol/L,72小时)、selumetinib(剂量梯度,72小时)、siRNA Cdkn1b(25 nmol/L);组织:klotho小鼠胃肌、老年小鼠胃肌、人类胃肌样本 阅读提示:Materials and Methods:Western Immunoblotting、RNA Interference;Results:TRP53 Inhibits ICC-SC Proliferation via the ERK-CDKN1B-CCND1 Pathway |